- •Научные консультанты:
- •Сокращения и глоссарий
- •Введение
- •Обзор литературы
- •1.1 Торможение в гиппокампе
- •1.1.1 ГамКергическая синаптическая передача
- •1.1.2 ГамКергические рецепторы
- •1.1.3 Разнообразие форм торможения
- •1.1.4 Механизмы и функциональное значение тонического торможения
- •1.2 Взаимодействие между глутамат и гамКергической системами
- •1.2.1 Гетеросинаптические взаимодействия
- •1.2.2 Критерии гетеросинаптической депрессии
- •1.2.3 Метаботропные рецепторы группы III в гиппокампе
- •1.2.4 Каинатные рецепторы в гиппокампе
- •1.3 Механизмы фокального эпилептогенеза
- •1.3.1 Исследования эпилептогенеза
- •1.3.2 Критерии развития эпилептиформной активности
- •1.3.3 Возбуждающие механизмы в эпилептогенезе
- •1.3.4 Тормозные механизмы в эпилептогенезе
- •1.4 Постановка цели и задач исследования
- •2. Материалы и методы
- •2.1 Срезы гиппокампа
- •2.1.1 Приготовление и растворы
- •2.1.2 Рабочая установка для поддержания срезов и манипуляторы
- •2.1.3 Идентификация клеток с помощью световой микроскопии
- •2.2 Регистрация и анализ полевых потенциалов
- •2.3 Записи и анализ токов (потенциалов) в режиме фиксации потенциала (тока) с одиночных нейронов
- •2.3.1 Электроды и внутриклеточные растворы
- •2.3.2 Проведение регистраций и сохранение данных
- •2.3.2 Анализ спонтанных и вызванных ответов в режиме фиксации потенциала
- •2.4 Записи и анализ ответов на ионтофоретические аппликации
- •2.5 Записи и анализ токов с outside-out patch
- •2.5.1 Приготовление outside-out patch
- •2.5.2 Система быстрой аппликации веществ
- •2.5.3 Определение биофизических свойств рецепторов с использованием анализа токов, полученных с outside-out пейчей
- •2.6 Модели эпилептогенеза in vivo
- •2.6.1 Электрический киндлинг
- •2.6.2 Модель аудиогенной судорожной активности. Аудиогенный киндлинг
- •2.7 Использованные вещества
- •2.8 Статистический анализ
- •3 Результаты исследованИй и их обсуждение
- •3.1 Нетипичные фармакологические свойства гамКергических рецепторов в гиппокампальных интернейронах
- •3.1.1 Различная чувствительность ионотропных гамКергических рецепторов к пикротоксину в интернейронах и пирамидных клетках
- •3.1.2 Ионные каналы ионотропных гамКергических рецепторов в интернейронах и пирамидных клетках имеют различную проводимость
- •3.1.3 Ионотропные гамКергические рецепторы как в интернейронах, так и пирамидных клетках чувствительны к агонисту гамкс рецепторов
- •3.1.4 Пентобарбитал по-разному модулирует гамКергические токи, вызываемые аппликацией caca (50 м)
- •3.1.5 Тпст в интернейронах, регистрируемые в присутствии 100 м пикротоксина, обладают повышенной чувствительностью к антагонисту гамкс рецепторов
- •3.1.6 Токи, опосредованные гамКергическими рецепторами, в присутствии 100 м пикротоксина возникают за счет характерной Cl-/hco3- ионой проводимости
- •3.1.7 Эффект аллостерических модуляторов гамка рецепторов на устойчивые к пикротоксину токи, опосредованные гамКергическими рецепторами
- •3.1.8 Сравнение эффективности антагонистов гамка и гамкс рецепторов на устойчивые к пикротоксину токи, опосредованные гамКергическими рецепторами
- •3.1.9 Интернейроны содержат рецепторы, обладающие нетипичными фармакологическими свойствами
- •3.1.10 Нетипичные гамКергические рецепторы и традиционные типы рецепторов (гамка и гамкс)
- •3.1.11 Возможная субъединичная композиция нетипичных гамКергических рецепторов в интернейронах
- •Заключение
- •3.2 Регуляция возбудимости нейронов гиппокампа за счет гамКергического тонического торможения
- •3.2.1 Базовый тонический гамКергический ток специфичен для интернейронов, но не пирамидных клеток
- •3.2.2 Увеличение внеклеточной концентрации гамк ведет к возникновению тонического тока в пирамидных клетках и повышению в интернейронах
- •3.2.3 Температурная зависимость тонического гамКергического тока и фазических спонтанных тпст
- •3.2.4 Возможная роль тонического торможения в эпилептогенезе
- •3.2.5 Заключение
- •3.3 Модуляция гамКергической передачи в гиппокампе метаботропными рецепторами
- •3.3.1 L-ap4 подавляет и тормозные, и возбуждающие синаптические токи в интернейронах
- •Демонстрирующих отсутствие метаботропных рецепторов группы III на терминалях коллатералей Шаффера, оканчивающихся на пирамидных клетках са1.
