- •Предмет, завдання і методологія біотехнології рослин
- •Історія розвитку методу культури клітин, тканин та органів рослин
- •Організація і обладнання біотехнологічної лабораторії
- •Посуд, інструменти і матеріали
- •Миття посуду
- •Методи стерилізації посуду
- •Методи стерилізації інструментів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Живлення культури тканин
- •Мінеральне живлення
- •Вуглеводневе живлення
- •Вітаміни
- •Стимулятори росту
- •Фітогормони
- •Рослинні екстракти
- •РН – середовища
- •Приготування живильних середовищ
- •Стерилізація живильних середовищ
- •Стерилізація рослинного матеріалу
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих органів і зародків
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих клітин і тканин
- •Культура калюсних тканин
- •Особливості калюсних клітин
- •Генетика калюсних клітин
- •Культура клітинних суспензій
- •Культивування ізольованих клітин
- •Методи оцінки результатів
- •Мікроклональне розмноження рослин
- •Методи мікроклонального розмноження рослин
- •Етапи мікроклонального розмноження рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Кріоконсервація клітин рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Клітинна селекція
- •Спонтанні та індуковані мутанти
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура рослинних клітин і речовини вторинного синтезу
- •Фактори, які впливають на вихід продуктів
- •Компоненти середовища
- •Фізичні фактори
- •Селекція і відбір
- •Утворення вторинних речовин в культурах рослинних тканин
- •Глікозиди
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих протопластів і соматична гібридизація
- •Виділення і очистка ізольованих протопластів картоплі
- •Виділення протопластів із мезофілу листка
- •Виділення протопластів із культури клітин
- •Культивування ізольованих протопластів
- •Умови культивування протопластів
- •Злиття ізольованих протопластів
- •Селекція соматичних гібридів
- •Генетична трансформація
- •Вектори для генетичної трансформації рослин
- •Плазміди агробактерій як вектори для трансформації
- •Вектори на основі днк-вмісних вірусів рослин
- •Методи перенесення чужинних генів у рослини
- •Трансгени і екологія
- •Контрольні запитання і завдання
- •Практичний курс Приготування і стерилізація живильних середовищ
- •Таблиця 8
- •Робота 1. Приготування маточних розчинів для середовища Мурасиге і Скуга (мс)
- •Робота 2. Приготування середовища Мурасиге і Скуга (мс). Стерилізація середовища автоклавуванням
- •Робота 3. Стерилізація рідких середовищ пропусканням через бактеріальний фільтр (холодна стерилізація)
- •Стерилізація рослинного матеріалу Робота 4. Стерилізація насіння і вирощування асептичних рослин
- •Робота 5. Стерилізація бульб, коренеплодів і кореневищ
- •Робота 6. Стерилізація листків
- •Робота 7. Стерилізація меристем
- •Калюсна культура Робота 8. Отримання первинного калюсу із різних експлантатів асептичних рослин
- •Робота 9. Дослідження явища фізіологічної полярності
- •Робота 10. Отримання перевивної калюсної культури
- •Робота 11. Дослідження впливу співвідношення ауксин:цитокінін у живильному середовищі на ріст калюсної тканини та її тип
- •КлітиннА суспензіЯ Робота 12. Отримання клітинної суспензії з калюсної тканини
- •Мікроклональне розмноження рослин Робота 13. Мікроклональне розмноження рослин живцями
- •Робота 14. Стебловий органогенез із листкових дисків тютюну
- •Таблиця 15 Середовища для мікроклонального розмноження тютюну та моркви (1 л середовища)
- •Робота 15. Ризогенез із листкових дисків тютюну
- •Робота 16. Прямий ембріогенез
- •Хід роботи
- •Робота 17. Непрямий ембріогенез
- •Культура ізольованих протопластів вищих рослин Робота 18. Виділення і культивування ізольованих протопластів вищих рослин
- •Словник термінів
- •Список літератури
Робота 2. Приготування середовища Мурасиге і Скуга (мс). Стерилізація середовища автоклавуванням
Мета роботи: приготувати живильне середовище Мурасиге і Скуга (МС) і простерилізувати середовище автоклавуванням.
Матеріали і обладнання: маточні розчини макро- і мікро солей, Fe-хелату і вітамінів, мезо-інозит, сахароза, агар, 1 N HCl і 1N КОН, ваги, шпателі, магнітний змішувач, рН-метр, плитка, автоклав, стакан або колба об’ємом 1 л, мірні циліндри - 500 мл, 100 мл, мірні піпетки - 5 мл, 1 мл, ватні пробки або фольга.
