- •Занятие №1. Цели и задачи лабораторной диагностики
- •Виды биологического материала, исследуемого в лаборатории
- •Влияние длительности хранения цельной крови при комнатной температуре на концентрацию калия и глюкозы в плазме крови.
- •Факторы, приводящие к получению ложных результатов.
- •Фотометрия.
- •Флюорометрия
- •Плазменная фотометрия и атомная абсорциометрия
- •Иммунохимические методы
- •Методы преципитации в геле.
- •Метод конкурентного связывания (сатурационный анализ)
- •Исследование светорассеивания.
- •Метод поляризационной флюорометрии.
- •Нормальная величина.
- •Интерпретация результатов лабораторных исследований. Аналитическая вариация.
- •Принципы определения допустимых погрешностей результатов лабораторных исследований.
- •Диагностическая сила исследования.
- •Специфические органные профили биохимических тестов.
- •Контроль качества лабораторных исследований.
- •Основные единицы си.
- •Примеры производных единиц си.
- •Множители и приставки для образования десятичных и дольных единиц и их наименований.
- •Лабораторное исследование мочи:
- •Формы анурии:
- •Определение относительной плотности мочи.
- •Проба Рейзельмана.
- •Проба с сухоядением (проба на концентрацию).
- •Оценка функционального состояния нейрогипофиза.
- •Водяная проба (проба с разведением).
- •Содержание желчных кислот
- •Содержание желчных пигментов
- •Гемоглобинурия
- •Исследование мочи на меланин
- •Содержание в моче хлоридов
- •Определение тиосоединений
- •Глюкоза мочи
- •Кетоновые тела крови и мочи
- •Микроскопия осадка.
- •Причины гематурии:
- •Проба Нечипоренко.
- •Эпителиальные клетки.
- •Активные лейкоциты (клетки Штернгеймера - Мальбина).
- •Неорганизованные осадки мочи.
- •Мочевая кислота.
- •Кальция оксалат.
- •Фосфаты.
- •Определение Коч. Мочевины (проба Ван-Слайка).
- •Проба Реберга- Тареева.
- •Влияние на кф экстраренальных факторов.
- •Канальцевая секреция (кс)
- •Почечный плазмоток и кровоток.
- •Протеинурии.
- •Клиническая оценка результатов исследования кала. Цвет.
- •Количество кала.
- •Консистенция и форма кала.
- •Примесь крови.
- •Примесь слизи.
- •Примесь гноя.
- •Стеркобилин.
- •Определение растворимого белка.
- •Жир, жирные кислоты и мыла.
- •Клетчатка.
- •Яйца гельминтов.
- •Простейшие.
- •Клиническая оценка результатов исследования мокроты. Количество мокроты.
- •Характер мокроты.
- •Цвет мокроты.
- •Запах мокроты.
- •Слоистость мокроты.
- •Примеси.
- •Химическое исследование.
- •Микроскопическое исследование.
- •Бактериоскопическое исследование мокроты.
- •Клиническая оценка результатов исследования содержимого серозных полостей (полости плевры, перикарда. Брюшины)
- •Лабораторные дифференциально-диагностические признаки экссудатов и транссудатов
- •Виды экссудатов.
- •Лабораторная диагностика цереброспинальной жидкости.
- •Лабораторная диагностика желудочной секреции.
- •Дебит соляной кислоты.
- •Нормальные показатели секреции желудка.
- •Клиническое значение показателей секреторной, кислотообразующей и моторной функций желудка при различных формах патологии.
- •Клиническая оценка результатов исследования дуоденального содержимого
- •Характеристика отдельных фракций дуоденального содержимого здорового человека.
- •Микроскопическое исследование дуоденального содержимого
- •Изменение дуоденального содержимого при воспалительных процессах в желчных путях.
- •Химическое исследование дуоденального содержимого. Билирубин. Содержание билирубина в желчи.
- •Уробилин.
- •Холестерин и желчные кислоты.
- •Хроматическое зондирование (Проба с метиленовым синим).
