- •Зміст лабораторного заняття:
- •Техніка безпеки при роботі у біохімічній лабораторії
- •Забороняється з метою уникнення травм, опіків, нещасних випадків:
- •Перша домедична допомога
- •Заняття 1 Тема: Історія біохімії. Якісні (кольорові) реакції на амінокислоти та білки теоретична частина
- •Практична частина:
- •ХIд роботи
- •Заняття 2 Тема: Властивості білків теоретична частина
- •Практична частина
- •ХIд роботи
- •Заняття 3 Тема: Кількісне визначення білків за допомогою біуретового реактиву теоретична частина:
- •Практична частина
- •Хід роботи
- •Заняття 4 Тема: амінокислоти і білки (семінар)
- •Заняття 5 Тема: Властивості вуглеводів теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 6 Тема: властивості, будова, роль лІпІдІв. Реакція на жири і жироподІбнІ речовини теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 7 Тема: будова і властивості нуклеопротеЇдІв теоретична частина:
- •Цитозин
- •Практична частина:
- •Заняття 8 Тема: загальні властивості ферментів теоретична частина:
- •Властивості ферментів:
- •ПРактична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 9 Тема: Якісні реакції на вітаміни теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •ВодоРозчинні вітаміни
- •ЖироРозчинні вітаміни
- •Заняття 10 Тема: біологічне Окиснення речовин теоретична частина:
- •Практична частина
- •Заняття 11 Тема: обмін вуглеводів (частина 1). Визначення концентрації глюкози в крові теоретична частина:
- •Практична частина
- •Хід роботи
- •Заняття 12 Тема: обмін вуглеводів (частина 2). Визначення молочної кислоти у біологічному матеріалі теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 13 Тема: обмін вуглеводів (семінар)
- •Заняття 14 Тема: Перетравлення білків у шлунково-кишковому тракті. Визначення сечовини в біологічних рідинах діацетилмонооксимним методом теоретична частина:
- •Катаболизм аминокислот:
- •Біосинтез сечовини (орнітиновий цикл)
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •У пробірки відміряють послідовно, відповідно таблиці, біологічну рідину і робочі розчини. Для зменшення похибки аналізу рекомендується притримуватися обговореного порядку змішання розчинів.
- •Заняття 15 Тема: Обмін ліпідів. Визначення концентрації загального холестерину у біологічних рідинах (за методом Ілька) теоретична частина:
- •Окисний розпад нейтральних жирів (ацилгліцеринів) у тканинах
- •Хід роботи
- •Хід роботи:
- •Заняття 16 Тема: Обмін води та мінеральних солей. Біохімія крові теоретична частина:
- •Заняття 17 Тема: Механізм м’язового скорочення. Біологічні мембрани
- •Механізм м’язового скорочення.
- •Механізм м’язового розслаблення.
- •Особливості енергетичного обміну у скелетних м’язах.
- •Тестовий контроль модуль 1 «Будова і фізико-хімічні властивості біоорганічних речовин»
- •30. Електрофорез − це:
- •82. Каталітичний центр ферменту − це:
- •83. Адсорбційний центр ферменту − це:
- •84. Алостеричний центр ферменту – це:
- •94. Неконкурентне інгібування – це:
- •Модуль 2 «Обмін речовин»
- •71. Склад плазми крові:
- •72. Фібриноген − це:
- •85. Актин − це:
- •86. Тропоміозин − це:
- •92. Роль ядерної мембрани:
- •93. Роль ендоплазматичного ретикулуму:
- •94. Роль мембрани апарату Гольджі:
- •95. Роль мембрани лізосом:
- •Індивідуальні завдання
- •Питання до іспиту
- •Глосарій
- •Рекомендована література Основна:
- •Додаткова:
- •Навчально-методичний посібник
Практична частина
Запитання для домашнього (письмового) виконання:
Намалюйте схематично, як утворюється первинна, вторинна, третинна та четвертинна структура білку. Які зв’язки приймають участь в утворенні цих структур?
Наведіть приклади простих і складних білків. Дайте характеристику протеїнам і протеїдам.
Зобразіть будову тетрапептиду: три-ліз-цис-про. За допомогою яких кольорових реакцій можна довести його склад? (назва, колір)
Мета заняття: вивчити реакцій зворотного і незворотного осадження білків, їх фізико-хімічні властивості, визначити ізоелектричну крапку білка. Для виконання роботи необхідно вивчити такі питання теорії:
Запитання для обговорення:
Функції білків.
Основні властивості білків.
Структури білка, характерні типи зв'язків.
Висалювання білка. Як провести висалювання білка?
Денатурація білка. Зміни, що відбуваються в білковій молекулі при денатурації.
Дайте визначення поняттю "ізоелектрична крапка білка". Як вона визначається?
Класифікація білків.
