Зависимость температуры от давления пара в автоклаве

Избыточное давление, МПа	Температура насыщенного пара, С	Избыточное давление, МПа	Температура насыщенного пара, С
0,0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5	100,0 102,5 105,0 107,5 110,0 112,5	0,6 0,7 0,8 1,0 1,5 2,0	114,5 116,0 117,0 121,0 127,0 132,0

Температура и длительность стерилизации питательных сред определяется прежде всего их составом, термоустойчивостью или термолабильностью компонентов. Такие легко разрушающиеся субстраты, как молоко, а также субстраты, содержащие сахара, витамины (солодовое сусло, дрожжевой автолизат и др.) обычно стерилизуют при 112 С в течение 20 мин.

Режим стерилизации также зависит от объема стерилизуемого субстрата: чем больше объем, тем более длительное время требуется для надежного обеспложивания. Поэтому не следует стерилизовать питательные среды одновременно в пробирках и больших емкостях. Кроме того, при выборе режима стерилизации следует также учитывать рН среды в связи с тем, что при кислой реакции многие вещества, входящие в ее состав, могут подвергаться гидролизу, в результате чего плотные среды не застывают.

Для контроля эффективности работы стерилизующих устройств используют несколько методов. Технические методы контроля предусматривают периодическую проверку показаний манометров, термометров, термопар, дозиметрических устройств. Такой контроль проводят поверочные службы на предприятии.

Контроль работы стерилизатора осуществляют также бактериологическим методом с периодичностью 2 раза в год в процессе его эксплуатации. Для этого используют биотесты, основанные на гибели спор тест-культуры. Биотесты представляют собой чашечки из алюминиевой фольги, содержащие высушенные споры тест-культуры B.stearothermophilus ВКМ В-718, помещенные в пакеты из упаковочной бумаги. Штамм, используемый для тест-культуры, не патогенен для человека и животных. Упакованные тесты нумеруют и размещают в контрольные точки парового стерилизатора (5–7 тестов). По окончании стерилизации биотесты подвергают бактериологическому исследованию. Обеззараженные биотесты и контрольный тест (без стерилизации) стерильно помещают в жидкую питательную среду и инкубируют при 55 С в течение 7 сут. После ежедневного просмотра посевов из проросших вариантов проводят высевы на агаровые пластинки. Отсутствие роста тест-культуры указывает на эффективность работы стерилизатора. Недостаток использования биоиндикаторов состоит в ретроспективности ответа.

Кроме технических и бактериологических методов контроля работы стерилизатора применяются химические тесты. Эти методы основаны на использовании различных веществ, изменяющих свой цвет или физическое состояние при стерилизации, в частности име-ющих разную температуру плавления. Запаянные ампулы с порошком, предварительно смешанным с красителем, или вещества, плавящиеся только при определенной температуре, помещают в стерилизационную камеру вместе с питательными средами, подлежащими стерилизации. При достижении в камере определенной температуры порошок плавится, образуя сплав, окрашенный в цвет добавленного красителя. Кроме того, вещества-индикаторы в процессе стерилизации могут расплавляться без изменения окраски либо переходить из кристаллического состояния в аморфное с изменением окраски (табл. 8.3).

Недостатком химических индикаторов является регистрирование с их помощью только температурного показателя, а не режима стерилизации (т. е. без учета времени выдерживания объектов при заданной температуре).

Таблица 8.3