- •Введение
- •Тема 1: Строение и свойства аминокислот. Методы исследования аминокислот.
- •7. Этапы занятия и контроль их усвоения
- •Тема 2: Структурная организация белковых молекул. Методы количественного определения белка.
- •7. Этапы занятия и контроль их усвоения
- •Количественные методы определения белков
- •Лабораторная работа №2
- •Основные понятия фотоколориметрии
- •Устройство и принцип работы фотоэлектроколориметра
- •Тестовый контроль по теме « Строение белковой молекулы»
- •Тема 3 Физико-химические свойства растворов белков. Диализ. Осадочные реакции. Разделение смеси белков методом электрофореза.
- •2. Цель занятия:
- •3. Конкретные задачи:
- •5. Задание для самоподготовки:
- •Практическое применение осадочных реакций
- •Лабораторная работа № 3
- •Реактивы и оборудование
- •II.Диализ
- •III. Фракционное высаливание белков. Разделение альбуминов и глобулинов
- •Iy.Электрофорез
- •Осадочные пробы на белок
- •Тема 4: "Изучение свойств и биологической роли витаминов водорастворимой группы. Методы исследования свойств витаминов и количественного определения витамина с.
- •6. Вопросы для самоподготовки:
- •Лабораторная работа № 4 Количественное определение витамина с (аскорбиновой кислоты) в пищевых продуктах и в моче по методу Тильманса
- •Определение содержания витамина «с» в хвое и свежей капусте.
- •Определение содержания витамина «с» в сыром и вареном картофеле и в квашеной капусте.
- •Содержание витамина «с» в различных продуктах и моче
- •Тестовый контроль по теме « Витамины»
- •Установите строгое соответствие
- •3. Конкретные задачи.
- •4. Мотивация.
- •6. Вопросы для самоподготовки:
- •Специфичность действия ферментов
- •Тема 6: "Активация и ингибирование ферментов.
- •3. Конкретные задачи.
- •Лабораторная работа №6 Количественное определение активности сывороточной холинэстеразы. Изучение ингибирующего действия карбофоса и активирующего действия ионов кальция.
- •Клиническое значение определения активности сывороточной хэ.
- •Количественное определение активности тканевых дегидрогеназ и изучение действия их ингибиторов
- •Применение метода в санитарно-гигиенических исследованиях
- •Количественное определение активности дегидрогеназы янтарной кислоты (сукцинатдегидрогеназы, к. Ф. 1.3.99.1) тетразолиевым методом
- •Определение общей активности лактатдегидрогеназы (к.Ф. 1.1.1.27) и ее изоферментов.
- •Клиническое значение определения активности лактатдегидрогеназы.
- •Методы определения активности ферментов
- •Тест 12
- •Тест 13
- •Тест 14
- •Тест 15
- •Тема 7: "Энзимодиагностика и энзимотерапия. Клинико-диагностическое значение определения белкового спекра крови."
- •Тема 8 Программа контрольной работы по теме «Химия белков и ферментов. Витамины».
- •195067, Санкт-Петербург, Пискаревский пр.,д. 47
- •394019, Г. Воронеж, ул. Еремеева, 22ж
II.Диализ
Ход работы: в 2 пробирки наливают раствор яичного белка, содержащего примесь хлорида натрия; в одной делают биуретовую реакцию, в другой реакцию на ионы хлора с нитратом серебра в присутствии азотной кислоты – 5к. белка + 3 к. AgNO3 . в двух других пробирках делают те же реакции с дистиллированной водой. Раствор яичного белка наливают в диализатор, который погружают в стакан с дистиллированной водой. Через 1 час вынимают диализатор из стакана и вновь, с небольшими порциями воды (диализата) и раствора яичного белка (диализируемой жидкости), проделывают биуретовую реакцию и реакцию на ионы хлора.
Название реакции |
Диализируемая жидкость (солевой раствор белка – содержимое внутреннего такана) |
Диализат (содержимое наружного стакана)
|
||
|
до опыта |
после опыта |
до опыта |
до опыта |
1. биуретовая
2. на ионы хлора
|
|
|
|
|
Вывод
Методы разделения белков.
1) Высаливание нейтральными солями
2) Хроматография
3) Гель-фильтрация
4) Ультрацетрифугирование
5) Изоэлектрофокусирование
6) Температурная денатурация
7) Иммунологические методы
8) Электрофорез
III. Фракционное высаливание белков. Разделение альбуминов и глобулинов
Ход работы: к 1 мл раствора белка добавляют равный объем (1 мл) насыщенного (50%) раствора сульфата аммония, хорошо перемешивают и оставляют на 10 мин для более полного осаждения белка. Через 10 минут образовавшийся осадок отфильтровывают через складчатый фильтр. В фильтрат добавляют крупинки кристаллического сульфата аммония до появления осадка (образуется 100% р-р сульфата аммония).
