- •Предмет, завдання і методологія біотехнології рослин
- •Історія розвитку методу культури клітин, тканин та органів рослин
- •Організація і обладнання біотехнологічної лабораторії
- •Посуд, інструменти і матеріали
- •Миття посуду
- •Методи стерилізації посуду
- •Методи стерилізації інструментів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Живлення культури тканин
- •Мінеральне живлення
- •Вуглеводневе живлення
- •Вітаміни
- •Стимулятори росту
- •Фітогормони
- •Рослинні екстракти
- •РН – середовища
- •Приготування живильних середовищ
- •Стерилізація живильних середовищ
- •Стерилізація рослинного матеріалу
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих органів і зародків
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих клітин і тканин
- •Культура калюсних тканин
- •Особливості калюсних клітин
- •Генетика калюсних клітин
- •Культура клітинних суспензій
- •Культивування ізольованих клітин
- •Методи оцінки результатів
- •Мікроклональне розмноження рослин
- •Методи мікроклонального розмноження рослин
- •Етапи мікроклонального розмноження рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Кріоконсервація клітин рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Клітинна селекція
- •Спонтанні та індуковані мутанти
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура рослинних клітин і речовини вторинного синтезу
- •Фактори, які впливають на вихід продуктів
- •Компоненти середовища
- •Фізичні фактори
- •Селекція і відбір
- •Утворення вторинних речовин в культурах рослинних тканин
- •Глікозиди
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих протопластів і соматична гібридизація
- •Виділення і очистка ізольованих протопластів картоплі
- •Виділення протопластів із мезофілу листка
- •Виділення протопластів із культури клітин
- •Культивування ізольованих протопластів
- •Умови культивування протопластів
- •Злиття ізольованих протопластів
- •Селекція соматичних гібридів
- •Генетична трансформація
- •Вектори для генетичної трансформації рослин
- •Плазміди агробактерій як вектори для трансформації
- •Вектори на основі днк-вмісних вірусів рослин
- •Методи перенесення чужинних генів у рослини
- •Трансгени і екологія
- •Контрольні запитання і завдання
- •Практичний курс Приготування і стерилізація живильних середовищ
- •Таблиця 8
- •Робота 1. Приготування маточних розчинів для середовища Мурасиге і Скуга (мс)
- •Робота 2. Приготування середовища Мурасиге і Скуга (мс). Стерилізація середовища автоклавуванням
- •Робота 3. Стерилізація рідких середовищ пропусканням через бактеріальний фільтр (холодна стерилізація)
- •Стерилізація рослинного матеріалу Робота 4. Стерилізація насіння і вирощування асептичних рослин
- •Робота 5. Стерилізація бульб, коренеплодів і кореневищ
- •Робота 6. Стерилізація листків
- •Робота 7. Стерилізація меристем
- •Калюсна культура Робота 8. Отримання первинного калюсу із різних експлантатів асептичних рослин
- •Робота 9. Дослідження явища фізіологічної полярності
- •Робота 10. Отримання перевивної калюсної культури
- •Робота 11. Дослідження впливу співвідношення ауксин:цитокінін у живильному середовищі на ріст калюсної тканини та її тип
- •КлітиннА суспензіЯ Робота 12. Отримання клітинної суспензії з калюсної тканини
- •Мікроклональне розмноження рослин Робота 13. Мікроклональне розмноження рослин живцями
- •Робота 14. Стебловий органогенез із листкових дисків тютюну
- •Таблиця 15 Середовища для мікроклонального розмноження тютюну та моркви (1 л середовища)
- •Робота 15. Ризогенез із листкових дисків тютюну
- •Робота 16. Прямий ембріогенез
- •Хід роботи
- •Робота 17. Непрямий ембріогенез
- •Культура ізольованих протопластів вищих рослин Робота 18. Виділення і культивування ізольованих протопластів вищих рослин
- •Словник термінів
- •Список літератури
Культура ізольованих протопластів вищих рослин Робота 18. Виділення і культивування ізольованих протопластів вищих рослин
Мета роботи: оволодіти методикою виділення і культивування протопластів із мезофілу листка; отримати ізольовані протопласти із мезофілу листка рослин картоплі.
Матеріали і обладнання: асептичні рослини картоплі, ферментні препарати - Cellulysin, Macerase, Driselase, глюкоза, сахароза, ксилоза, манітол, CaCl2·2H2O, NaCl, KCl, NH4NO3, KNO3, MgSO4·7H2O, KH2PO4, NH4Cl, FeSO4·7H2O, Na2ЕДТА·2H2O, H3BO3, MnCl2·4H2O, ZnSO4·7H2O, CuSO4·5H2O, CoSO4·7H2O, KI, Na2MoO4·2H2O, мезоінозит, гліцин, нікотинова кислота, фолієва кислота, біотин, аденін сульфат, гідролізат казеїну, тіамін, піридоксин, ІОК, НОК, 2,4-Д, БАП, зеатин, 1N KOH, агар, стакани на 200 мл, мірні циліндри, мірні піпетки, пастерівські піпетки, чашки Петрі діаметром 60 мм і 100 мм, колби Ерленмейера на 250 мл і 50 мл, колбочки зі скляними лійками і нейлоновими фільтрами (діаметр пор 50-100 мкм), центрифужні пробірки з гумовими пробками, шприц з насадкою з фільтрами “Millipore” з діаметром пор 0,22 мкм або 0,45 мкм, стерильний фільтр Зейтца, ваги, шпателі, пінцети, скальпелі, лезо у держаку, магнітний змішувач, рН-метр, настільна центрифуга, інвертований мікроскоп, плитка, автоклав, ламінар-бокс, спиртівка, вата, фольга, спирт, парафілм.
