- •Предмет, завдання і методологія біотехнології рослин
- •Історія розвитку методу культури клітин, тканин та органів рослин
- •Організація і обладнання біотехнологічної лабораторії
- •Посуд, інструменти і матеріали
- •Миття посуду
- •Методи стерилізації посуду
- •Методи стерилізації інструментів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Живлення культури тканин
- •Мінеральне живлення
- •Вуглеводневе живлення
- •Вітаміни
- •Стимулятори росту
- •Фітогормони
- •Рослинні екстракти
- •РН – середовища
- •Приготування живильних середовищ
- •Стерилізація живильних середовищ
- •Стерилізація рослинного матеріалу
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих органів і зародків
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих клітин і тканин
- •Культура калюсних тканин
- •Особливості калюсних клітин
- •Генетика калюсних клітин
- •Культура клітинних суспензій
- •Культивування ізольованих клітин
- •Методи оцінки результатів
- •Мікроклональне розмноження рослин
- •Методи мікроклонального розмноження рослин
- •Етапи мікроклонального розмноження рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Кріоконсервація клітин рослин
- •Контрольні запитання і завдання
- •Клітинна селекція
- •Спонтанні та індуковані мутанти
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура рослинних клітин і речовини вторинного синтезу
- •Фактори, які впливають на вихід продуктів
- •Компоненти середовища
- •Фізичні фактори
- •Селекція і відбір
- •Утворення вторинних речовин в культурах рослинних тканин
- •Глікозиди
- •Контрольні запитання і завдання
- •Культура ізольованих протопластів і соматична гібридизація
- •Виділення і очистка ізольованих протопластів картоплі
- •Виділення протопластів із мезофілу листка
- •Виділення протопластів із культури клітин
- •Культивування ізольованих протопластів
- •Умови культивування протопластів
- •Злиття ізольованих протопластів
- •Селекція соматичних гібридів
- •Генетична трансформація
- •Вектори для генетичної трансформації рослин
- •Плазміди агробактерій як вектори для трансформації
- •Вектори на основі днк-вмісних вірусів рослин
- •Методи перенесення чужинних генів у рослини
- •Трансгени і екологія
- •Контрольні запитання і завдання
- •Практичний курс Приготування і стерилізація живильних середовищ
- •Таблиця 8
- •Робота 1. Приготування маточних розчинів для середовища Мурасиге і Скуга (мс)
- •Робота 2. Приготування середовища Мурасиге і Скуга (мс). Стерилізація середовища автоклавуванням
- •Робота 3. Стерилізація рідких середовищ пропусканням через бактеріальний фільтр (холодна стерилізація)
- •Стерилізація рослинного матеріалу Робота 4. Стерилізація насіння і вирощування асептичних рослин
- •Робота 5. Стерилізація бульб, коренеплодів і кореневищ
- •Робота 6. Стерилізація листків
- •Робота 7. Стерилізація меристем
- •Калюсна культура Робота 8. Отримання первинного калюсу із різних експлантатів асептичних рослин
- •Робота 9. Дослідження явища фізіологічної полярності
- •Робота 10. Отримання перевивної калюсної культури
- •Робота 11. Дослідження впливу співвідношення ауксин:цитокінін у живильному середовищі на ріст калюсної тканини та її тип
- •КлітиннА суспензіЯ Робота 12. Отримання клітинної суспензії з калюсної тканини
- •Мікроклональне розмноження рослин Робота 13. Мікроклональне розмноження рослин живцями
- •Робота 14. Стебловий органогенез із листкових дисків тютюну
- •Таблиця 15 Середовища для мікроклонального розмноження тютюну та моркви (1 л середовища)
- •Робота 15. Ризогенез із листкових дисків тютюну
- •Робота 16. Прямий ембріогенез
- •Хід роботи
- •Робота 17. Непрямий ембріогенез
- •Культура ізольованих протопластів вищих рослин Робота 18. Виділення і культивування ізольованих протопластів вищих рослин
- •Словник термінів
- •Список літератури
Робота 5. Стерилізація бульб, коренеплодів і кореневищ
Для отримання експлантатів використовують здорові бульби, коренеплоди або кореневища.