Результаты
№ пробирки |
Субстрат |
Степень насыщения раствора сульфата аммония |
Результат |
Какой белок выпадает в осадок |
1.
2.
|
|
|
|
|
Вывод:
Iy.Электрофорез
В плазме крови человека содержится 65-85 г/л белка, представленного различными про своему происхождению и свойствам фракциями. При различных острых и хронических заболеваниях, а также в результате действия многих повреждающих факторов внешней среды, таких как тяжелые металлы, окислители, органические растворители, хлорпроизводные, фосфорорганические соединения, вибрация, ультразвук и т.д. происходит изменение содержания в крови не только общего белка, но и белковых фракций (диспротеинемия). Выявление таких изменений имеет существенное клинико-диагностическое значение.
В разделении белковых фракций сыворотки крови основное значение принадлежит электрофорезу. Принцип этого метода основан на способности заряженных частиц (в том числе белков) перемещаться под действием электрического поля в зависимости от знака их заряда.
Скорость движения частиц в электрическом поле зависит от:
1. величины суммарного заряда частиц
2. размера и формы частиц
3. силы электрического тока и напряжения
4. свойств носителя, на котором проводят разделение
5. рН буферного раствора
6. температуры.
Виды электрофореза:
1. По направлению движения частиц основными являются два вида электрофореза горизонтальный и вертикальный.
2. По приборному оформлению:
- на пластинках;
- в трубочках
- в колонках
- капиллярный
3. По используемому носителю:
- на бумаге;
- на ацетатцеллюлозных мембранах;
- в геле (крахмальном, агарозном, полиакриламидном);
- без поддерживающей среды.
4. По интенсивности электрического поля:
- низковольтный (при используемом напряжении < 500 В)
- высоковольтный (при напряжении > 500 В)
Техника электрофореза впервые была предложена Тизелиусом в 1937 году.
Для проведения электрофореза требуются: источник постоянного тока и камера, заполненная буфером. Камера состоит из двух сообщающихся отделений: в одном находится электрод, в другом – конец поддерживающей среды, на которую наносится исследуемый материал (сыворотка крови).
Выбор буферного раствора определяется характером заряда исследуемых веществ. Для разделения сывороточных белков используют буферы с рН=8,6 (например, мединал-вероналовый). При такой величине рН молекулы белка заряжены отрицательно и их движение направлено к аноду.
В качестве поддерживающей среды для электрофореза используются:
1. Фильтровальная бумага: разделение проводится при низком напряжении поля, поэтому длится 16-18 часов, границы между отдельными фракциями получаются нечеткими, можно получить 5 основных белковых фракций сыворотки крови.
2. Пленки из ацетатцеллюлозы: дорогостоящие, разделение занимает меньше времени (30-40 минут), более эффективно. Получают также 5 фракций.Широко применяется для разделения и идентификации липопротеинов, изоферментов, гемоглобинов и для разделения белков мочи
3.Агар или агарозный гель представляют собой гетерополисахариды, менее дорогостоящие, чем ацетатцеллюлозные пленки, по эффективности не уступают им, разделение занимает около 90 минут; используются также при иммуноэлектрофорезе.
4. Крахмальный гель: обладает всеми преимуществами других гелей, характерен эффект молекулярного сита; используется, в основном , для предварительного разделения смеси белков.
5. Полиакриламидный гель: наиболее широко применяется; обладает высоким эффектом молекулярного сита; высокая эффективность разделения; можно получить до 20 белковых фракций сыворотки крови и более.
Этапы электрофореза:
1. Смоченную в буфере поддерживающую среду (носитель) помещают в камеру, заполненную буфером, и наносят на нее исследуемые пробы.
2. Подключают электроды и пропускают электрический ток и в течение определенного времени (зависит от поддерживающей среды) проводят разделение.
3. Фиксация проб с помощью ацетона, метанола или высокой температуры.
4. Окрашивание проб с помощью красителей (амидо черный, бромфеноловый синий, пунцовый S).
5. Удаление избытка красителя. Промывка электрофореграмм.
6.Определение процентного содержания фракций белка
- Сканирование электрофореграмм с помощью денситометра. В денситометре свет проходит через гель, поглощение света прямопропор-ционально количеству белка.
- Еще одним методом является элюирование окраски из основы с последующим колориметрическим измерением поглощения растворов. Но этот метод более трудоемкий и менее точный, и в настоящее время не используется в клинической практике.
7. Оценка полученных результатов.
В сыворотке крови человека в норме содержится альбумины – 55-65%; глобулины a1-2-5%; глобулины a2 –6-11%; глобулины b -11-15%; глобули-
ны g - 15-22%.