- •3.3.2 Синаптически высвобождаемый глутамат снижает тпст
- •3.3.3 Глутамат опосредует гетеросинаптическую депрессию тпст
- •3.3.4 Изменения в эффективности обратного захвата глутамата влияет на гетеросинаптическую депрессию
- •3.3.5 Метаботропные рецепторы группы III опосредуют гетеросинаптическую депрессию по двум различным механизмам
- •3.3.6 Метаботропные рецепторы группы III модулируют частоту спонтанных тпст
- •3.3.7 Возможные молекулярные механизмы депрессии тпст при активации mGluR группы III
- •3.3.8 Последствия активации mGluR группы III для общей возбудимости нейрональной сети поля са1
- •3.3.9 Гетеросинаптическая депрессия, опосредованная метаботропными гамкb рецепторами
- •3.3.10 Заключение
- •3.4 Каинатные рецепторы модулируют гамКергическое торможение в гиппокампальных интернейронах
- •3.4.1 Каинат увеличивает частоту и амплитуду спонтанных тпст в интернейронах
- •3.4.2 Каинат увеличивает вероятность генерации антидромных потенциалов действия в интернейронах
- •3.4.3 Каинат вызывает спонтанные аксональные потенциалы действия
- •3.4.4 Спилловер глутамата активирует аксональные каинатные рецепторы
- •3.4.5 Последствия аксональной деполяризации, вызываемой каинатными рецепторами, для гамКергической передачи
- •3.4.6 Каинат усиливает вызванные тпст в интернейронах
- •3.4.7 Каинат приводит к увеличению гамКергического тонического тока
- •3.4.8 Последствия усиления гамКергической передачи в интернейронах, вызываемой каинатными рецепторами, для возбудимости нейрональной сети
- •3.4.9 Заключение
- •3.5 Оказывают ли метаботропные рецепторы группы III и каинатные рецепторы противоположное действие на гамКергическую передачу?
- •3.6 Механизмы развития пачечной активности в гиппокампе
- •3.6.1 Кратковременные увеличения внеклеточной концентрации калия создают долговременное снижение порога развития пачечных разрядов в поле са1 гиппокампа
- •3.6.2 Развитие пачечных разрядов в поле са1 гиппокампа не зависит от активности нейронов поля са3
- •3.6.3 Окклюзия развития пачечных разрядов в поле са1 в ответ на кратковременные увеличения внеклеточной концентрации калия в моделях эпилептогенеза in vivo
- •3.6.4 Является ли пачечная активность в поле са1 гиппокампа эпилептиформной?
