Добавил:
asman00000@mail.ru Работаю на МРТ, учусь на стоматолога,делитесь со мной файлами в ТГ ozzii05 Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Тейлор, Грин, Стаут 2 том [2013].pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
05.09.2026
Размер:
19 Мб
Скачать
☆
260 Глава 16
16.14. Объясните роль запасных белков алейронового слоя, ориентируясь на рис. 16.20.
Опыт 16.2. Проверка двух гипотез: а) что гиббереллин стимулирует расщепление крахмала
в прорастающих зернах ячменя;
б) что гиббереллин образуется в зародыше
Присутствие амилазы в зернах ячменя можно установить, поместив половинку зерна поверх ностью среза на влажный агар, содержащий крахмал. Амилаза будет диффундировать в агар и катализировать расщепление крахмала. Если затем на поверхность агара поместить каплю иода, то нерасщепленный крахмал окрасится в синечерный цвет, а вокруг семени останется светлая зона, размеры которой примерно корре лируют с количеством выделившегося из зерна фермента. При постановке опыта очень важно соблюдать стерильные условия, поскольку по павшие на агар грибы и бактерии также могут выделять амилазу.
Точное соблюдение описанной ниже методи ки позволит проверить и другие гипотезы (см., например, Coppage J., Hill T. A. (1973),
J. Biol. Ed., 7, 11–18).
Материалы и оборудование (в расчете на одного учащегося)
Белая кафельная плитка Скальпель Пинцет Мерный стакан на 50 мл Наклейки или фломастер Раствор иода в иодистом калии Стерильная дистиллированная вода в стерильных кол бах (3 шт.) 5%ный раствор гипохлорита натрия или фирменная стерилизующая жидкость (например, жидкость Мил тона), или 70%ный спирт
Две чашки с агаром и крахмалом (стерильные):
1%ный раствор агара, содержащий 0,5% крахмала, за ливают в стерильные чашки Петри слоем толщиной около 0,25 см Две чашки с агаром, содержащим крахмал и гиббереллин: го товятся, как указано выше, но перед автоклавировани ем к агару добавляют гиббереллин (ГК 1 мл 0,1%ного раствора ГК3на 100 мл агара (конечная концентрация ГК3составляет 10 млн–1). Гиббереллин плохо растворим в воде, а лучше всего растворяется в
) из расчета
3
этаноле; некоторое количество ГК автоклавировании, но семена чувствительны к гиббе реллину даже в концентрации до 10 Лущеные зерновки ячменя: чтобы очистить семена от пленки, их вымачивают 3—4 ч в 50%ном (О/О) вод ном растворе серной кислоты, затем тщательно про мывают (до десяти раз) в дистиллированной воде; сильное встряхивание зерен в конической колбе по зволяет удалить практически всю пленку; после этого семена надо использовать немедленно, поскольку за мачивание индуцирует их прорастание. Можно также разделить семена на «зародышевую» и «незародыше вую» половины (см. ниже) и хранить их в сухих услови ях в холодильнике не более 2—3 сут. Вместо семян ячменя можно использовать семена пшеницы, по скольку они голые и не требуют лущения.
разрушается при
3
–5
млн–1.
Методика
1. Возьмите две чашки с крахмальным ага ром и две чашки с агаром, содержащим крахмал и гиббереллин и пометьте их со ответственно +ГК и –ГК. Чашки должны быть стерилизованы. Одну чашку в каж дой паре подпишите «зародыш», другую — «без зародыша».
2. Разрежьте поперек по крайней мере два сухих зерна ячменя (рис. 16.21) на кафель ной плитке; таким образом у вас получи лись «зародышевые» и «незародышевые» половины.
3. Простерилизуйте половины в 5%ном растворе гипохлорита натрия в течение 5 мин. Затем трижды промойте стериль ной дистиллированной водой в стериль ных колбах.
4. С помощью пинцета, простерилизован ного в 70%ном спирте, положите поло винки семян в соответствующие чашки Петри срезом вниз; старайтесь при этом как можно меньше приоткрывать крыш ки. Вы получите четыре варианта:
–ГК +ГК –ГК +ГК
Зародышевая Зародышевая Незародышевая Незародышевая
половина половина половина половина
5. Чашки Петри инкубируют 24–28 ч при температуре 20–30 °С.
