Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Большой практикум / Белки и ДНК / Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум.pdf
Скачиваний:
172
Добавлен:
09.05.2021
Размер:
12.3 Mб
Скачать

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

Цель работ раздела

формированиепредставленийиприобретениенавыковпо освоениюосновныхметодовконструированиярекомбинантных микроорганизмов, включаяполучениегеновивекторов, перенос генетическойинформацииврецепиентныйорганизм, детекцию экспрессиигенов, выделениерекомбинантныхбелков

Задачи раздела

обучение технике трансформации бактериальных клеток, культивирования рекомбинантных бактерий с контролем экспрессии целевого белка, выделения целевого белка из биомассы бактерий;

обучение технике современных хроматографических методов;

обучение аналитическим методам современной биотехнологии (гель-электрофорез, спектрофотометрия, биолюминесцентный микроанализ;

обучение технике секвенирования ДНК.

Объекты исследования:

бактериальные клетки E. сoli (штаммы BL21(DE3) и XL1-Blue);

дрожжевые клетки, экспрессионные плазмидные векторы;

трансгенные продукты (рекомбинантный белок обелин и его производные).

Краткие теоретические сведения

Молекулярное или генетическое клонирование – процесс создания генетически идентичных молекул ДНК – является основой молекулярной биологии, фундаментальным методом биотехнологических исследований, а также основой развития и коммерциализации биотехнологии. С помощью молекулярного клонирования стали возможными: идентификация, локализация и описание генов; создание генетических карт и секвенирование це-

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум.Учебебное пособие

9

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

лых геномов; проведение параллелей между генами и ассоциированными с ними признаками; установление молекулярной основы проявления признаков. Область применения клонирования чрезвычайно широка.

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

10

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА1.1. ВЫДЕЛЕНИЕИАНАЛИЗПЛАЗМИДНОЙДНКИЗБАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Цель лабораторной работы

знакомство с методами выделения и рестрикционного анализа ДНК;

получение экспериментальных навыков для конструирования и анализа рекомбинантных ДНК.

Задачи лабораторной работы

выделение плазмидной ДНК из бактерий E. coli на примере плазмиды pUC18, содержащего вставку чужеродного гена;

оценка качества полученного препарата с помощью электрофореза в геле агарозы, рестрикционный анализ плазмиды;

определение размеров рестрикционных фрагментов ДНК.

Краткие теоретические сведения

Клонирование рекомбинантной ДНК в общепринятом объекте генноинженерных исследований – бактерии E. coli – практически всегда является составной частью процесса получения трансгенного организма. Как правило, E. coli используют для сборки и проверки корректности генетической конструкции, а также для получения препаративных количеств рекомбинаниной ДНК для последующей трансформации целевого организма в трансгенный. При этом плазмидные векторы являются наиболее популярны для клонирования рекомбинантной ДНК.

Плазмиды – внехромосомные автономно реплицирующиеся генетические элементы клетки, представляющие собой преимущественно кольцевые замкнутые молекулы ДНК.

Методы выделения плазмидной ДНК основаны на том, что бактериальные плазмиды находятся в кольцевой замкнутой форме и имеют небольшие размеры по сравнению с геномной ДНК. Первый этап многих методов состоит в разрушении жесткой бактериальной клеточной стенки путем их обработки ЭДТА и лизоцимом (для грамотрицательных бактерий) с образованием сферопластов. ЭДТА, хелатируя ионы металлов, также защищает ДНК от действия катион-зависимых нуклеаз. Реакцию проводят в изотоническом

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум.Учебебное пособие

11

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

растворе (при достаточно высокой концентрации сахарозы или другого вещества) для предотвращения немедленного лизиса получаемых сферопластов. Затем сферопласты лизируют, например, путем добавления детергента. Клеточный дебрис и фрагменты бактериальной хромосомы, связанные с клеточной оболочкой, можно удалить центрифугированием или фильтрованием.

