
- •Зміст лабораторного заняття:
- •Техніка безпеки при роботі у біохімічній лабораторії
- •Забороняється з метою уникнення травм, опіків, нещасних випадків:
- •Перша домедична допомога
- •Заняття 1 Тема: Історія біохімії. Якісні (кольорові) реакції на амінокислоти та білки теоретична частина
- •Практична частина:
- •ХIд роботи
- •Заняття 2 Тема: Властивості білків теоретична частина
- •Практична частина
- •ХIд роботи
- •Заняття 3 Тема: Кількісне визначення білків за допомогою біуретового реактиву теоретична частина:
- •Практична частина
- •Хід роботи
- •Заняття 4 Тема: амінокислоти і білки (семінар)
- •Заняття 5 Тема: Властивості вуглеводів теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 6 Тема: властивості, будова, роль лІпІдІв. Реакція на жири і жироподІбнІ речовини теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 7 Тема: будова і властивості нуклеопротеЇдІв теоретична частина:
- •Цитозин
- •Практична частина:
- •Заняття 8 Тема: загальні властивості ферментів теоретична частина:
- •Властивості ферментів:
- •ПРактична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 9 Тема: Якісні реакції на вітаміни теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •ВодоРозчинні вітаміни
- •ЖироРозчинні вітаміни
- •Заняття 10 Тема: біологічне Окиснення речовин теоретична частина:
- •Практична частина
- •Заняття 11 Тема: обмін вуглеводів (частина 1). Визначення концентрації глюкози в крові теоретична частина:
- •Практична частина
- •Хід роботи
- •Заняття 12 Тема: обмін вуглеводів (частина 2). Визначення молочної кислоти у біологічному матеріалі теоретична частина:
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •Заняття 13 Тема: обмін вуглеводів (семінар)
- •Заняття 14 Тема: Перетравлення білків у шлунково-кишковому тракті. Визначення сечовини в біологічних рідинах діацетилмонооксимним методом теоретична частина:
- •Катаболизм аминокислот:
- •Біосинтез сечовини (орнітиновий цикл)
- •Практична частина:
- •Хід роботи
- •У пробірки відміряють послідовно, відповідно таблиці, біологічну рідину і робочі розчини. Для зменшення похибки аналізу рекомендується притримуватися обговореного порядку змішання розчинів.
- •Заняття 15 Тема: Обмін ліпідів. Визначення концентрації загального холестерину у біологічних рідинах (за методом Ілька) теоретична частина:
- •Окисний розпад нейтральних жирів (ацилгліцеринів) у тканинах
- •Хід роботи
- •Хід роботи:
- •Заняття 16 Тема: Обмін води та мінеральних солей. Біохімія крові теоретична частина:
- •Заняття 17 Тема: Механізм м’язового скорочення. Біологічні мембрани
- •Механізм м’язового скорочення.
- •Механізм м’язового розслаблення.
- •Особливості енергетичного обміну у скелетних м’язах.
- •Тестовий контроль модуль 1 «Будова і фізико-хімічні властивості біоорганічних речовин»
- •30. Електрофорез − це:
- •82. Каталітичний центр ферменту − це:
- •83. Адсорбційний центр ферменту − це:
- •84. Алостеричний центр ферменту – це:
- •94. Неконкурентне інгібування – це:
- •Модуль 2 «Обмін речовин»
- •71. Склад плазми крові:
- •72. Фібриноген − це:
- •85. Актин − це:
- •86. Тропоміозин − це:
- •92. Роль ядерної мембрани:
- •93. Роль ендоплазматичного ретикулуму:
- •94. Роль мембрани апарату Гольджі:
- •95. Роль мембрани лізосом:
- •Індивідуальні завдання
- •Питання до іспиту
- •Глосарій
- •Рекомендована література Основна:
- •Додаткова:
- •Навчально-методичний посібник
Хід роботи
Мета роботи: засвоїти метод визначення концентрації холестерину в сироватці крові.