6. Для того чтобы выявить наличие крахмала, в каждую чашку на поверхность агара на лейте раствор I вид каждой чашки после пробы на крах мал. Обсудите полученные результаты.
/KI. Зарисуйте внешний
2
Координация и регуляция у растений 261
Другие эффекты гиббереллинов
Влияние гиббереллинов на цветение, рост пло дов и период покоя разных растительных струк тур, а также их связь с фотопериодизмом и яро визацией обсуждаются ниже в соответствующих разделах. Обобщенно их физиологические эф фекты представлены в табл. 16.4.
Механизм действия гиббереллинов
Рис. 16.21. Как следует разрезать зерно ячменя для опыта 16.2.
Механизм действия гиббереллинов до сих пор неясен. Было установлено, что в семенах злаков
стимулирует синтез новых белков, в частно
ГК
3
сти Dамилазы; при этом ГК столь низких концентрациях (до 10
16.15. При работе с агаром, содержащим крахмал, активность часто выявляется и в отпечатках пальцев. Как это можно объяснить?
16.16. Какой еще опыт можно поставить, используя те же материалы, чтобы доказать, что гиббереллины вызывают синтез именно новой амилазы, а не активацию уже существующей.
что действует, вероятно, на таком глубоком уровне клеточного метаболизма, как «включе ние» и «выключение» генов, связанных с клеточной дифференцировкой (разд. 23.9). До настоящего времени, однако, убедительных подтверждений этого не получено, и к тому же другие эффекты требуют более высоких концен траций ГК
. Рост клеток растяжением гибберел
3
лины стимулируют только в присутствии аукси нов.
16.17. Как вы можете доказать, что синтез амилазы происходит в алейроновом слое?
16.18. Как можно использовать действие гиббереллина на семена ячменя для разработки биотеста на активность этого вещества?
Таблица 16.4. Влияние фитогормонов на рост и развитие растений
Практическое применение гиббереллинов
В промышленных масштабах гиббереллины по лучают из культуры грибов. Эти фитогормоны стимулируют завязывание плодов и использу ются для выращивания бессемянного виногра да. Иногда можно вызвать развитие таких пло дов из неоплодотворенных завязей; это явление
эффективна в
3
–5
мкг/мл),
Затрагиваемый Ауксины Гиббереллины процесс
Рост стеблей
Рост корней
Закладка корней
Стимулируют увеличение размеров клеток ниже апекса
Стимулируют деление клеток камбия
Стимулируют в очень низких концентрациях Подавляют в более высоких концентрациях
(геотропизм)
Стимулируют образование корней у черенков и каллусов
Стимулируют увеличение размеров клеток в присутствии ауксина
Стимулируют деление клеток апикаль ной меристемы и камбия
Стимулируют «выход в стрелку» у некото рых розеточных видов
Обычно неактивны
Подавляют
262 Глава 16
Таблица 16.4. Продолжение
Затрагиваемый Ауксины Гиббереллины процесс
Закладка почек (побегов)
Рост листьев
1
Рост плодов
Апикальное доминирование
Покой почек
Покой семян
Цветение
1
1
1
Опадение органов
Стимулируют у некоторых каллусов, но иногда подавляют (антагонизм в отношении цитокининов). Иногда стимулируют у ин тактных растений, если нарушить апикаль ное доминирование (см. ниже)
Неактивны
Стимулируют. Иногда индуцируют партено карпию
Стимулируют, т. е. подавляют рост боковых почек
Неактивны
Неактивны
Обычно неактивны (стимулируют у ана наса)
Задерживают у некоторых видовСтарение листьев
—Созревание плодов
Подавляют. Иногда стимулируют, если опа дение уже началось, или если их наносить со стороны отделительного слоя, обращенной к стеблю
Стимулируют у каллуса хризантем Иногда стимулируют у интактных рас тений, если нарушить апикальное до минирование
Стимулируют
Стимулируют. Иногда индуцируют пар тенокарпию
Усиливают действие ауксинов
Прерывают
Прерывают (например, у зерновых, ясе
ней)
Иногда замещают красный свет, т. е. сти мулируют у длиннодневных видов и по давляют у короткодневных
Задерживают у некоторых видов
—
Неактивны
НеактивныВлияние на устьица
Неактивны
Затрагиваемый Цитокинины Абсцизовая Этилен
процесс кислота
Рост стеблей
Стимулируют клеточ ные деления апикаль ной меристемы и кам
