Добавил:
Ozzii05
asman00000@mail.ru
Работаю на МРТ, учусь на стоматолога,делитесь со мной файлами в ТГ ozzii05
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Тейлор, Грин, Стаут 1 том [2013].pdf
210 Глава 5
ния необходим искусственный свет. Для
этого используют настольную лампу или
специальный осветитель для микроскопа с
матовой лампочкой. При работе с лампой
накаливания необходимо между ней и
микроскопом поместить лист бумаги. По
верните зеркало плоской поверхностью
вверх так, чтобы свет, отражаясь, попадал
в микроскоп.
2. Сфокусируйте конденсор, не убирая пре
парата с предметного столика. Поднимите
конденсор (рис. 5.36) так, чтобы расстоя
ние между ним и предметным столиком
было не более 5 мм. Глядя в микроскоп,
поворачивайте винт грубой настройки до
тех пор, пока объект не попадет в фокус.
Теперь наводите фокус конденсора до тех
пор, пока изображение лампы не нало
жится точно на препарат. Поместите кон
денсор несколько вне фокуса так, чтобы
изображение лампы исчезло. Теперь осве
щение должно быть оптимальным. В кон
денсор вмонтирована диафрагма. Ею регу
лируют величину отверстия, через которое
проходит свет. Это отверстие должно быть
открыто как можно шире. Таким образом
достигается максимальная четкость изо
бражения.
3. Поворачивайте револьверную головку до
тех пор, пока объектив большого увеличе
u40 или 4 мм) не попадет в паз. Если
ния (
на малом увеличении фокус уже был уста
новлен, то при повороте револьверной го
ловки объектив большого увеличения ав
томатически установится приблизительно
в фокусе. Фокусирование всегда произво
дите движением объектива вверх с по
мощью винта тонкой настройки.
4. Если при движении объектива с линзами
большого увеличения фокус не устанавли
вается, сделайте следующее: глядя на
предметный столик сбоку, опускайте ту
бус микроскопа до тех пор, пока линза
почти не коснется препарата. Следите за
отражением линзы объектива на препара
те и добивайтесь того, чтобы линза почти
коснулась своего изображения.
5. Глядя в микроскоп и поворачивая винт
тонкой настройки, медленно поднимайте
объектив до тех пор, пока изображение не
попадет в фокус.
Масляная иммерсия
Для того чтобы получить более сильное увеличе
ние, чем при работе с обычным объективом
большого увеличения (
пользовать масляноиммерсионную линзу. Спо
собность линзы собирать свет в значительной
степени усиливается, если между линзой объек
тива и покровным стеклом поместить жидкость.
Жидкость должна иметь тот же коэффициент
преломления, что и сама линза. Поэтому в каче
стве жидкости обычно используют кедровое
масло.
1. Положите препарат на предметный сто
лик и сфокусируйте изображение так же,
как при работе с обычным большим уве
личением. Вместо объектива с линзой
большого увеличения установите объек
тив с масляноиммерсионной линзой.
2. Капните каплю кедрового масла на по
кровное стекло непосредственно над ис
следуемым объектом.
3. Снова сфокусируйте изображение теперь
уже под малым увеличением, затем пово
ротом револьверной головки установите
объектив с масляноиммерсионной лин
зой так, чтобы его кончик касался капли
масла.
4. Глядя в микроскоп, очень осторожно сфо
кусируйте линзу с помощью винта тонкой
настройки. Помните, что фокусная пло
скость линзы находится всего в 1 мм от по
верхности покровного стекла.
5. Кончив работу, сотрите с линзы масло
мягкой тряпочкой.
u400), необходимо ис
Измерение микроскопических объектов
(микрометрия)
Совершенно очевидна необходимость уметь оп
ределять точные размеры структур, изучаемых с
помощью микроскопа. Измерение микроскопи
ческих объектов называется микрометрией. Для
этого существуют специальные шкалы, или мик
рометры. Одну такую шкалу (окулярмикрометр)
вставляют в окуляр, а другую (объектмикрометр)
помещают на предметный столик (рис. 5.37).
Обе шкалы равномерные, причем абсолютное
значение одного деления известно только для
объектмикрометра.
