- •Федеральное агентство по образованию
- •Микробиология производства хлебопекарных дрожжей
- •Введение
- •1. Характеристика хлебопекарных дрожжей
- •1.1. Строение дрожжевой клетки
- •1.2. Размножение дрожжевых клеток
- •1.3. Химический состав дрожжей
- •Элементный состав сухого вещества дрожжей (массовая доля, % от св дрожжей)
- •1.4. Факторы, влияющие на метаболизм дрожжей Питательные вещества
- •Аминокислотный состав свекловичной мелассы
- •Содержание витаминов в дрожжах, их роль в обмене веществ
- •Содержание ростовых веществ в мелассе
- •Минеральные вещества
- •Ферменты
- •Физико-химические условия
- •Количество вредных веществ, влияющее на рост и размножение дрожжей
- •2. Ведение коллекции штаммов хлебопекарных дрожжей
- •2.1. Определение видовой принадлежности дрожжей
- •2.2. Микробиологический анализ музейных культур
- •2.3. Изучение производственной ценности культур дрожжей
- •2.4. Промышленные штаммы хлебопекарных дрожжей
- •Характеристика промышленных штаммов хлебопекарных дрожжей
- •Паспорт штамма хлебопекарных дрожжей
- •4. Автор или авторский коллектив
- •6. Способ хранения штамма и состав среды:
- •7. Культурально-морфологические особенности:
- •8. Физиолого-биохимические особенности:
- •10. Технологические показатели:
- •11. Особые свойства:
- •Устойчивость дрожжей разных штаммов к мелассе
- •3. Оценка физиологического состояния дрожжей в процессе размножения
- •3.1. Количество почкующихся клеток
- •3.2. Размеры дрожжевых клеток
- •3.3. Количество нежизнеспособных клеток
- •3.4. Характер зернистости клеток
- •3.5. Особенности роста дрожжей
- •4. Микроорганизмы-контаминанты дрожжевого производства
- •4.1. Бактерии
- •Бактерии группы кишечной палочки
- •4.2. Посторонние дрожжи
- •Аспорогенные дрожжи
- •Спорообразующие дрожжи
- •4.3. Мицелиальные грибы
- •5. Влияние посторонней микрофлоры на выход и качество пекарских дрожжей
- •5.1. Влияние бактерий на дрожжи
- •5.2. Влияние посторонних дрожжей на пекарские дрожжи
- •Ферментация некоторых углеводов различными видами диких дрожжей
- •5.3. Влияние мицелиальных грибов на качество дрожжей
- •6. Пути попадания посторонних микроорганизмов в дрожжевое производство
- •6.1. Микрофлора мелассы
- •6.2. Микрофлора солей
- •6.3. Микрофлора воды
- •Нормативные показатели безопасности питьевой воды
- •6.4. Микрофлора воздуха
- •Основные представители микрофлоры воздуха
- •6.5. Микрофлора оборудования
- •7. Методы выявления посторонних микроорганизмов в различных объектах дрожжевого производства
- •7.1. Выявление посторонних микроорганизмов в дрожжах
- •Микробиологические показатели
- •7.2. Микробиологический контроль мелассы
- •7.3. Микробиологический контроль воздуха
- •7.4. Периодичность проведения микробиологического анализа объектов дрожжевого производства
- •Периодичность проведения микробиологических анализов
- •8. Способы предотвращения контаминации дрожжевого призводства
- •8.1. Обеспложивание мелассы
- •8.2. Асептические условия выращивания дрожжей на лабораторных стадиях
- •8.3. Стерилизация микробиологических инструментов, посуды и материалов
- •Продолжительность стерилизации посуды различной вместимости
- •8.4. Стерилизация питательных сред
- •Зависимость температуры от давления пара в автоклаве
- •Температура плавления и цвет химических веществ-индикаторов
- •8.5. Правила работы в микробиологической лаборатории
- •8.6. Основные приемы работы с культурой дрожжей лаборатории
- •8.7. Очистка технически чистой культуры дрожжей от бактерий
- •8.8. Обеззараживание воды
- •8.9. Обеззараживание сжатого воздуха
- •8.10. Способы снижения микробной контаминации воздуха производственных помещений
- •Режимы стерилизации резервуаров различного объема
- •Режимы дезинфекции помещений
- •8.11. Предотвращение развития мицелиальных грибов
- •Режимы применения полигуанидинов