ХIд роботи
Практичне значення роботи: осадження білків методом висалювання використовують для розділу білкових фракцій при одержанні очищених білків (наприклад, гормональних), для розділу альбумінів і глобулінів і визначення їх співвідношення в сироватці крові. Процес денатурації білків використовується для осадження білків в біологічному матеріалі з подальшим визначенням у ньому небілкових і низькомолекулярних речовин; для виявлення присутності білку і його кількісного визначення. Знаючи ізоелектричну крапку індивідуальних білків, можна підібрати максимальні умови для осадження їх із біологічних рідин, що містять суміш різних білків.
Матеріали і реактиви: штатив для пробірок, пробірки, пробіркотримач, скляні палички, піпетки, сухе пальне, сірники; дистильована вода, 1%-ний розчин яєчного білка, 10%-ний розчин гідроксиду натрію, 1%-ний розчину сульфату купруму, розчин нінгідрину, нітратна кислота, волосся або шматочок нігтя, розчин ацетату плюмбуму, розчин нітриту натрію, концентрована оцтова кислота.
Нерозведений яєчний білок, розчин сульфату амонію, хлоридна кислота; 1%-ний розчин желатину; 0,1 М і 1 М розчини оцтової кислоти, 0,1 М розчин ацетату натрію, 96 %-ний етиловий спирт (або 95 %-ний ацетон).
Дослід 1. Зворотне осадження білків − висалювання.
Принцип методу. Висалювання (зворотна реакція) − осадження білків із розчинів за допомогою великих концентрацій солей лужних і лужноземельних металів: Na2SO4, NaCl, MgSO4, а також (NH4)2SO4. При їх додаванні до розчину білка відбувається дегідратація білкових часток, і білки випадають в осад. При додаванні води до цього розчину гідратаційна оболонка білкових часток відновлюється, і осад розчиняється.
Хід роботи. У пробірку наливають 1 мл нерозведеного яєчного білка, додають такий же об’єм розчину сульфату амонію. Рідину збовтують і спостерігають невеличке помутніння. Доливають 1 мл води − помутніння зникає.
Дослід 2. Незворотне осадження білків.
Принцип методу. Денатурація білка − це порушення структури білка і втрата ним біологічних властивостей. Осаджуються білки солями важких металів, мінеральними й органічними кислотами, кип'ятінням.
При незворотному осадженні порушується гідратаційна оболонка і заряд білка. При подальшому додаванні води осаджений білок не переходить у розчин.
Хід роботи.
а) осадження білків солями важких металів. У пробірки наливають по 1 мл нерозведеного білка, в одну додають декілька крапель розчину ацетату плюмбуму, у другу − розчину сульфату купруму;
б) осадження білків мінеральними кислотами. У дві пробірки наливають по 1 мл кислот: у першу − нітратну кислоту, у другу − хлоридну кислоту. Потім у кожну обережно по стінці доливають рівний об’єм розчину білка;
в) осадження білків при нагріванні. У пробірку наливають 1 мл нерозведенного білка і кип'ятять.
Незворотність осадження в пунктах досліду 2 установлюють додаванням 0,5-1,0 мл води.
Результати дослідів заносять у таблицю:
№ з/п |
Досліджуємий розчин |
Осаджувач |
Утворення осаду |
Що відбувається після додавання води |
Висновок |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
|
|
|
|
|
|
Дослід 3. Визначення ізоелектричної крапки білка.
Принцип методу. Визначення ізоелектричної крапки білків засновано на спроможності білків під дією осаджувачів, що викликають дегідратацію білків, при значенні рН середовища, що відповідає їх ізоелектричній крапці, легко осаджуватися.
Хід роботи. У 6 пробірок поміщають відповідну кількість (мл) розчинів оцтової кислоти, ацетату натрію, дистильованої води і желатину (таблиця). Вміст кожної пробірки перемішують. Потім у всі пробірки повільно по стінці доливають по 2 мл спирту. Через 30 хв. визначають ізоелектричну крапку. Вона буде відповідати рН пробірки з максимальним ступенем помутніння.
№ про-бірки |
Вода |
СН3СООН (0,1 моль/л) |
СН3СООН (1 моль/л) |
СН3СООNа (0,1 моль/л) |
Розчин желатину (1 %-ний) |
рН сере-довища |
Зміни, що спостері- гаються* |
1 |
3,8 |
0,2 |
– |
2,0 |
2,0 |
5,6 |
|
2 |
3,5 |
0,5 |
– |
2,0 |
2,0 |
5,3 |
|
3 |
3,2 |
– |
0,8 |
2,0 |
2,0 |
5,0 |
|
4 |
3,0 |
1,0 |
– |
2,0 |
2,0 |
4,7 |
|
5 |
2,0 |
2,0 |
– |
2,0 |
2,0 |
4,4 |
|
6 |
– |
4,0 |
– |
2,0 |
2,0 |
4,1 |
|
Примітка. * − Відзначати: “–“ – відсутність помутніння; “+” – поява помутніння; “++” – середнє помутніння; “+++” − значне помутніння.
В кінці роботи зробити висновок.