Клетки 211
(
)
Рис. 5.37. А. Окулярмикрометр. Б. Типичная шкала объектмикрометра. Общая длина — 1 мм.
212 Глава 5
Обращайтесь с микрометрами осторожно,
следите, чтобы на них не осталось отпечатков
пальцев. Держите их только за края, чтобы слу
чайно не поцарапать.
Прежде чем измерять с помощью окулярмик
рометра какойнибудь объект, нужно установить
цену деления окулярмикрометра при каждом из
увеличений. Иными словами, нужно откалибро
вать окулярмикрометр. Для этого на предметный
столик помещают вместо препарата объектмик
рометр и отсчитывают, сколько его делений при
ходится на известное число делений окулярмик
рометра при данном увеличении. Порядок дей
ствий следующий:
1. Отвинтите верхнюю линзу окуляра и
вставьте в окуляр микрометр, следя за тем,
чтобы шкала была обращена кверху. Мик
рометр будет при этом лежать горизон
тально, опираясь на выступ внутри окуля
ра. Верните линзу на место.
2. На предметный столик поместите объект
микрометр. Свет должен проходить через
шкалу (она должна быть хорошо видна в
микроскоп).
3. Поворотом револьверной головки по
ставьте на место объектив малого увеличе
ния и медленно поднимайте его винтом
грубой настройки до тех пор, пока шкала
не попадет в фокус.
4. Вращая линзу окуляра, установите шкалу
окулярмикрометра параллельно шкале
объектмикрометра, а затем передвиньте
последнюю так, чтобы показания обеих
шкал можно было сопоставлять.
5. Определите возможно более точно, сколь
ко делений объектмикрометра приходится
на известное число делений окулярмикро
метра. (Чем больше делений вы возьмете,
тем большей будет точность.).
6. Цена деления объектмикрометра может
быть 0,1 или 0,01 мм (эта величина на нем
указана). Зная ее, вы можете рассчитать
абсолютное значение одного деления
окулярмикрометра для данного увеличе
ния.
7. Повторите ту же процедуру для других
линз объектива, с которыми вы намерены
работать (а, если необходимо, то и для лю
бых других линз окуляра). Калибровка
каждого окулярмикрометра всегда рассчи
Рис. 5.38. График для перевода делений окулярмикро
метра в микрометры.
тана только на данный набор линз и дан
ный микроскоп.
8. Уберите с предметного столика объект
микрометр и поставьте на его место препа
рат. Теперь вы можете измерить любую
часть препарата в делениях шкалы окуляр
микрометра. Поворачивая линзу окуляра,
устанавливайте шкалу окулярмикрометра
параллельно той части препарата, которую
вы собираетесь измерить.
Легче переводить деления окулярмикрометра
в абсолютные величины с помощью графика.
При этом по оси ординат откладывают число
делений окулярмикрометра, например 100, а
по оси абсцисс — размеры в миллиметрах
(рис. 5.38). Найдите для каждого увеличения две
точки, соответствующие 1 и 100 делениям оку
лярмикрометра, и соедините их прямой. По
стройте в одних и тех же координатах такие
графики для каждого увеличения, используя
подходящие шкалы для оси абсцисс. Теперь вы
можете определить величину в миллиметрах для
любого числа делений окулярмикрометра при
любом увеличении. Такие графики всегда удоб
но хранить под рукой вместе с микроскопом.
5.12. Микроскопические методы
5.12.1. Подготовка материала для работы
с микроскопом
Биологические объекты можно исследовать как
живыми, так и фиксированными. В последнем
Клетки 213
случае для более тщательного изучения материал
можно разделить на части и обработать различ
ными красителями, чтобы выявить и идентифи
цировать те или иные структуры. Из исследуемо
го объекта можно приготовить временные или
постоянные препараты.
5.12.2. Постоянные препараты
Фиксация
Фиксация — это сохранение материала в состоя
нии, близком к естественному. Для этого необ
ходимо быстро умертвить ткани, что лучше всего
удается с небольшими кусочками живого мате
риала. Используемое для этого вещество называ
ется фиксатором. Быстрой фиксацией достигает
ся сохранение изначальной структуры объекта,
причем ткани уплотняются настолько, что с них
можно готовить тонкие срезы.