- •9. Мойка производственного оборудования
- •9.1. Виды мойки
- •9.2. Механические аспекты мойки
- •9.3. Моющие средства
- •Щелочные моющие средства
- •Кислотные моющие средства
- •Характеристика моющих средств
- •РН моющих средств
- •Препараты для пенной мойки
- •Препараты для пенной мойки оборудования
- •10. Дезинфекция оборудования и коммуникаций
- •10.1. Механизм действия дезинфицирующих веществ на микробную клетку
- •Механизм действия дезинфицирующих веществ
- •Характеристика дезинфицирующих средств
- •Воздействие на микроорганизмы некоторых дезинфицирующих веществ
- •10.2. Дезинфицирующие препараты
- •11. Средства, сочетающие моющий и дезинфицирующий эффекты
- •11.1. Хлорсодержащие препараты
- •11.2. Щелочные средства
- •Моющие и дезинфицирующие щелочные средства
- •11.3. Средства для кислотной мойки и дезинфекции
- •12. Порядок санитарной обработки оборудования
- •12.1. Асептические мероприятия на стадии выращивания технически чистой культуры дрожжей
- •Продолжительность обработки оборудования
- •12.2. Обработка аппаратов для выращивания коммерческих дрожжей
- •Режим санитарной обработки товарных аппаратов
- •12.3. Аппараты для приготовления и подачи растворов мелассы и минеральных солей
- •Продолжительность санитарной обработки
- •12.4. Санитарная обработка сборников дрожжевого концентрата
- •Продолжительность санитарной обработки сборников дрожжевого концентрата
- •12.5. Кларификаторы (сепараторы растворов мелассы)
- •12.6. Сепараторы для дрожжей
- •12.7. Вакуум-фильтры
- •12.8. Трубопроводы
- •14. Контроль микробиологической чистоты оборудования
- •14.1. Традиционные методы контроля
- •Последовательность проверки чистоты оборудования и коммуникаций
- •14.2. Современные методы контроля
- •15. Возможные риски контаминации дрожжевого производства
- •Порядок микробиологического анализа при выявлении источников инфекции в производстве пекарских дрожжей
- •16. Санитарно-гигиенические требования к дрожжевому предприятию
- •16.1. Санитарные требования к территории
- •16.2. Требования к производственным зданиям
- •Требования к освещению
- •Требования к отоплению и вентиляции
- •Санитарные требования к водоснабжению и канализации
- •16.3. Санитарные требования к производственному оборудованию и технологическому процессу
- •16.4. Санитарные требования к сырью и условиям его хранения
- •16.5. Требования к готовой продукции, ее хранению и транспортировке
- •16.6. Требования к хранению моющих и дезинфицирующих средств
- •16.7. Правила личной и производственной гигиены работников дрожжевых предприятий
- •16.8. Ответственность за соблюдение санитарных правил
- •17. Питательные среды для выявления посторонних микроорганизмов
- •17.1. Приготовление питательных сред
- •Индикаторы рН для питательных сред
- •Условия и сроки хранения лабораторных сред
- •Список литературы
- •Содержание
- •Микробиология производства хлебопекарных дрожжей
14.2. Современные методы контроля
В последние годы увеличилась база новых автоматизированных и ускоренных методов микробиологического контроля (экспресс-методов). Основная цель разработки этих методов – сократить продолжительность проведения анализа и снизить трудоемкость.
Известны такие инструментальные способы определения количества микроорганизмов, как кондуктометрический, биолюминесцентный, метод микроскопии.
Кондуктометрический метод качественного и количественного определения микроорганизмов – автоматизированный метод, основанный на импедансных технологиях (динамической регистрации импеданса культуральной среды). Суть метода – измерение электрической проводимости питательной среды, которая изменяется в процессе роста и метаболизма микроорганизмов. Измерение проводится электродом, находящимся в питательной среде. Разработано несколько приборов, работающих по этому принципу: Malthus System, Rabit System, Bactometer, Bactrac.