ХІД РОБОТИ
Для приготування 1 л середовища Мурасиге і Скуга (МС) необхідно взяти:
Макро МС 100 мл
Мікро МС 1 мл
Fe-хелат 5 мл
В1 1 мг
В6 1 мг
РР 0,5 мг
мезо-інозит 100 мг
сахароза 30 г (3%)
агар 7 г
1. Для приготування 1 л середовища МС колбу або стакан (1 л) помістити на магнітний змішувач, налити 250-300 мл бідистиляту і додати точно відмірену кількість розчинів макро- і мікросолей, Fe-хелат, вітамінів і фітогормонів, якщо останні входять до складу середовища.
2. Зважити потрібну кількість мезо-інозиту, сахарози і органічних добавок, якщо вони входять до складу середовища. Кожну наважку розчинити у окремій порції бідистильованої води.
3. Довести рН до 5,6-5,8 за допомогою 1N КОН або 1N НСl.
4. Наважку агару помістити у термостійку колбу або стакан, залити холодною бідистильованою водою (300-400 мл), залишити на 20 хв. для набухання і нагріти, постійно помішуючи до повного розчинення агару.
При приготуванні рідкого середовища агар не додається.
5. Додати розчинений агар до розчину 1 і довести до потрібного об’єму бідистильованою водою. Розчин і воду підігріти.
6. Розлити тепле середовище у колби або пробірки і закрити ватними пробками або фольгою.
У колби наливаємо середовище до 1/2-2/3 об’єму.
7. Простерилізувати середовище в автоклаві при тиску 0,8-1 атм (температура 115-1200С ) 20-25 хв залежно від об’єму (табл. 2).
Після закінчення стерилізації середовища в автоклаві варто повільно зменшувати тиск в апараті і відкривати кришку тільки після того, як внутрішній тиск буде дорівнювати зовнішньому ( на манометрі стрілка буде на 0). Інакше, через різку зміну тиску може статися змочування середовищем пробок і навіть їх виштовхування.
Робота 3. Стерилізація рідких середовищ пропусканням через бактеріальний фільтр (холодна стерилізація)
Мета роботи: оволодіти навиками стерилізації середовищ через бактеріальні фільтри; навчитися збирати і стерилізувати фільтри.
Матеріали і обладнання: маточні розчини макро- і мікросолей, вітамінів, Fe-хелату, ваги, шпателі, сахароза, мезоінозит, рН-метр, фільтр Зейтца, колба Бунзена, автоклав, ламінар-бокс, насос Камовського, стерильні колби, закриті фольгою, пробірки, мірні піпетки.
ХІД РОБОТИ
1. Зібрати фільтр Зейтца.
1.1. Розгвинтити металевий корпус фільтра.
1.2. В нижню частину корпуса закласти металеву сітку, потім однакового діаметру з корпусом кільце з тонкої гуми, диск із фільтрувального паперу, ультрафільтр, другий диск фільтрувального паперу і гумове кільце.
Мембранний ультрафільтр має блискучу і матову поверхні, при зборці його слід класти матовою поверхнею в сторону сітки.
1.3. Накласти верхню частину корпуса і пригвинтити її до нижньої, але не повністю.
2. Зібраний фільтр Зейтца за допомогою гумової пробки вмонтувати в колбу Бунзена. На бічний відросток колби одягнути вакуумний шланг. Для запобігання забрудненню з повітря у шланг вставити з’єднану з насосом скляну трубку з ватним тампоном.
3. Зібраний і з’єднаний з колбою фільтр Зейтца загорнути в цупкий обгортковий папір або целофан.
4. Простерилізувати фільтр в автоклаві при 1 атм і 1200С 30 хв.
5. Після автоклавування гвинти, які з’єднують верхню і нижню частини корпуса, туго загвинтити і для забезпечення більшої герметичності залити місця з’єднання пробки з колбою і фільтром парафіном.
6. Приготувати 100 мл рідкого ( без агару )середовища МС ( робота 2 ).
7. Профільтрувати середовище з використанням вакууму (насос Камовського або водоструминний насос).
Фільтрат має повільно скапувати краплинами, якщо ж він стікає швидше, це може свідчити про порушення цілісності фільтра.
Після закінчення фільтрування слід повільно запускати повітря в колбу, інакше ватний тампон засмокчеться всередину і фільтрат буде інфіковано.
8. Послідуючі операції проводити у ламінар-боксі.
Підготувати ламінар-бокс до роботи.
9. Обпалити систему ватним тампоном, змоченим у спирті.
10. У полум’ї спиртівки акуратно від’єднати фільтр Зейтца від колби Бунзена.
11. Обпалити горло колби у полум’ї спиртівки.
12. Перелити фільтрат із колби у стерильну колбу, в якій він буде зберігатися.
13. Обпалити горло колби у полум’ї спиртівки і закрити стерильною фольгою.