Подавляют, особенно при фи зиологическом стрессе, напри мер засухе, переувлажнении
Подавляет, особенно при физиологическом стрессе
бия. Иногда подав
ляют растяжение клеток
Рост корней
Подавляет (геотропизм?)Подавляет (геотропизм?)Неактивны или по давляют первичный рост
Координация и регуляция у растений 263
Таблица 16.4. Продолжение
Затрагиваемый Цитокинины Абсцизовая Этилен
процесс кислота
Закладка корней
Закладка почек (побегов)
Рост листьев
1
Рост плодов
Апикальное доминирование
Покой почек
Покой семян
Цветение
1
1
1
листьев
лируют рост боковых корней
мер у протонемы мхов
индуцируют партено карпию
т. е. стимулируют рост боковых почек
Прерывают
Обычно неактивны
——Неактивны или стиму
——Стимулируют, напри
——Стимулируют
——Стимулируют. Изредка
——Антагонисты ауксинов,
ПрерываетСтимулирует, напри
мер у берез, платанов
—СтимулируетПрерывают
Стимулирует у ананасаИногда стимулирует у короткодневных видов и подавляет у длиннодневных (ан тагонист гибберел линов)
—Иногда стимулируетЗадерживаютСтарение
Стимулирует——Созревание плодов
—СтимулируетНеактивныОпадение
органов
Влияние на устьица
Стимулирует раскрытие
вание в условиях
Неактивен?Стимулирует закры
водного стресса (увя дание)
1
Важны также свет и температура — см. разделы о фотопериодизме и яровизации.
ПРИМЕЧАНИЕ. В таблице представлены самые общие сведения. Ростовые вещества не всегда оказывают то действие, ко торое здесь указано; довольно обычны различия в реакции у разных растений. Однако основное внимание лучше обращать на характерные эффекты; они выделены жирным шрифтом и наиболее важны для учащихся.
264 Глава 16
называется партенокарпией. ГК3применяют в пивоварении для стимуляции образования Dамилазы у ячменя, т. е. для более эффективно го осолаживания. Ряд синтетических веществ подавляет действие гиббереллинов и использу ется в качестве ретардантов, или ингибиторов роста. Обработка этими веществами приводит к развитию низкорослых (карликовых) растений с толстыми стеблями и темнозелеными листья ми, а иногда и с повышенной устойчивостью к вредителям и болезням. Занимая меньше места, такие экземпляры могли бы в принципе повы сить урожайность культур с единицы площади. Кроме того, они менее склонны к полеганию.
Применение регуляторов роста растений
Большая часть регуляторов роста растений была открыта в ходе разработки и испытания герби цидов. Эффект таких веществ решающим обра зом зависит от их дозы и времени применения.
Агенты, повышающие продуктивность культур
1. Хлормеквата хлорид укорачивает и повы шает жесткость пшеничной соломины, что препятствует ее полеганию и позволя ет повысить дозу азотных удобрений.
2. Гибберелловую кислоту используют для сти муляции завязывания плодов у мандари нов и груш; для борьбы с потерями урожая яблок от заморозков; для увеличения раз меров ягод у бескосточкового винограда, что позволяет продавать его в свежем ви де, а не только в форме изюма; для повы шения холодостойкости сахарного трост ника на Гавайских островах.
3. Этефон (выделяет этилен) применяют для стимуляции истечения латекса у гевеи.
4. Глизофозин стимулирует вызревание са харного тростника.
Агенты, повышающие качество продукции
1. Гибберелловая кислота (в сочетании с меха ническим прореживанием гроздьев) уве личивает размеры ягод у бессемянного винограда в Калифорнии.
2. Этилен устраняет зеленый цвет у плодов цитрусовых.
3. Гиббереллины задерживают созревание ба нанов, что способствует повышению их «лежкости».
Агенты, повышающие прибыль от урожая
1. Гибберелловую кислоту используют для ус корения или задержки созревания арти шоков, что позволяет поднимать на них цену вне сезона массового сбора; для за медления созревания грейпфрутов с той же целью; для получения раннего урожая ревеня.
2. Гидразид малеиновой кислоты (ГМК) ис пользуют для продления срока хранения клубней и корнеплодов.
Ингибиторы роста (ретарданты)
1. Этефон (выделяет этилен) используют для укорачивания стеблей нарциссов при их выгонке, замедления роста и стимуляции ветвления томатов, гераней и роз.