ХІД РОБОТИ
Робота складається з кількох етапів.
Етап 1. Підготовка до досліду.
1. Приготувати середовище виділення протопластів SI: 0,5 М розчин сахарози з 5 мМ CaCl2.
2. Приготувати середовище W-5 для відмивання протопластів (табл. 16).
3.Приготувати середовище W-S-S для культивування мезофільних протопластів картоплі ( табл. 16).
Для культивування мезофільних протопластів тютюну використовують середовище К-3 ( табл. 16 ).
4. Приготувати середовища ST-1, ST-2 і ST-3 ( табл. 16).
Для регенерації рослин тютюну використовують середовище RMOP (табл. 16).
5. Простерилізувати середовища.
6. Простерилізувати посуд для досліду:
Таблиця 16
Середовища для виділення і культивування протопластів картоплі і тютюну та регенерації з них рослин (мг/л)
Компоненти |
W-5 |
K-3 |
W-S-S |
ST-1 |
ST-2 |
ST-3 |
RMOP |
NaCl |
9000 |
|
|
|
|
|
|
NH4NO3 |
|
250 |
1280 |
|
|
1650 |
1650 |
KNO3 |
|
2500 |
|
1900 |
1900 |
1900 |
1900 |
CaCl22H2O |
18400 |
900 |
600 |
440 |
440 |
440 |
440 |
MgSO47H2O |
|
250 |
300 |
370 |
370 |
370 |
370 |
KH2PO4 |
|
|
170 |
170 |
170 |
170 |
170 |
KCl |
800 |
|
300 |
|
|
|
|
Na2PO4H2O |
|
150 |
|
|
|
|
|
(NH4)2SO4 |
|
134 |
|
|
|
|
|
NH4Cl |
|
|
|
267 |
267 |
|
|
Fe-хелат |
|
250 |
250 |
250 |
250 |
250 |
250 |
H3BO3 |
|
3 |
6 |
6 |
6 |
6 |
6 |
ZnSO47H2O |
|
2 |
10 |
10 |
10 |
8.6 |
10 |
CuSO45H2O |
|
0.025 |
0.025 |
0.025 |
0.025 |
0.025 |
0.025 |
CoCl26H2O |
|
0.025 |
0.025 |
0.025 |
0.025 |
0.025 |
0.025 |
KI |
|
0.75 |
0.83 |
0.83 |
0.83 |
0.83 |
0.83 |
Na2MoO42H2O |
|
0.25 |
0.25 |
0.25 |
0.25 |
0.25 |
0.25 |
MnSO4H2O |
|
10 |
10 |
|
|
|
|
MnSO44H2O |
|
|
|
22.3 |
22.3 |
22.3 |
22.3 |
Мезоінозит |
|
100 |
100 |
100 |
100 |
100 |
100 |
Гліцин |
|
|
|
2 |
2 |
2 |
|
PP |
|
1 |
1 |
5 |
5 |
5 |
|
Фолієва кислота |
|
|
|
0.5 |
0.5 |
0.5 |
|
Біотин |
|
|
|
0.05 |
0.05 |
0.05 |
|
Аденін сульфат |
|
|
|
40 |
80 |
40 |
|
Гідролізат казеїну |
|
|
500 |
300 |
100 |
|
|
В1 |
|
10 |
10 |
0.5 |
0.5 |
1 |
10 |
В6 |
|
1 |
1 |
0.5 |
0.5 |
0.5 |
1 |
ІОК |
|
|
|
|
0.1 |
|
0.1 |
НОК |
|
0.2 |
2 |
1 |
|
|
|
2,4-Д |
|
1 |
0.2 |
|
|
|
|
БАП |
|
0.2 |
0.5 |
0.5 |
|
|
1 |
Зеатин |
|
|
|
|
0.5 |
|
|
Сахароза |
|
10000 |
|
2500 |
2500 |
25000 |
10000 |
Глюкоза |
1000 |
|
72000 |
|
|
|
|
Ксилоза |
|
|
250 |
|
|
|
|
Манітол |
|
72800 |
|
54600 |
36400 |
|
|
Агар |
|
|
|
1% |
1% |
0.7% |
0.7% |
pH |
5,7 |
- середовище стерилізувати фільтруванням
- у сушильній шафі: чашки Петрі діаметром 60 мм і 100 мм, колби Ерленмейера на 50 мл закриті фольгою, пастерівські піпетки,
- у автоклаві: колбочки зі скляними лійками з нейлоновими фільтрами, центрифужні пробірки з гумовими пробками, шприц з насадкою для фільтрування, фільтр Зейтца.