- •Исследование внешнесекреторной функции поджелудочной железы.
- •Секретин-хопецистокининовый тест.
Метод конкурентного связывания (сатурационный анализ)
Суть метода заключается в том, что некоторые вещества лиганды - способна весьма избирательно связываться с исследуемым соединением, при этом нет различия между веществом биологического происхождения (анализируемым) и его меченым аналогом, добавленным извне. Они конкурируют за лиганд в таком количестве, чтобы его связующая способность полностью насытилась (отсюда и название «сатурационный» - насыщающий анализ). Очевидно, что чем больше в пробе определяемого вещества, тем меньше связывается меченое вещество. После этого отделяют комплекс от свободных ингредиентов и подсчитывают количество метки - в одних вариантах в комплексе, в других не связанного с комплексом. Особенность метода заключается в том, что используют лиганды исключительно биологического происхождения; меченое соединение обычно получают из природного, присоединяя к нему метку в виде отдельного атома или химической группировки.
Метод имеет 2 неудобства:
нелинейная зависимость между результатом непосредственного измерения, т.е. количеством меченого соединения, и исследуемым параметром, т.е. содержанием определяемого вещества;
многоэтапность анализа.
Поэтому обычно рекомендуют каждую пробу исследовать 2 или 3 раза, отбрасывая результаты, которые находятся вне нужного диапазона. Но эти недостатки компенсируются необыкновенно высокой чувствительностью и избирательностью метода.
По своему принципу метод примыкает к классическим иммунологическим методам, основанным на РСК, но количество комплемента м.б. определено лишь полуколичественно. Кроме того, для этого метода необходимы определенным образом обработанные эритроциты (или другие заменяющие их частицы), в то время как реактивы, используемые для сатурационного анализа, значительно легче стандартизуются и более устойчивы. Но приготовление их настолько сложно, что недоступно практическим лабораториям, поэтому в условиях КДЛ метод конкурентного связывания м.б. выполнен лишь с помощью промышленно изготовленных реактивов, так называемых китов (c aнгл. KIT - набор инструментов или команда).
В химической биохимии и иммунологии метод конкурентного связывания шире всего используется для определения 3 групп веществ:
гормонов - как белковой, так и небелковой природы;
индивидуальных белков - как нормально присутствующих (альбумин, макроглобулин и др.) и появляющихся в условиях патологии (At к микробам и вирусам и белки инфекционных агентов);
лекарственных соединений и вредных веществ из окружающей среды, что относится к среде фармакодинамики и токсикологии.
В качестве лигандов используются 3 группы веществ биологического происхождения: антитела, специфические транспортные белки плазмы крови, рецепторные белки органов-мишеней.
Наибольшее значение имеет использование антител, полученных путем иммунизации, в том числе и моноклональных антител, которые вырабатываются не в целом организме, а в тканевых культурах, в которых растут клетки, в больших количествах продуцирующие только нужные иммуноглобулины. Такие культуры получают путем гибридизации лимфоидных клеток иммунизированного животного со злокачественными клетками, обладающими свойствами неограниченного роста в тканевых культурах. Затем отбираются (клонируются) клетки, обладающие способностью продуцировать требуемые At и неограниченным ростом в культуре.
Транспортные белки крови обычно используется в качестве лигандов при определении стероидных гормонов, в частности, глюкокортикоидов. Недостаток их использования состоит в том, что они не очень специфичны и не позволяют дифференцировать гормоны от их непосредственных метаболитов (например: кортизол, кортизон и гидрокортизол).
Белки органов-мишеней чаще всего применяются для определения эстрогенов. В целом они обладают свойствами, аналогичными транспортным белкам крови, но их извлекают путем соответствующей обработки из органов лабораторных животных, чувствительных к эстрогенам, например, из матки крыс.