- •3.6.5 Способность пирамидных нейронов поля са1 генерировать пачечные разряды сопровождается повышением возбудимости этих клеток
- •3.6.6 Роль nmda рецепторов и l-типа кальциевых каналов в повышение возбудимости пирамидных клеток и генерации пачечных разрядов
- •3.6.7 Заключение
- •Заключение
- •Клеткоспецифичность гамКергического торможения в гиппокампе
- •Клеткоспецифичность модуляции гамКергического торможения в гиппокампе
- •Возбудимость и торможение в эпилептогенезе
- •Эффектов веществ влияющих на гамКергические механизмы, описанные в данной диссертационной работе, представлена втаблице 4.1 (см также Рис. 4.1). Выводы
- •Список рисунков
- •Список литературы
2.3.2 Проведение регистраций и сохранение данных
Заполненный соответствующим раствором пейч-кламповский электрод при поданном на него небольшом позитивном давлении вводился под объектив микроскопа, расположенный над заранее морфологически идентифицированной клеткой. При этом сопротивление электрода измерялась по ступеньке негативного сдвига потенциала, которая регистрировалась как ток прямоугольной формы. При приближении к клетке величина этого стока снижалась, что указывало на повышение сопротивления. В этот момент позитивное давление в электроде снималось и заменялось небольшим негативным, что приводило к формированию плотного контакта кончика электрода и внеклеточной мембраны клетки (cellattachedmode). При этом ступенька тока практически полностью исчезала, что свидетельствовало о дальнейшем повышении сопротивления и формировании гигаомного контакта (гигасила). Затем использовались кратковременные и частые негативные увеличения давления в электроде, для того чтобы прорвать клеточную мембрану под ним. Когда это происходило, снова появлялся ток в ответ на прямоугольный сдвиг потенциала (Рис. 2.4в3). Этот ток отражал сопротивление электрода, цитоплазмы и мембраны клетки (входное сопротивление –inputresistance). В таком режиме (whole cell mode) и проводились дальнейшие исследования. Электрическая стимуляция приводила к регистрации постсинаптических токов (Рис. 2.4 в1) или потенциалов в режиме фиксации потенциала или тока, соответственно. Кроме того, регистрировались ответы и на спонтанный выброс медиатора – спонтанные тормозные (ТПСТ) или возбуждающие (ВПСТ) постсинаптические токи (Рис. 2.4 в2). Они, как правило, были значительно меньше по амплитуде вызванных токов и являлись свидетельством здорового состояния ткани.
Если использовался метод фиксации потенциала, то клетка поддерживалась при различных потенциалах в зависимости от задачи (см. главу 3. Результаты исследований и их обсуждение), однако, в большинстве экспериментов при -60 мВ. В этом случае, если собственный потенциал клетки (при использованных внеклеточном и внутриклеточном растворах) был равен -60 мВ, то усилитель не подавал никакого тока для фиксации этого потенциала. Как только потенциал клетки изменялся, то усилитель его компенсировал с помощью соответствующего тока (ток компенсации). Изменения тока компенсации были использованы для исследования медленных процессов в клетке, таких как тоническое ГАМКергическое торможение.
В работе были использованы усилители Axoclamp2Bи Axopatch 1D (Axon Instruments, Union City, Калифорния, США). Записываемый сигнал фильтровался на частоте 1 кГц, затем оцифровывался при частоте 2 кГц и сохранялся в персональном компьютере. Для записи данных использовались программы, созданные в системеLabView5.0.
2.3.2 Анализ спонтанных и вызванных ответов в режиме фиксации потенциала
Данные, полученные в ходе экспериментов и сохраненные на жестком диске, предварительно анализировались с использованием программ, написанных в LabView5.0, а также с помощью программыKPLAnalyser(авторDr.Knit-PitterLehre).