Все эти приборы имеют следующие общие составляющие:
– инкубаторная система (для поддержания постоянной температуры проб в ходе проведения анализа);
– контрольный блок для измерения активной проводимости или емкостного сопротивления;
– компьютерная система для обработки результатов.
Биолюминесцентный метод основан на способности многих веществ биологического происхождения и красителей к свечению под воздействием падающего на них света. Молекулы веществ, способных к люминесценции, поглощают энергию падающего света и переходят в возбужденное состояние, которое характеризуется более высоким энергетическим уровнем. В таком состоянии они находятся непродолжительное время и вновь возвращаются в обычное состояние. Этот переход сопровождается отдачей избытка энергии в виде света – люминесценцией.
В связи с тем, что высокоэнергетическим соединением любой живой клетки – растительной, животной, микробной – является АТФ, ясно, что чем грязнее поверхность, тем большее количество АТФ на ней присутствует, то есть в данном случае АТФ является показателем чистоты.
Количество АТФ измеряют при помощи люминометров, которые выпускают известные фирмы: Merck, Lumak, Foss Electric и др. Измерительный комплекс прибора состоит из люминометра и специальных реактивов. Люминометр считает фотоны света, образующиеся в ходе реакции биолюминесценции, которые прямо пропорциональны количеству АТФ. Смыв с поверхности аппарата помещают в люминометр. При этом АТФ образца вступает в реакцию с ферментом люциферазой, который входит в состав тест-системы. В процессе взаимодействия фермента с АТФ происходит эмиссия света, который регистрируется прибором. Результаты получают практически сразу же, так как по интенсивности свечения можно судить о степени загрязнения оборудования.
Однако с помощью биолюминесцентного метода нельзя определить количество микроорганизмов на поверхности, а только ответить на вопрос, достаточно ли тщательно была произведена мойка оборудования. Отсюда следует, что смывы должны браться после того, как поверхность была вымыта и ополоснута, то есть перед дезинфекцией.
Программа РЗ-Klean Check (Henkel Ecolab) для моментальной проверки чистоты по АТФ. Программа позволяет определить критические контрольные точки на предприятии и постоянно проверять эти точки в целях обеспечения соответствия предприятия гигиеническим стандартам. В программе используется методика стерильных снаб-тестов для взятия мазка – система Uni-Lite Xcel, предлагаемая компанией «Биотрейс».
Преимущества системы:
– результаты готовы в течение нескольких минут;
– результаты проверок указывают на три состояния: хорошо, удовлетворительно, плохо;
– контроль и анализ данных;
– возможность анализа тенденций.
Система представляет собой портативный прибор, предназначенный для применения непосредственно на производстве или в лаборатории. Портативность прибора усилена тем, что он оснащен встроенным принтером, который дает распечатку результатов каждой пробы непосредственно на месте проверки. Результаты выводятся на дисплей в четком формате таблицы, в которой показаны фактические результаты измерений, для большей ясности окрашенные в кодовые цвета – зеленый, янтарный или красный. Накопленные результаты можно выразить графически, выстраивая графики на основании различных критериев.
Для небольших предприятий разработан менее дорогостоящий метод, основанный на определении белка. В продаже имеются тест-наборы, которые оценивают количество белка, оставшееся на поверхности после мойки. В основе теста лежит традиционная биуретовая реакция, что позволяет обнаружить пептидные связи. В этом тесте обработка сульфатом меди в щелочных условиях и добавление индикатора (бицинхониновая кислота) приводят к образованию пурпурной окраски в присутствии белка. Интенсивность окраски зависит от количества белка.
К методам микроскопии можно отнести метод флюоресцентной микроскопии и экспресс-метод проточной цитометрии.
Для оперативного получения результатов по санитарно-гигиеническому контролю производства широко применяют пластины «ЗМ Петрифильм» (компании «ЗМ») – тест-системы, которые полностью готовы к применению. В состав среды пластин входят: стандартный набор питательных веществ, растворимый в холодной воде гелеобразный агент и индикатор, облегчающий подсчет колоний. Находящаяся на пластинах специфическая среда предназначена для идентификации и количественного учета различных групп микроорганизмов путем подсчета выросших колоний.