Обезвоживание
Обезвоживание проводится при подготовке
материала к заливке или для заключения его в
соответствующую среду (см. ниже), которая не
смешивается с водой. Воду необходимо удалить
также потому, что иначе препарат будет со вре
менем разрушен бактериями. Для того чтобы
сохранить ультраструктуру, обезвоживание
надо проводить постепенно, обрабатывая мате
риал рядом водных растворов этанола или про
панона (ацетона) со все возрастающей концен
трацией, и закончить обработку «абсолютным»
(безводным) этанолом или пропаноном.
Просветление
Некоторые из общеупотребительных сред для
заливки и заключения не смешиваются со спир
том. Поэтому его надо постепенно замещать сре
дой (просветляющим веществом), с которой зали
вочная среда смешивается, например ксилолом.
Это приводит также к тому, что материал стано
вится прозрачным.
фин, которому затем дают остыть. Для элект
ронной микроскопии приходится использо
вать более твердые вещества (пластмассы или
смолы), поскольку здесь необходимы особо
тонкие срезы, а значит, и опора должна быть
более плотной.
Изготовление срезов
Как правило, толщина кусочков материала
слишком велика, чтобы сквозь них могло пройти
достаточное для исследования под микроскопом
количество света. Обычно приходится срезать
очень тонкий слой исследуемого материала, т. е.
готовить срезы. Срезы можно делать бритвой или
на микротоме. Вручную срезы готовятся с по
мощью остро отточенной бритвы. Для работы на
обычном микроскопе срезы должны быть тол
щиной 8–12 мкм. Ткань закрепляют между дву
мя кусочками сердцевины бузины. Бритву сма
чивают жидкостью, в которой хранилась ткань;
срез делают через бузину и ткань, причем бритву
держат горизонтально и двигают ее к себе мед
ленным скользящим движением, направленным
чуть вкось. Быстро сделав несколько срезов, сле
дует выбрать из них самый тонкий, содержащий
характерные участки ткани.
Срез с ткани, залитой в ту или иную среду,
можно сделать на микротоме. Для светового мик
роскопа срезы толщиной в несколько микромет
ров можно сделать с залитой в парафин ткани
с помощью специального стального ножа. На
ультратоме изготавливают чрезвычайно тонкие
срезы (20–100 нм) для электронного микроско
па. В этом случае необходим алмазный или стек
лянный нож.
Срезы для светового микроскопа можно при
готовить, не заливая материал в среду; для этого
используют замораживающий микротом. В процес
се приготовления замороженного среза образец
сохраняется в замороженном и, следовательно,
в твердом состоянии.
Окрашивание
Заливка
Для того чтобы с помощью микротома полу
чить очень тонкий срез, необходимо, чтобы ма
териал был залит в соответствующую опорную
среду. При приготовлении препаратов для све
товой микроскопии объекты заливают в пара
Как правило, биологические структуры на пре
паратах прозрачны, поэтому для получения
контраста между ними приходится прибегать
к различным средствам. Самым распространен
ным является окрашивание. Некоторые краси
тели, используемые в световой микроскопии,
перечислены в табл. 5.5.
214 Глава 5
Таблица 5.5. Красители, применяемые для окрашивания растительных и животных тканей
Краситель Окончательный цвет Окрашиваемый материал
Постоянные красители
Анилиновый синий
в лактофеноле
Краситель Лейшмана
Эозин
Светлый зеленый Зеленый
или прочный зеленый
Временные красители
Анилина гидрохлорид
или анилина сульфат
Раствор Шульца
(хлорцинкйод)
конц. НCl
Синий
РозовыйБорный кармин
СинийГематоксилин
Краснорозовый
Синий
Красный или пурпурныйКраситель Фёльгена
СинийМетиленовый синий
Красный Сафранин
Розовый
Красный
СинечерныйРаствор йода
Желтый
Синий
Синий или фиолетовый
Гифы грибов и споры
Ядра; особенно для крупных препара
тов животного материала, например ко
лонии Obelia
Ядра; главным образом для срезов жи
вотных тканей в сочетании с эозином,
окрашивающим цитоплазму; также для
мазков
Клетки крови
Ядра лейкоцитов
ДНК; особенно хорошо выявляет хро
мосомы во время клеточного деления
Ядра (раствор 0,125% метиленового си
него в 0,75% NaCl годен как прижиз
ненный краситель)
Ядра; лигнин и суберин у растений;
используется в основном для срезов
растительных тканей в сочетании со
светлым зеленым для окрашивания ци
топлазмы
Цитоплазма (см. гематоксилин)
Целлюлоза
Цитоплазма и целлюлоза (см. сафра
нин)
ЛигнинЖелтый
Крахмал
Лигнин, кутин, суберин, белок
Крахмал
Целлюлоза
ЛигнинКрасный Флороглюцинол +
Определенные красители в низких концент
рациях не токсичны для живых тканей и поэто
му могут применяться для окрашивания живого
материала. Их называют прижизненными (виталь
ными) красителями. К ним относятся, напри
мер, метиленовый синий и нейтральный крас
ный.