Предварительный анализ
Предварительный анализ включал в себя оценку четырех основных параметров. Во-первых, измерялась амплитуда вызванных синаптических токов (Рис. 2.4 в1), константа их затухания (τзатуханияисходя из моноэкспоненциальной аппроксимации затухания тока) и площадь под пиком (имеющая смысл переносимого заряда). Во-вторых, идентифицировались спонтанные синаптические токи, для которых получали частоту, среднюю амплитуду и τзатуханиядля каждой отдельной регистрации (Рис. 2.4 в2). Затем рассчитывался средний ток, переносимый спонтанными ТПСТ в каждой регистрации (частота спонтанных ТПСТ умноженная на заряд, переносимый средним ТПСТ). В случае, если задачей ставилось изучение спонтанных ТПСТ, ВПСТ или токов действия, длительность каждой регистрации была не меньше 5 секунд. Это позволяло помимо средних величин для каждой регистрации оценить паттерн спонтанной активности (регулярность-нерегулярность, генерация пачечных ответов). В-третьих, анализировалась величина тока компенсации, которая является суммарным показателем проводимости мембраны клетки и качества регистрации (контакта электрода с мембраной, целостности клетки). При стабильных условиях записи, ток компенсации был использован для оценки тонического ГАМКергического торможения. В-четвертых, оценивалось входное сопротивление клетки по анализу тока в ответ на прямоугольный гиперполяризующий сдвиг потенциала (20 мс; -5 мВ), который давался в промежутках между стимуляцией (Рис. 2.4 в3).
Последующий анализ
Полученные в нескольких экспериментах данные усреднялись и были представлены как среднее ± стандартная ошибка среднего (С.О.С.). Для усреднения данных, полученных в различных клетках, ответы нормировались к их среднему значению при базовых условиях (до экспериментального воздействия) в каждом эксперименте.
Для построения ток-потенциал (I-V) зависимостей потенциал мембраны фиксировался на -80, -60, -40, -20, 0, 20, 40, 60 и 80 мВ. Амплитуда ответов нормировалась в каждом эксперименте к току, возникающему при потенциале 80 мВ.
Для оценки участия пресинаптических механизмов в эффекте экспериментального воздействия оценивался коэффициент парной стимуляции. Известно, что если нанести два стимула пресинаптических терминалей с коротким интервалом амплитуда второго ТПСТ (ВПСТ) будет отличаться от амплитуды первого. Если она меньше амплитуды первого ответа, то такой феномен называется парной депрессией, если больше, то парной фасилитацией. Эти феномены, при записи с одной клетки в режиме фиксации потенциала, частично связывают с изменением эффективности выброса медиатора пресинаптичесими терминалями. В данной работе мы использовали измерение коэффициента парной стимуляции с интервалом между стимулами 50 мс для ТПСТ в гиппокампальных интернейронах. Это проводилось для исследования пре- или постсинаптической природы модуляции высвобождения ГАМК каинатными и метаботропными рецепторами глутамата группы III.
Другим методом оценки пре- или постсинаптической природы эффекта является анализ коэффициента вариации (CV) ТПСТ. Было показано, что статистический параметр 1/CV2меняется с квантовым составом (Edwards et al. 1989) и может быть грубой оценкой высвобождения медиатора в гиппокампальных синапсах (Manabe et al. 1993). Таким образом, если снижение амплитуды ТПСТ сопровождается пропорциональным снижением данного статистического параметра, то это будет указывать на наличие пресинаптического механизма. Рассчеты производились по формуле:, где- квадрат средней амплитуды ТПСТ,-дисперсия ТПСТ,- дисперсия шума (записи перед электрическим стимулом). Средняя амплитуда ТПСТ находилась по 20 последовательным парным стимуляциям при базовых условиях и по 20 при аппликации экспериментального вещества.
Для оценки фармакологических свойств ГАМКергических рецепторов в данной работе строились доза-эффект зависимости подавления ТПСТ пикротоксином. Для этого концентрация вещества во внеклеточном растворе последовательно увеличивалась, при этом измерялась амплитуда ТПСТ. Затем строилась зависимость амплитуды, нормированной к средней амплитуде до добавления пикротоксина, от концентрации пикротоксина (в полулогарифмических координатах). Эта зависимость аппроксимировалась соотношением Хилла: , где ТПСТ – амплитуда ТПСТ, [PTX] – концентрация пикротоксина,H– коэффициент Хилла,IC50– концентрация пикротоксина, при которой амплитуда ТПСТ равняется половине от базовой.