Етап 2. Приготування ферментних розчинів
і ферментація тканин.
1. Приготувати ферментну суміш, яка містить 1% Cellulysin, 0,5% Macerase і 0,1% Driselase в середовищі виділення.
Для ферментації мезофілу тютюну використовують суміш, яка містить 0,5% Cellulase, 0,5% Macerase і 0,2% Driselase.
Калюсну тканину картоплі і тютюну ферментують у суміші, яка містить 1-2% Cellulase, 0,5-1% Macerase, 0,5-1% Driselase. Для ферментації варто брати свіжий і м’який калюс, який розсипається у ферментній суміші.
2. Відцентрифугувати суміш 10-15 хв при 2 тис. об/хв для осадження нерозчинних частинок.
3. Довести 1N КОН рН ферментної суміші до 5,6.
4. У боксі за допомогою шприца з насадкою з фільтром “Millipore” профільтрувати суміш у стерильну колбу Ерленмейера.
5. Розлити стерильний ферментний розчин по 7-10 мл в колби Ерленмейера на 50 мл.
Ферментні розчини краще готувати безпосередньо перед дослідом або за добу до досліду.
6. У боксі дістати із пробірки 4-тижневі рослини картоплі і помістити їх у стерильні чашки Петрі.
7. Притримуючи рослини пінцетом, скальпелем обрізати листки.
8. Акуратно притримуючи листки пінцетом, щоб не пошкодити мезофіл, лезом , закріпленим у держаку, нарізати їх тонкими ( до 1 мм завширшки) смужками.
9. Листкові смужки помістити на поверхню ферментної суміші у колби Ерленмейера, щоб тканина покривала всю поверхню суміші ( 1 г тканини на 10 мл ферментної суміші).
10. Колби з рослинним матеріалом помістити у термостат на 16 год при температурі 260С.
Оптимальну температуру і час інкубації необхідно підбирати для кожного конкретного випадку.
Етап 3. Виділення та очищення ізольованих протопластів.
1. Після інкубації додати у колби з рослинним матеріалом такий же об’єм середовища виділення.
2. Тотальний препарат протопластів профільтрувати через нейлонову сітку, щоб позбутися немацерованих шматочків тканини і елементів провідної системи.
3. Фільтрат стерильною піпеткою перенести у центрифужні пробірки ( 4/5 об’єму пробірки).
4. На фільтрат по стінці пробірки акуратно за допомогою піпетки нашарувати середовище W-5 ( 1/5 об’єму). Закрити пробірки і відцентрифугувати при 100 g 3 хв.
5. Поки йде центрифугування, у чисті центрифужні пробірки налити середовище W-5 ( 4/5 об’єму ).
6. З центрифугату акуратно відібрати стерильною піпеткою верхній шар, в якому містяться протопласти, які флотували на межі середовищ, і перенести у центрифужні пробірки з середовищем W-5 і відцентрифугувати при 80 g 3 хв.
7. Піпеткою акуратно відібрати надосадову рідину.
8. Відмивання протопластів проводимо ще раз.
Етап 4. Культивування ізольованих протопластів
і регенерація рослин.
1. У стерильні чашки Петрі ( діаметр 60 мм ) налити 2-3 мл середовища для культивування ізольованих протопластів W-S-S.
2. 2-3 краплі густої суспензії протопластів у середовищі W-5 піпеткою перенести в чашки Петрі з середовищем W-S-S.
3. Культивувати протопласти на розсіяному світлі при температурі 250+10С. Щодоби спостерігати за розвитком протопластів під інвертованим мікроскопом.
4. Після утворення клітинних колоній ( через 8-10 діб ) до суспензії клітин додати свіже живильне середовище W-S-S і в міру розведення суспензії частину колоній з середовищем перенести в нові чашки Петрі.
5. Колонії, які досягли розмірів 0,5-1 мм перенести на агарове середовище ST-1 для формування мікрокалюсів. Культивувати на світлі 3-4 клк при 16-годинному фотоперіоді.
6. Через 10-15 днів яскраво-зелені колонії діаметром 1-3 мм перенести на середовище ST-2 для органогенезу і культивувати при 250С, 16-годинному фотоперіоді і освітленні 3-4 клк 25-30 днів.Часто для регенерації рослин необхідно повторно пересаджувати колонії на свіже середовище ST-2.
7. Сформовані пагони висотою 3-10 мм відділити від калюсу і перенести на безгормональне середовище ST-3 для вкорінення.
Оформлення роботи: замалювати ізольовані протопласти і клітинні колонії, описати калюси і рослини-регенеранти.