Практичне значення роботи: За визначенням концентрації холестерину в сироватці крові судять про ліпідний обмін. При порушенні ліпідного обміну холестерин може накопичуватися в крові.
Збільшення вмісту холестерину спостерігається при атеросклерозі, цукровому діабеті, вроджених порушеннях обміну, захворюваннях печінки.
Принцип методу: Холестерин в присутності карбонового ангідриду та суміші оцтової та сірчаної кислот утворює речовину зеленого кольору. Інтенсивність забарвлення дослідного розчину прямо пропорційна концентрації холестерину.
Реактиви:
1. Реагент на холестерин (карбоновий ангідрид – 75-85%, оцтова кислота – 15-25%);
2. Калібрувальний розчин холестерину (4,665±0,2328) ммоль/л;
3. Сульфатна кислота концентрована;
4. Дистильована вода;
5. Фізіологічний розчин (0,9%-ний розчин NaCl).
Аналізуємий матеріал: сироватка крові.
Приготування робочих розчинів.
1. Робочий розчин. Вміст флакона з реактивом на холестерин перенести до термостійкої колби місткістю 200 мл та поступово додати, при охолодженні холодною водою і перемішуванні, 9 мл сульфатної кислоти з флакона. Отриманий реактив повинен бути безбарвним або блідо-жовтим. Зберігається на протязі одного тижня у холодильнику в склянці із темного скла з добре притертою скляною пробкою. Якщо реактив набуде жовтого кольору, то він не придатний до використання.
2. Калібрувальний розчин холестерину – придатний до використання.
Після розкриття ампули реактив бережуть у холодильнику в посуді з добре притертою скляною або пластмасовою пробкою. При збереженні в герметичній ємності розчин стійкий. Концентрація холестерину в розчині (4,665±0,2328) ммоль/л ((1,8±0,09) мг/мл).
Хід роботи:
Складаємо робочу схему проведення досліду.
Аналіз проводять у відповідності зі схемою, наведеною в таблиці.
Розрахунок концентрації холестерину здійснюють за формулою:
С = 4,665 ∙ Е досл. пр. / Е кал. пр.
де: С – концентрація холестерину у дослідній пробі, ммоль;
4,665 – концентрація холестерину у калібрувальній пробі, ммоль/л;
Е досл. пр. − оптична щільність дослідної проби, од. опт. щільності;
Е кал. пр. – оптична щільність калібрувальної проби, од. опт. щільності.
Контроль якості: достовірність одержуваних результатів контролюють за допомогою атестованих контрольних сироваток “Ліонорм” (Чехія) або “Біоконт С”.
Нормальна концентрація холестерину у сироватці крові – 1,7 – 8,3 ммоль/л, (10 – 50) мг/дкл.
Таблиця
Відміряти у пробірку, мл |
Робочий розчин |
Аналізуємий розчин |
Фізіологічний розчин |
Калібрува-льний розчин холестерину |
Показники оптичної щільності
|
|
Екал. пр. |
Едосл. пр. |
|||||
Холоста проба (контроль) |
4,30 |
– |
0,1 |
– |
− |
− |
Калібрувальна проба |
4,30 |
– |
– |
0,1 |
|
− |
Дослідна проба 1. |
4,30 |
0,1 |
– |
– |
− |
|
2. |
4,30 |
0,1 |
– |
– |
− |
|
3. і т.д. |
4,30 |
0,1 |
– |
– |
− |
|
10. |
4,30 |
0,1 |
– |
– |
− |
|
До робочого розчину повільно, по стінці пробірки, додають не гемолізовану сироватку або калібрувальний розчин. Пробірку струшують 10-12 разів та витримують у термостаті при +37 0С протягом 20 хв. Вимірюють оптичну щільність дослідної проби (Е досл. пр.) проти холостої проби (контроль). Забарвлення стійке протягом 20 хв. |
В кінці роботи зробити висновок.