
- •Занятие №1. Цели и задачи лабораторной диагностики
- •Виды биологического материала, исследуемого в лаборатории
- •Влияние длительности хранения цельной крови при комнатной температуре на концентрацию калия и глюкозы в плазме крови.
- •Факторы, приводящие к получению ложных результатов.
- •Фотометрия.
- •Флюорометрия
- •Плазменная фотометрия и атомная абсорциометрия
- •Иммунохимические методы
- •Методы преципитации в геле.
- •Метод конкурентного связывания (сатурационный анализ)
- •Исследование светорассеивания.
- •Метод поляризационной флюорометрии.
- •Нормальная величина.
- •Интерпретация результатов лабораторных исследований. Аналитическая вариация.
- •Принципы определения допустимых погрешностей результатов лабораторных исследований.
- •Диагностическая сила исследования.
- •Специфические органные профили биохимических тестов.
- •Контроль качества лабораторных исследований.
- •Основные единицы си.
- •Примеры производных единиц си.
- •Множители и приставки для образования десятичных и дольных единиц и их наименований.
- •Лабораторное исследование мочи:
- •Формы анурии:
- •Определение относительной плотности мочи.
- •Проба Рейзельмана.
- •Проба с сухоядением (проба на концентрацию).
- •Оценка функционального состояния нейрогипофиза.
- •Водяная проба (проба с разведением).
- •Содержание желчных кислот
- •Содержание желчных пигментов
- •Гемоглобинурия
- •Исследование мочи на меланин
- •Содержание в моче хлоридов
- •Определение тиосоединений
- •Глюкоза мочи
- •Кетоновые тела крови и мочи
- •Микроскопия осадка.
- •Причины гематурии:
- •Проба Нечипоренко.
- •Эпителиальные клетки.
- •Активные лейкоциты (клетки Штернгеймера - Мальбина).
- •Неорганизованные осадки мочи.
- •Мочевая кислота.
- •Кальция оксалат.
- •Фосфаты.
- •Определение Коч. Мочевины (проба Ван-Слайка).
- •Проба Реберга- Тареева.
- •Влияние на кф экстраренальных факторов.
- •Канальцевая секреция (кс)
- •Почечный плазмоток и кровоток.
- •Протеинурии.
- •Клиническая оценка результатов исследования кала. Цвет.
- •Количество кала.
- •Консистенция и форма кала.
- •Примесь крови.
- •Примесь слизи.
- •Примесь гноя.
- •Стеркобилин.
- •Определение растворимого белка.
- •Жир, жирные кислоты и мыла.
- •Клетчатка.
- •Яйца гельминтов.
- •Простейшие.
- •Клиническая оценка результатов исследования мокроты. Количество мокроты.
- •Характер мокроты.
- •Цвет мокроты.
- •Запах мокроты.
- •Слоистость мокроты.
- •Примеси.
- •Химическое исследование.
- •Микроскопическое исследование.
- •Бактериоскопическое исследование мокроты.
- •Клиническая оценка результатов исследования содержимого серозных полостей (полости плевры, перикарда. Брюшины)
- •Лабораторные дифференциально-диагностические признаки экссудатов и транссудатов
- •Виды экссудатов.
- •Лабораторная диагностика цереброспинальной жидкости.
- •Лабораторная диагностика желудочной секреции.
- •Дебит соляной кислоты.
- •Нормальные показатели секреции желудка.
- •Клиническое значение показателей секреторной, кислотообразующей и моторной функций желудка при различных формах патологии.
- •Клиническая оценка результатов исследования дуоденального содержимого
- •Характеристика отдельных фракций дуоденального содержимого здорового человека.
- •Микроскопическое исследование дуоденального содержимого
- •Изменение дуоденального содержимого при воспалительных процессах в желчных путях.
- •Химическое исследование дуоденального содержимого. Билирубин. Содержание билирубина в желчи.
- •Уробилин.
- •Холестерин и желчные кислоты.
- •Хроматическое зондирование (Проба с метиленовым синим).
- •Исследование внешнесекреторной функции поджелудочной железы.
- •Секретин-хопецистокининовый тест.
Фотометрия.