При окрашивании парафиновых срезов па
рафин удаляют с помощью растворителя,
а срез перед окрашиванием частично обвод
няют.
Заключение
Полностью окрашенные срезы заключают на
предметном стекле в специальную среду, напри
мер в канадский бальзам или эупарол; она не
пропускает воздух, так что срез может сохранять
ся в ней неограниченно долго. Заключенный в
среду срез накрывают покровным стеклом.
Последовательность описанных выше дейст
вий типична, когда речь идет о приготовлении
Клетки 215
Таблица 5.6. Различия в подготовке материалов для светового и электронного микроскопов
Обработка Для светового микроскопа Для электронного микроскопа
Фиксация
Обезвоживание
Как для электронного микроскопа или, на
пример, 99 частей этанола + 1 часть ледяной
уксусной кислоты или 70%ный этанол (но в
этом случае происходит сморщивание и по
вреждение тонких структур)
Ряд растворов этанола или пропанона в возрастающей концентрации
ПарафинЗаливка
Стальной ножПриготовление срезов
Используется микротом
Срезы толщиной в несколько микрометров
Цветные красители (отражают видимый свет)Окрашивание
тонких срезов для постоянных препаратов. Од
нако часто в порядок действий вносят два следу
ющих изменения:
а) если срез сырого материала готовят вруч
ную, то сначала делают срез, а потом его
фиксируют;
б) окрашивать можно после фиксации или
же в процессе обезвоживания на какой
либо его стадии. Например, красителем,
растворенным в 50%ном этаноле, можно
окрасить срез после его обезвоживания в
50%ном этаноле.
Часто используется глутаральдегид или
смесь глутаральдегида и осмиевой кис
лоты (OsO
липиды и, следовательно, мембраны в
черный цвет. Маленькие кусочки мате
риала фиксируются быстрее и в них
лучше сохраняются тонкие структуры
Смола (например, аралдит, эпон) или
пластмасса
Только алмазный и стеклянный ножи
являются достаточно острыми, чтобы
сделать ультратонкие срезы
Используется ультратом
Срезы толщиной 20–100 нм
Тяжелые металлы, например соедине
ния осмия, урана, свинца (отражают
электроны)
). OsO4также окрашивает
4
весину, например, мацерируют). Срез свежего
материала можно сделать вручную с помощью
бритвы непосредственно в 70%ном этаноле,
который служит фиксатором. Для окрашивания
и заключения можно использовать ряд времен
ных красителей; некоторые из них, пригодные
для окрашивания растительного материала,
приведены в табл. 5.5. Каждый срез следует по
местить на чистое предметное стекло (предвари
тельно протертое спиртом) и капнуть на него
несколько капель красителя. При окрашивании
флороглюцинолом добавляют также одну каплю
концентрированной соляной кислоты. Затем
Описанная процедура приготовления препа
ратов в основном сходна как для светового, так и
для электронного микроскопов, хотя существу
ют некоторые различия в деталях (они перечис
лены в табл. 5.6).
5.12.3. Временные препараты
Временные препараты для светового микроско
па в отличие от постоянных можно сделать срав
нительно быстро. Они пригодны для проведе
ния быстрых предварительных исследований.