Мета роботи: оволодіти методикою стерилізації обпалюванням бульб, коренеплодів і кореневищ, отримати первинний калюс.
Матеріали і обладнання: бульби картоплі, мильний розчин, чашки Петрі з калюсним середовищем №1 ( табл.8 ), пінцети, скальпелі, пробкові свердла, спирт, спиртівка, ламінар-бокс, парафілм.
ХІД РОБОТИ
1. Бульби вимити проточною водою.
2. Обчистити бульби від шкірки.
3. Бульби вимити у мильному розчині, а потім ополоснути дистилятом.
4. У боксі бульбу на кілька секунд занурити у спирт, дати йому стекти і обпалити бульбу у полум’ї спиртівки.
5. Покласти обпалену бульбу у стерильну чашку Петрі.
6. Притримуючи картоплину стерильним пінцетом, скальпелем відрізати частину бульби.
7. Стерильним пробковим свердлом вичленити циліндр з бульби.
8. Циліндр тканини порізати скальпелем на диски, які помістити на середовище для калюсогенезу. Два крайні диски відкинути.
9. Чашки Петрі підписати і закрити парафілмом.
10. Чашки з експлантатами культивувати у термостаті без освітлення при 250+10С.
Як рослинний матеріал в даній роботі можна використати бульби топінамбура, коренеплоди моркви, кореневища женьшеню.
Робота 6. Стерилізація листків
Мета роботи: підібрати оптимальні умови стерилізації листків картоплі, отримати стерильну калюсну культуру.
Матеріали і обладнання: рослини картоплі, вирощені в теплиці, мильний розчин, 70%-й розчин спирту, стаканчики зі стерильною дистильованою водою, концентрований розчин “Білизни”, стаканчики для стерилізуючих розчинів, чашки Петрі зі стерильним калюсним середовищем №1 ( табл.8 ), чашки Петрі зі стерильним фільтрувальним папером, стерильні чашки Петрі, пінцети, скальпелі, спиртівка, спирт, ламінар бокс, парафілм.
ХІД РОБОТИ
1. Приготувати розбавлені розчини “Білизни”( робота 4 ).
2. Інтактні листки картоплі промити у проточній воді, витримати 1-2 хв. у мильному розчині, промити проточною, а потім дистильованою водою.
3. Промиті листки у боксі занурити у 70%-й етанол на 10-15 сек.
4. Рослинний матеріал помістити у стерилізуючий розчин з відповідною концентрацією “Білизни” і витримати відповідний час ( табл. 10 ).
5. Рослинний матеріал відмити у трьох порціях стерильної дистильованої води (витримати по10 хв.).
6. Для підсушування стерильним пінцетом перенести рослинний матеріал у стерильну чашку Петрі з фільтрувальним папером.
7. Стерильний листок розчленити на експлантати по 5-10 мм, які помістити на живильне середовище.
8. Чашку підписати і закрити парафілмом.
9. Чашки з рослинним матеріалом культивувати у термостаті без освітлення при 250+10С.
10. Через 4-7днів визначити оптимальні умови стерилізації. Життєздатність культури оцінити через 25-30 днів: по периметру життєздатного експлантата утвориться калюс.
Результати досліджень представити у таблиці 10.
Таблиця 10
№ п/п |
Концентра-ція розчину “Білизни” |
Тривалість стерилізації (хв) |
Загальна кількість експлан-татів |
Кількість асептичних експлантатів через7 днів |
Кількість життєздатних експлантатів через 30 днів | ||
штук |
% |
штук |
% | ||||
1 2 3 |
1:4
|
10 15 30 |
|
|
|
|
|
4 5 6 |
1:3
|
10 15 30 |
|
|
|
|
|
7 8 9 |
1:2
|
10 15 30 |
|
|
|
|
|
10 11 12 |
1:1 |
10 15 30 |
|
|
|
|
|