Для выделения плазмид наиболее широко используется метод щелочного лизиса клеток (метод Бирнбойма-Доли) и его модификации – как для получения мини-препаратов, так для крупномасштабного выделения ДНК. Метод основан на том, что в щелочных условиях (~рН 12,0–12,5) происходит денатурация линейных молекул ДНК (расплетение двойной спирали), в то время как кольцевые замкнутые молекулы не денатурируют или денатурируют незначительно и обратимо. Когда клеточный экстракт нейтрализуют при высокой концентрации соли, белки, геномная ДНК и клеточная РНК осаждаются. Происходит это, по-видимому, потому, что длинные одноцепочечные молекулы ДНК и РНК реассоциируют в высокой соли после денатурации случайным и беспорядочным образом, образуя нерастворимую массу. Большая часть клеточной РНК осаждается вместе с белками, поскольку реакцию проводят в присутствии додецилсульфата Na (SDS). Оставшуюся клеточную РНК в препарате удаляют обработкой РНКазой А (в основном это транспортная РНК, которая, видимо, вследствие легкости образования внутримолекулярных двухцепочечных участков сравнительно легко ренатурирует и растворяется в высокой соли).

После удаления осадка центрифугированием плазмидную ДНК осаждают из осветленного клеточного лизата этанолом или изопропанолом. Такой препарат ДНК можно использовать для многих целей, например, для рестрикционного анализа. Для многих других приложений часто необходимы более чистые препараты ДНК, например, для подготовки фрагментов к клонированию или для трансфекции, в таком случае ДНК подвергают дальнейшей очистке.

Для получения высокочистых препаратов небольших по размерам ДНК, пригодных для практически всех молекулярно-биологических приложений, очень популярен метод очистки ДНК на колонках с фильтрами из стекла

(glass), кварца (silica slurries) или силикагеля (silica-gel membrane). DNA обра-

тимо сорбируется на поверхность стеклянной мембраны в растворе с высокой концентрацией хаотропной соли, примеси отмываются хаотропной со-

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

12

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

лью и 70%-м этанолом. Затем очищенная DNA элюируется в буфере с низкой ионной силой. Для очистки небольших количеств плазмидной ДНК или фрагментов часто используют центрифужные мини-колонки с такими силикатными фильтрами. Подобные наборы выпускаются многими фирмами.

Материалы и оборудование

1.Термостатируемый шейкер-инкубатор Exella E-24, «New Brunswick»(США) для выращивания клеточных культур.

2.Система видеодокументирования гелей «Molecular Imager Gel Doc XR» производства «Bio-Rad» (США)с трансиллюминатором.

3.Микроцентрифуга для пробирок «Eppendorf» 5417R (США) c ротором для микропробирок 1,5-2 мл.

4.Оборудование для горизонтального ДНК гель-электорфореза фирмы «Bio-Rad» (США): источник постоянного тока «PowerPac HV Power Supply» и «Sub-Cell GT» камеры с заливочными столи-

ками.

5.Лабораторный шейкер-вортекс V-1 фирмы «BioSan«.

6.Охлаждаемый термостат модель КВ53 фирмы «Binder» (Германия).

7.Наборы из трех автоматических пипеток на 2-20, 20-200 и 1001000 мкл «Gilson».

8.Мерные стаканы и колбы, одноразовые пластиковые пробирки и наконечники для пипеток.

9.Штаммы E. coli BL21(DE3) и XL1-Blue

10.Стационарная культура, содержащая рекомбинантную плазмиду.

11.Буферы и реагенты для выделения плазмидной ДНК.

12.Буферы и реагенты для рестрикционного анализа ДНК.

13.Буферы и реагенты для проведения агарозного электорофореза.

Характеристики оборудования

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

13

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Термостатируемыйшейкер-инкубаторExella E-24 «New Brunswick»

Термостатируемый шейкер-инкубатор Exella E-24 «New Brunswick» (рис. 1.1) позволяет выращивать клеточные культуры в широком диапазоне температур и в различных объемах, от микробиологических пробирок на 2-5 мл до крупных колб 2,8 л. Ростовая камера плотно закрывается прозрачной акриловой крышкой, что позволяет непосредственно наблюдать за выращиваемыми образцами.

Технические характеристики:

диапазон температур инкубации от 7 °С выше окружающей до 60 °С$

диапазон частот качания 50–400 раз/мин , ± 2$

орбитальное качание 1,9 см в диаметре.

Рис. 1.1. Внешний вид термостатируемого шейкера-инкубатора

Exella E-24 фирмы «New Brunswick»

Универсальный температурный контроль обеспечивается самокорректирующимся микропроцессорным контролем обратной связи и герметично сконструированной ростовой камерой. Высокоскоростной вентилятор обеспечивает быстрое восстановление температуры при перегреве. Установка температуры и скорости осуществляется через контрольную панель.