С помощью пластин «Петрифильм» можно оценить как качество чистоты поверхностей оборудования так и уровень микробиологической чистоты воздуха (методом седиментации), качество сырья и готовой продукции.
Перед анализом поверхность пластин увлажняют для формирования устойчивого гелевого слоя – наносят 1 см3 стерильной воды или физиологического раствора. Далее оставляют ее на один час для затвердевания геля. После чего пластину прикладывают к анализируемой поверхности, либо оставляют открытой на воздухе в течение 15 мин, затем инкубируют.
При исследовании больших производственных площадей или оборудования на микробиологическую чистоту обычно берут смыв. Для этого используют смоченный в стерильной воде тампон, с помощью которого делают смыв с тестируемой поверхности. Затем его помещают во флакон, энергично встряхивают микроорганизмы в воду, после чего высевают 1 см3 полученной пробы на сухую исходную пластину, которую затем инкубируют и подсчитывают выросшие колонии микроорганизмов.
Фирма Миллипор предложила метод микробиологического анализа, основанный на мембранной фильтрации. Метод очень прост и удобен, он заключается в отборе проб, инкубации и подсчете результатов анализа. Метод может быть использован для анализа воды, пищевых продуктов, а также производственных поверхностей. Наборы для анализа состоят из сэмплеров и «сваб тестов». Сэмплер представляет собой пластмассовый держатель, в котором закреплен мембранный фильтр с сеткой. Под фильтром находится адсорбирующая подложка с высушенной питательной средой. Самплеры стерильно упакованы и, в зависимости от цвета, служат для определения общего микробного числа, коли-индекса, дрожжей или плесневых грибов.
Для контроля жидкости в нее погружают самплер, при этом подложка впитывает в себя ровно 1 см3 жидкости, которая смачивает питательную среду. Микроорганизмы большего размера, чем поры фильтра, задерживаются на его поверхности и во время инкубации образуют колонии.
В том случае, когда необходимо оценить уровень микробной загрязненности производственных поверхностей, используют наборы, состоящие из самплера и тампона во флаконе со стерильным буфером (сваб тестов). Дизайн тампона позволяет достичь любого места, где могут расти бактерии. Для тестирования нужно провести по поверхности сваб тестов, затем возвратить его обратно во флакон, встряхнуть для переноса микрофлоры с тампона в буфер. После этого в буфер помещают самплер на 30 с. За это время подложка впитывает в себя 1 см3 буфера, после чего остаток буфера выливают, а самплер во флаконе помещают в инкубатор. Выросшие колонии подсчитывают или делают быструю оценку, пользуясь прилагаемой сравнительной таблицей.
Разновидностью предыдущего метода являются контактные слайды Envirocheck, которые широко применяют для анализа критических контрольных точек в рамках микробиологического контроля поверхностей заводских линий и оборудования. Контактные слайды покрыты питательными средами, готовыми к использованию.
Для проведения анализа необходимо отвинтить крышку и вынуть слайд из пробирки, не прикасаясь к поверхности агара. Затем положить слайд на поверхность и сделать отпечаток или погрузить слайд в исследуемую жидкость, затем поместить его в контейнер, плотно закрыть крышку и термостатировать.
Контактные чашки Родека являются основой международных стандартов при обследовании уровня контаминации поверхностей в пищевой и фармацевтической промышленности. Чашки имеют выпуклое дно, и оценка контаминации происходит путем прикладывания чашки с плотной средой к исследуемой поверхности, после чего чашку с осевшими на агар микроорганизмами культивируют и оценивают контаминацию на 1 см2 путем подсчета колоний. Для облегчения этой задачи дно имеет сетку с ячейкой 1 см2.
Чашки Родека вентилируемые. Крышка чашки имеет резьбу и надежно соединяется с чашкой во время транспортировки и инкубации, что предотвращает повреждение поверхности среды до взятия пробы и постороннюю контаминацию – после взятия пробы.