Биохимические аналитические методы чаще всего оканчиваются цветными реакциями, в результате которых прозрачный раствор приобретает окраску, т.е. способность избирательно поглощать свет с определенной длиной волны. Разумеется, что тот свет, который не поглотился, проходит через раствор, поэтому субъективно воспринимаемая окраска является дополнительным цветом относительно того, который поглотился. Так, если интенсивно поглощается красный цвет, то раствор бывает зеленым или синим, если поглощается фиолетовый, то раствор желтый и т.д. График, изображающий поглощение света с разными длинами волн, называется спектральной кривой. Обычно для фотометрии используется область, где поглощение света наибольшее, т.е. максимум спектральной кривой. Для аналитических целей пригодны только те цветные реакции, в которых развивается окраска, пропорциональная концентрации исследуемого вещества. В этом случае посредством фотометрии измеряется количество поглощаемого света и по этим данным рассчитывается искомая концентрация. Но качественные результаты удается получать лишь в определенном диапазоне концентраций, в котором соблюдаются закон поглощения света Ламберта-Бера, который показывает логарифмическую зависимость между концентрацией окрашенного вещества в растворе, толщиной раствора и долей света, которая в этом растворе поглощается.
Фотометрические приборы бывают 2 видов: фотометры и спектрофотометры. В фотометрах нужные спектральные диапазоны выделяются при помощи светофильтров, поэтому число участков спектра, в котором может проводиться измерение, равно числу светофильтров. В спектрофотометре участки спектра выделяются при помощи призм или дифракционных решеток, поэтому можно установить любую длину волны в заданном диапазоне. Чаще всего в клинической биохимии фотометрия проводится в области 400-700 нм ( видимая область спектра), >700 нм - ближняя инфракрасная область, <400 нм - ультрафиолетовый диапазон, 300-400 нм - ближняя область ультрафиолета, 220-300 нм - коротковолновой диапазон.
Для фотометрических измерений в видимой и ближней инфракрасной области пригодны кюветы из обычного стекла; для ближней ультрафиолетовой области нужны кюветы из специального стекла - увиолевые; в коротковолновой области пригодны только кюветы из кварца и сапфира.
Последовательность операций при работе на фотометрах и спектрофотометрах различных конструкций несколько различается, но принцип остается один: сначала устанавливают длину волны, выбирая светофильтр на фотометре или вращая соответствующую рукоятку на спектрофотометре. Далее - установка нуля, для этого в кюветодержателе устанавливают кювету, заполненную растворителем или раствором, полученным в результате холостого опыта; изменяя ширину щели, добиваются того, чтобы показания прибора соответствовали величине, предусмотренной инструкцией (обычно это нуль), после чего холостую пробу заменяют опытной и производят отсчет величины оптической плотности.
Флюорометрия
Эффект флюоресценции заключается в том, что исследуемый объект светится под влиянием облучения светом с более короткой длиной волны. Аналитические методы, использующие флюоресценцию, основаны на предположении, что при освещении светом одинаковой интенсивности сила света флюоресценции пропорциональна содержанию исследуемого вещества. Но такая пропорциональность имеется только в относительно узком диапазоне концентраций, из которых на практике очень легко выйти, поэтому при налаживании флюорометрических исследований надо очень тщательно проверять линейность калибровочного графика во всем диапазоне возможных величин. Нарушение линейности связано с явлением гашения флюоресценции, которое обусловлено тем, что по мере углубления пучка возбуждающего света в раствор интенсивность его уменьшается вследствие поглощения. Чем концентрированнее раствор, тем поглощение это больше, поэтому сила возбуждающего света оказывается также уменьшенной. Отсюда общее правило, что флюорометрии должны подвергаться относительно разбавленные растворы.
Физический эффект флюоресценции заключается в том, что молекула исследуемого вещества поглощает квант света возбуждения и при этом переходит в новое, энергетически более богатое состояние; через некоторый промежуток времени она излучает избыточную энергию в виде кванта света флюоресценции. В связи с тем, что энергия кванта света обратно пропорциональна длине волны, длина волны возбуждающего света всегда короче излучаемого. Промежуток времени между поглощением света и его излучением очень мал, и в обычных флуоресцентных методах на него не обращают внимания, но он достаточен, чтобы на молекулярном уровне успели произойти некоторые события, в частности, чтобы молекула могла изменить свое положение в пространстве. На этом основан метод молекулярной вискозиметрии путем изменения поляризации света флюоресценции.