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

14

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Прозрачная крышка ростовой камеры позволяет непосредственно наблюдать за образцами и минимизировать количество открываний шейкера. Крышка легко поднимается, открывая удобный доступ к образцам.

RS-232 обеспечивает регистрацию и хранение данных о состоянии при-

бора.

Качание шейкера автоматически отключается при открывании крышки для защиты оператора.

Система безопасности термостата выключает нагрев при превышении установленного температурного лимита для защиты растущей культуры.

Системавидеодокументации«Molecular Imager Gel Doc XR»

Система видеодокументации «Molecular Imager Gel Doc XR» производства «Bio-Rad» с трансиллюминатором (рис. 1.2) позволяет осуществлять ряд работ по получению цифровых изображений результатов экспериментов: от рутинной документации гелей до высокочувствительной хемилюминесцентной детекции и регистрации с высоким разрешением двумерных гелей. Система имеет широкий ряд применений, в том числе: детекция нуклеиновых кислот, иммуноблоттинг, двумерный гель-электрофорез, дот-блоттинг, денситометрия, подсчет количества колоний. Система «Molecular Imager Gel Doc XR» содержит в себе темный кабинет с переключаемым держателем фильтров на 5 штук (один желтый встроен по умолчанию), CCD-видеокамеру, источники УФ и белого света, принтер, управляющий компьютер с программным обеспечением «Quantity One» для захвата и обработки изображений. Конверсионный экран «XcitaBlue» для ДНК-имиджинга в комплекте защищает образцы ДНК и пользователя от УФ-облучения.

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

15

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Рис. 1.2. Внешний вид системы видеодокументирования

«Molecular Imager Gel Doc XR» производства «Bio-Rad»

Технические характеристики:

Черно-белая 12-битная (4096 оттенков серого) CCD видеокамера с 1360х1024 мкм матрицей и разрешением 1,4 мегапикселя. Размер пикселя

4,6х4,6 мкм.

Широкой динамический ряд видеодетекции, покрывающий более трех порядков.

Видеокамера с автоматическим моторизованным увеличением 8,5-51 мм и цифровой обратной связью для воспроизводимости условий документирования.

Отображение на экране в реальном времени для быстрого позиционирования и фокусирования образца.

Для освещения используется проходящий УФ-свет, проходящий и отраженный белый свет.

Встроенный трансиллюминатор с переключаемым 254, 302, и 365 нм УФ-излучением. Зона трансиллюминации 25х26 см.

5-позиционный держатель эмиссионных фильтров с одним встроенным (желтый), возможно встраивание дополнительных 4-х эмиссионных фильтров в зависимости от потребностей.

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

16

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Программное управление источниками освещения. Программное обеспечение совместимо с Windows и MAC OS. Размеры системы 60х36х96 см, вес 32 кг.

Микроцентрифуга«Eppendorf» 5417R

Микроцентрифуга «Eppendorf» 5417R c ротором для микропробирок, укомплектованная аэрозолезащищенным угловым 30-позиционным ротором для микропробирок (рис. 1.3) позволяет центрифугировать любые образцы в микропробирках 0,2–2,0 мл на разнообразных режимах с переменным ускорением до 20 800 g. Характеризуется большой мощностью, малым временем разгона и остановки, большим центростремительным ускорением. Имеет режимы медленного и быстрого замораживания, работает в диапазоне температур от минус 9 °С до 40 °С. Функция охлаждения позволяет быстро охлаждать образцы до 4 °С примерно за 15 мин, и постоянно поддерживать эту температуру в течение времени центрифугирования при максимальной скорости вращения.

Технические характеристики:

Удобная мембранная клавиатура для установки режимов центрифугирования. Параметры можно менять в процессе работы центрифуги.

Максимальная скорость вращения: 16400 об/мин (от 500 об/мин до максимального значения, с инкрементом 100 об/мин).

Установление показаний вращения в единицах об/минуту или в единицах g.

Максимальное ускорение (rcf) около 25000 g (в соответствии с DIN 58970), для 30-позиционного углового ротора 14 000 об/мин (20800 g).

Быстрый разгон и торможение даже при полностью загруженном ро-

торе.

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

17

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Рис. 1.3. Охлаждаемая микроцентрифуга 5417R c ротором для микропробирок фирмы «Eppendorf»

Время разгона до максимальной скорости около 10 с, время торможения с максимальной скорости около 11 с (с 30-позиционным угловым ротором).

Режим «Soft» для более мягкого разгона и торможения.

Встроенный таймер до 99 мин с возможностью непрерывного центрифугирования.