Чтобы получить меченое соединение, обычно используют чистый препарат определяемого вещества, полученный из биологического источника или синтетическим путем. Белковые вещества обычно метят 125I (иод), для этого препарат инкубируют с радиоактивным индикатором в присутствии окислителя, а затем очищают от побочных продуктов. Низкомолекулярные вещества метят тритием путем неспецифического изотопного обмена. Использование радиоактивных соединений связано с теми неудобствами, что для работы с ними необходима специально оборудованная лаборатория, поэтому все большее распространение приобретают такие варианты метода конкурентного связывания, в которых исследуемое вещество метится ферментом. Таким способом можно пометить лишь относительно крупные молекулы, т.к. образовавшаяся химическая связь не должна затрагивать функционально важные группы ни в молекуле меченого соединения, ни в ферменте.
Очень важная техническая проблема - отделение связанных с лигандом меченого и немеченого соединений от их свободных форм. Здесь используется существенное различие в молекулярной массе комплекса и свободных форм определяемого вещества. Широкое распространение при определении низкомолекулярных гормонов получило использование активированного угля, покрытого декстраном, тонкий слой которого пропускает лишь одну молекулу гормона, которая адсорбируется на угле, а высокомолекулярный комплекс остается в растворе. Такой приём получил название мгновенного диализа. Используется также метод двойных антител, когда комплекс лиганд-определяемое вещество осаждается (преципитируется) после добавления антител против белка самого лиганда.
Определение при помощи энзима, связанного с иммуносорбентом - ЭЛИЗА (Enzyme Linked Immunosorbent Assay) - дальнейшее развитие метода двойных антител, используемых в сатурационном анализе, но здесь отсутствует конкуренция между определяемым природным соединением и его меченым вариантом. Суть метода заключается в том, что образуется нечто вроде слоёного пирога, причём определяемое вещество составляет один из его внутренних слоёв, а индикаторный фермент - самый внешний; общий размер всей структуры зависит от количества определяемого вещества. Рассмотрим пример определения альбумина в моче: определение выполняют в лунках (гнёздах), стенки которых изготовлены из полистирена, эффективно адсорбирующего антитела. Сначала в лунки вносят первичные антитела, в данном случае кроличьи антитела против человеческого альбумина, затем после их адсорбции на стенках и отмывания избытка вносят исследуемую пробу. Содержащиеся в ней молекулы альбумина через посредство первичных антител оказываются фиксированными на стенках лунки. Затем добавляют вторичные антитела, в данном случае источником их служит сыворотка морской свинки, иммунизированной против человеческого альбумина; они фиксируются на тех же альбуминовых молекулах, которые другими группами адсорбированы на первичных антителах. Четвертый слой иммунного «пирога» - фермент пероксидаза, фиксированная на кроличьих антителах против иммуноглобулинов морской свинки; они связываются со вторичными антителами, при этом количество фиксированной пероксидазы оказывается пропорциональным содержанию альбумина в исследуемой пробе. После добавления каждого реагента и завершения реакции связывания избыток непрореагировавших белков тщательно удаляют отмыванием буферным раствором, кроме того, добавляют инактивированные сыворотки для подавления неспецифических реакций. После окончания всех адсорбций и отмываний проводят ферментативную реакцию с о-фенилендиамином и перекисью водорода. Благодаря присутствующей пероксидазе о-фенилендиамин окисляется, и через некоторое время интенсивность окраски измеряется фотометрией. Метод очень чувствителен и высокоспецифичен; в отличие от радиоиммунных методов он не требует специфичных условий.
Комплекс, образующийся при одном из вариантов определения сывороточного альбумина с помощью связанного с иммуносорбентом энзима (схема).
АЛБ - сывороточный альбумин человека (определяемое вещество); римскими цифрами обозначены компоненты аналитической системы: I — полистиреновая стенка лунки микротитратора; II — первичные антитела (из сыворотки кролика, иммунизированного против сывороточного альбумина человека) ; III — вторичные антитела (из сыворотки морской свинки, иммунизированной против сывороточного альбумина человека); IV—-пероксидаза из хрена, фиксированная на кроличьих антителах против иммуноглобулинов морской свинки.