Материал для этого фиксируют, окрашивают и
заключают в ту или иную среду. Срезы можно
приготовить до фиксации или мацерации (дре
Рис. 5.39. Заключение препарата и наложение покров
ного стекла на предметное.
216 Глава 5
препарат накрывают тонким покровным стек
лом, чтобы предотвратить попадание воздуха и
пыли и предохранить от загрязнения объектив
большого увеличения (рис. 5.39). Если образец
начнет подсыхать или если заранее известно,
что потребуется длительное изучение (более
10 мин), то после окрашивания препарат следу
ет заключить в глицерол.
5.13. Рисунки в биологии
Цель
1. Документировать результаты работы для
использования в дальнейшем.
2. Дополнить визуальное наблюдение и дать
возможность рассмотреть исследуемый
объект более полно и точно.
3. Способствовать запоминанию, зарисовы
вая то, что вы видите.
Правила
1. Необходимо использовать бумагу для ри
сования соответствующей толщины и ка
чества. С нее должны хорошо стираться
карандашные линии.
2. Карандаши должны быть острыми, твер
дости HB, не цветными.
3. Рисунок должен быть:
а) достаточно крупным — чем больше эле
ментов составляют исследуемый объект,
тем крупнее должен быть рисунок; он дол
жен, как правило, занимать более полови
ны листа;
б) тщательно выполненным — должны со
блюдаться соотношения различных частей
объекта. Если объект имеет несколько
сходных частей, необходимо точно выри
совывать их мелкие детали;
в) нарисован тонкими и отчетливыми лини
ями — каждую линию необходимо проду
мать и затем нарисовать без отрыва каран
даша от бумаги; не штриховать и не рас
крашивать;
г) надписи должны быть по возможности
полными, идущие от них линии не долж
ны пересекаться; оставляйте вокруг ри
сунка место для надписей (желательно
располагать их вертикально). К надписям
могут быть сделаны примечания по пово
ду, например, интенсивности или оттенка
окраски, усыхания ткани, какихлибо не
обычных или, наоборот, характерных осо
бенностей образца.
4. При необходимости следует делать два ри
сунка: а) схематичный рисунок, показыва
ющий основные черты, и б) только детали
мелких частей. Например, при малом уве
личении нарисовать план поперечного се
чения растения, на котором будут видны
только различные ткани, но не отдельные
клетки, и при большом увеличении — де
тальное строение клеток (крупно нарисо
ванную часть рисунка обводят на плане
клином или квадратом).
5. Рисовать следует только то, что вы дейст
вительно видите, а не то, что, как вам
кажется, вы должны видеть, и, конечно
же, не копировать рисунок из книги.
6. Каждый рисунок должен иметь название,
указание об увеличении и о проекции
образца (например, ПС, ПрС и т. д.) и объ
яснительную записку. Все это следует по
мещать в определенном месте, например
в правом верхнем углу страницы. Если
возможно, должен быть указан также мас
штаб.
7. Идущие от надписей линии (их следует
проводить по линейке) должны заканчи
ваться точно у той структуры, к которой
относится надпись, причем надписями
должны быть снабжены все структуры, ко
торые могут представлять интерес.
Опыт 5.1. Окрашивание крахмала
в растительных тканях
Разбавленный раствор йода в йодистом калии
/KI) можно использовать для окрашивания
(I
2
крахмала в тканях в темносиний цвет. Крах
мал — это углевод, запасаемый обычно в
растительных клетках в виде мелких зерен.
Крахмальные зерна легко наблюдать, если
провести по предметному стеклу разрезанным
клубнем картофеля, а затем окрасить мазок
раствором I
/KI окрашивает также лигнифицированные
I
2
ткани (такие, как ксилема и склеренхима) в
яркожелтый цвет, а нелигнифицированные —
в бледножелтый. Ядра в клетках выглядят
при этом более яркими, чем цитоплазма.