Функция кратковременного центрифугирования с выбранной скоростью вращения.

Все съемные элементы – роторы, крышки, адаптеры – могут автоклавироваться в течение 20 мин при 121 °С.

Габариты: 31х60х25 см, без ротора вес 35 кг. Потребляемая мощность: 700 W, питание: 230V/50-60 Hz.

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

18

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Оборудованиедлягоризонтальногогель-электрофореза

Оборудование для горизонтального гель-электрофореза – источник по-

стоянного тока «PowerPac HV Power Supply» и «Sub-Cell GT» камеры с зали-

вочными столиками фирмы «Bio-Rad» (рис. 1.4) – предназначено для проведения горизонтального электрофореза в гелях агарозы различного размера при анализе нуклеиновых кислот.

Включает в себя удобный столик для заливки гелей, УФ-прозрачные подложки для гелей, гребенки различных форматов для формирования лунок. Прграммируемый источник постоянного тока «PowerPac HV Power Supply» способен поддерживать ток до 5000 В, 500 мА и 400 Вт, что позволяет использовать его для всех высоковольтных методов, включая низкотоковые в микроамперном диапазоне. Кроме горизонтального ДНКэлектрофореза может быть использован также в ряде других методов, включая SDS-электрофорез белков, изоэлектрическое фокусирование, ДНКсеквенирование.

Технические характеристики:

Размер подложки для гелей 7х10 см для камеры «Mini-Sub Cell GT» позволяет внедрять два ряда гребенок в гель для увеличения количества анализируемых образцов – от 1 до 30.

Размер подложки для гелей 15х25 для камеры «Sub-Cell GT» позволяет внедрять четыре ряда гребенок в гель для увеличения количества анализируемых образцов – от 1 до 120.

Объем электрофорезного буфера ~270 мл для камеры «Mini-Sub Cell GT» и ~1 л для камеры «Sub-Cell GT».

Технические характеристики источника питания для электрофореза

«PowerPac HV Power Supply»:

• способен поддерживать постоянный ток в диапазонах 20-5000 В, 0,01-500 мА, 1-400 Вт;

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

19

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Рис. 1.4. Внешний вид оборудования для гель-электрофореза ДНК фирмы «Bio-Rad»: источник питания, заливочный столик и камеры

возможно подключение до четырех камер одновременно;

программируемый источник питания позволяет осуществлять многоступенчатые методы, процессы с изменяемыми параметрами, при постоянном токе, при постоянном напряжении, при постоянной мощности или при постоянной температуре.

Лабораторныйшейкер-вортекс«ВортексV-1»

Лабораторный» фирмы «BioSan» (Латвия) (рис. 1.5) предназначен для перемешивания растворов и суспензий клеток в любых пробирках. Имеет два режима работы – непрерывный и импульсный. Импульсный режим включается при касании пробиркой головки вортекса.

Технические характеристики:

Диапазон регулирования скорости 250-3000 об/мин. Предназначен для пробирок объемом 1,5-50 мл. Максимальный объём перемешивания 30 мл. Питание от внешнего блока DC 12 В, 500 мA.

Вес не более 1,1 кг. Размеры 90x150x80 мм

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

20

РАЗДЕЛ 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ИНЖЕНЕРИЯ НИЗШИХ ОРГАНИЗМОВ

РАБОТА 1.1. ВЫДЕЛЕНИЕ И АНАЛИЗ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК ИЗ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КЛЕТОК

Рис. 1.5. Внешний вид шейкера-вортекса фирмы «Биосан»

.

ОхлаждаемыйтермостатКВ53 фирмы«Binder»

Охлаждаемый термостат КВ53 фирмы «Binder» (Германия) (рис. 1.6), объемом 53 л, предназначен для инкубации биологических образцов при различных температурах от минус 10 до 100 °C с высокой точностью.

Технические характеристики:

Регулируемый диапазон температур от минус 10 до 100 °C с точностью

±0,3 °С.

Микропроцессорный контроль многочисленных временных и температурных функций осуществляется с ЖК-дисплея с визуальной и акустической сигнализацией.

Интерфейс RS 422 для принтера или компьютера.

Мощная запатентованная система охлаждения DCT® обеспечивает надежность поддержания температур без образования конденсата.

Не наносящий вреда окружающей среде охладитель R134a.

Современные аппаратура и методы исследования биологических систем. Большой практикум. Учебебное пособие

21