/KI. Помимо крахмала раствор
2
Клетки 217
Материалы и оборудование
Микроскоп и источник света
Окулярмикрометр и объектмикрометр
Чистые стекла, предметное и покровное
Тонкая кисточка для переноса срезов
Ткань для протирки линз
Обыкновенная бумага
Игла с ручкой
Пипетка для красителя (если бутылочка с красителем
не снабжена капельницей)
Фильтровальная бумага
Раствор йода в йодистом калии
5%ный раствор глицерола в бутылочке с капельницей
Срез органа какогонибудь растения, например стебля
яснотки белой (Lamium album)
Приготовление раствора I2/KI
Растворить около 1 г йода и 2 г йодистого калия в
300 мл воды. Если нужен более концентрирован
ный раствор, можно взять меньше воды. (Следу
ет соблюдать предосторожности, обычные при
работе с йодом.) Тонкие свежие срезы можно
приготовить с помощью бритвы, зажав стебель
между двумя кусочками сердцевины бузины. Де
лать их следует в 70%ном спирте.
Методика
1. Перенесите кисточкой предназначенный
для изучения срез на предметное стекло и
поместите его в центр стекла.
2. Добавьте две капли раствора I
каплю 5%ного глицерола (чтобы замед
лить испарение и не дать образцу слишком
быстро подсохнуть).
3. Накройте срез покровным стеклом, как
показано на рис. 5.39.
4. Внимательно изучите срез под микроско
пом. Особо отметьте распределение тем
ноокрашенных крахмальных зерен. В пре
парате могут обнаружиться воздушные пу
/KI и одну
2
зырьки с темным контуром, явно пустые.
На них не следует обращать внимания.
5. Зарисуйте план поперечного сечения
стебля яснотки белой при малом увеличе
нии. Главная цель — точно обвести конту
ром площадь, занимаемую каждой
тканью. При этом полезно учесть, что:
а) у яснотки белой в каждом углу ее ребри
стого стебля имеется особая опорная
ткань — колленхима.
б) размеры сосудистых пучков варьируют.
Между сосудистыми пучками иногда за
кладываются дополнительные тяжи кси
лемы и флоэмы и тогда вся эта проводя
щая ткань может в конечном счете образо
вать один сплошной цилиндр.
6. Снабдите нарисованный при малом уве
личении план надписями и укажите ли
нейное увеличение рисунка.
7. Отметьте, какие ткани содержат крахмал.
Особенно много крахмальных зерен в так
называемом крахмалоносном влагалище. Его
следует зарисовать и снабдить надписью, а
под рисунком, в примечании, описать, как
распределяются в его клетках крахмальные
зерна.
8. Проверьте утверждение, что средний раз
мер клеток паренхимы в кожице стебля
яснотки белой во внутренних ее слоях
больше, чем в наружных.
Для этого проведите соответствующие изме
рения с помощью окулярмикрометра во внут
ренних и наружных участках кожицы. Подроб
но опишите использованный метод. Запишите
полученные результаты в делениях окулярмик
рометра. Переведите эти величины в микромет
ры, для чего откалибруйте свой окулярмикро
метр.
Подтвердили ли ваши измерения утвержде
ние, о котором идет речь?
6
6
ГИСТОЛОГИЯ
истологией называется наука, изучающая
ткани. У всех многоклеточных организ
Г
мов имеются группы клеток, сходных по
строению и функциям, иначе говоря, ткани.
Ткань можно определить как группу физически
объединенных клеток и связанных с ними меж
клеточных веществ, специализированную для
выполнения одной или нескольких функций.
Клетки одной ткани имеют обычно и общее про
исхождение, т. е. развиваются из одной области
зародыша. Специализация, или приспособлен
ность каждой ткани для выполнения той или
иной конкретной функции, повышает эффек
тивность работы всего организма за счет эффек
та от разделения труда.
Существуют — главным образом у животных –
и более высокие уровни организации, нежели тот,
который характерен для тканей. Различные тка
ни, объединяясь в функциональные единицы,
образуют органы, например сердце или желудок.
В организме животного органы входят в состав
еще более крупных функциональных единиц, ко
торые называются системами; в качестве примера
таких систем можно назвать пищеварительную
(поджелудочная железа, печень, желудок, две
надцатиперстная кишка и т. д.) или сердечносо
судистую (сердце и кровеносные сосуды).
Все клетки данной ткани могут быть одно
типны, например у растений из клеток одного
типа могут быть построены паренхима, коллен
хима и пробка, а у животных — плоский эпите
лий. В качестве тканей, содержащих клетки раз
ных типов, можно назвать у растений ксилему и
флоэму, а у животных — некоторые виды соеди
нительной ткани.
Изучение структуры и функции тканей осно
вывается главным образом на световой микро
скопии с использованием различных приемов
фиксации материала, его окрашивания и приго
товления срезов (см. соответствующие методики
в разд. 5.11 и 5.12).
В этой главе мы займемся гистологией на
уровне, доступном световому микроскопу. В не
которых случаях для большей ясности придется
привлекать и данные, полученные с помощью
электронного микроскопа. При выявлении за
висимости между структурой и функцией ткани
важно помнить о трехмерности клеточных ком
понентов и об их связях друг с другом. Инфор
мация такого рода собирается «по кусочкам»,
путем изучения тонких срезов ткани, большей
частью поперечных и продольных. Ни те, ни
другие в отдельности не способны дать все необ
ходимые сведения, но в сочетании они часто по
зволяют получить интересующую нас картину.
Некоторые клетки, например сосуды и трахеи
ды ксилемы, удается наблюдать в целом виде,
предварительно подвергнув растительные ткани
мацерации; при этом мягкие ткани разрушают
ся, а более прочные, пропитанные лигнином ги
стологические элементы ксилемы — сосуды,
трахеиды и древесинные волокна
1
Данные о строении некоторых растительных тка
ней можно найти в разных разделах книги. В частности,
строение флоэмы более подробно описано в гл. 13, где
рассматривается связь между строением этой ткани и ее
транспортной функцией. Развитие растительных тка
ней из меристематических клеток обсуждается в гл. 22
вместе с такими вопросами, как вторичный рост и стро
ение древесины (вторичной ксилемы) и луба.
1
— остаются.
Гистология 219
Таблица 6.1. Основные характеристики, функции и распределение растительных тканей
1
Ткань Основные Мертвая Материал Форма клеток Распределение
функции или живая клеточных
стенок
Паренхима
Опора в травянистых
растениях. Метаболи
чески активна. Сис
тема воздухоносных
межклетников обес
печивает газообмен.
ЖиваяВыполняющая ткань.
Целлюлоза, пек
тины и гемицел
люлозы
Обычно изоди
аметрическая,
иногда вытяну
тая
Кора, сердце
вина, сердце
винные лучи; в
ксилеме и фло
эме — древе
синная и лубя
ная паренхима
Хранение запасных
продуктов. Транспорт
веществ по клеткам
или через клеточные
стенки
Модифицированная паренхима
а) Эпидермис
и от проникновения
болезнетворных орга
низмов. Волоски и же
лезы могут нести до
полнительные функ
ЖиваяЗащита от высыхания
Целлюлоза, пек
тины и гемицел
люлозы, пленка
кутина, покрыва
Вытянутая и уп
лощенная
Покрывает пер
вичное тело рас
тения одним
слоем
ющая клеточную
стенку
ции
б) Мезофилл
жит хлоропласты). За
пасание крахмала
в) Эндодерма
ницаемый барьер на
пути движения воды
и минеральных солей
ЖиваяФотосинтез (содер
Целлюлоза, пек
тины и гемицел
люлозы
ЖиваяИзбирательно про
Целлюлоза, пек
тины и гемицел
люлозы, отложе
ния суберина
(между корой и ксиле
мой) в корне. Крахма
лоносное влагалище,
возможно играющее
роль в геотропической
реакции стеблей
г) Перицикл
меристематическую
активность, образуя
ЖиваяВ корнях сохраняет
Целлюлоза, пек
тины и гемицел
люлозы
боковые корни и при
нимая участие во вто
ричном росте (там, где
последний имеет мес
то)
Примечание: В стебле перицикл имеет иное строение и состоит из склеренхимы
Изодиаметри
ческая, непра
вильная или
столбчатая в за
висимости от
местоположе
ния
Такая же, как у
клеток эпидер
миса
Такая же, как у
паренхимных
клеток
Между верхним
и нижним эпи
дермисом лис
тьев
Окружает про
водящую ткань
(эндодерма —
самый внутрен
ний слой коры)
В корнях меж
ду централь
ной проводя
щей тканью и
эндодермой