2. Пипроктанила хлорид применяют для полу чения карликовых декоративных расте ний, в основном хризантем.
3. Дикегулак натрия замедляет рост живых из городей, а также декоративных деревьев и кустарников.
Регуляторы роста растений используют так
же и для других целей, а именно:
1) стимуляции корнеобразования при веге тативном размножении растений;
2) прерывания или индукции периода покоя у семян, почек и запасающих органов;
3) контроля развития боковых стеблей (ку щения);
4) повышения устойчивости к вредителям, неблагоприятным погодным условиям (например засухе) и загрязнению воздуха;
5) контроля размеров, формы и цвета про дукции, выращиваемой для продажи в расфасованном виде;
6) подавления нежелательного вегетативно го роста;
7) ускорения или задержки цветения и тем самым контроля завязывания и созрева ния плодов.
Рентабельность (отношение прибыли к за
тратам) применения гибберелловой кислоты для
Координация и регуляция у растений 265
стимуляции завязывания плодов мандаринов со ставляет 9:1, для получения бескосточкового ви нограда — 40:1, а использование глизофозина повышает урожайность сахарного тростника на 10–15%. Однако, за исключением препаратов против полегания, регуляторы роста распростра нены слабо — главным образом в небольших специализированных хозяйствах. Некоторые из этих веществ, считавшиеся перспективными во время лабораторных испытаний, оказались не надежными в полевых условиях. В результате практические достижения в этой области связа ны главным образом с созданием новых герби цидов и пестицидов. Для дальнейшего примене ния регуляторов роста с целью улучшения свойств сельскохозяйственных культур, вероят но, потребуется разработка сбалансированных смесей из нескольких агентов.
16.2.7. Цитокинины
Открытие цитокининов
В сороковые и пятидесятые годы прошлого сто летия много усилий прилагалось для совершен ствования методов выращивания культур расти тельных тканей. В таких культурах можно изу чать отдельные процессы развития независимо от влияния других частей организма, а также результаты воздействия на клетки различных веществ. Сохранять клетки живыми удавалось достаточно легко, однако со стимуляцией их роста возникли определенные трудности. В 1954—1956 гг. Скуг, работавший в США, об наружил, что кокосовое молоко содержит ка който ингредиент, стимулирующий деление клеток в культуре сердцевины табака. Кокосо вое молоко — это жидкий эндосперм (запасное питательное вещество семени), и первые дан ные о том, что в нем содержатся ростовые веще ства, были получены еще в сороковые годы, ког да оно изучалось как возможный источник аген тов, стимулирующих рост зародыша. Поиск дру гих аналогичных факторов показал их наличие в старых образцах ДНК из молоки сельди, тогда как свежие препараты нужной активностью не обладали. Однако автоклавирование (нагрева ние под давлением) свежей сельдевой ДНК при водило к появлению у нее таких свойств. Было установлено, что этот активный ингредиент по своей структуре сходен с аденином — азотистым основанием, входящим в состав ДНК (гл. 3). Он получил название кинетин. Сам Скуг использо
вал в отношении веществ, регулирующих кле точное деление, термин кинины. Позднее вместо этого термина стали использовать термин цито кинины; отчасти это было связано с понятием цитокинеза, (означающим деление клеток), отчасти с тем, что термин кинин уже был ис пользован в физиологии животных и имел там совершенно иное значение (кинин — это один из полипептидов крови). Первый природный цитокинин с установленной структурой был вы делен в 1963 г. из незрелых зерен кукурузы (Zea mays) и поэтому его назвали зеатином. Рис. 16.22 позволяет заметить, что он так же, как и кине тин, является производным аденина.
Синтез и распределение цитокининов
Рис. 16.22. Структурные формулы кинетина, зеати& на и аденина.
Больше всего цитокининов содержится в зонах активного деления клеток, особенно в плодах и семенах, где они необходимы для развития заро дыша. Судя по некоторым данным, в зрелых растениях они часто образуются в корнях, а за тем вместе с транспирационным током транс портируются в побеги по ксилеме. Возможен также их «реэкспорт» из листьев по флоэме.
Действие цитокининов
По определению цитокинины стимулируют клеточное деление. Однако они действуют так только в присутствии ауксинов. Возможно, для
266 Глава 16
Рис. 16.23. Влияние кинетина на транслокацию аминокислот в листьях табака. В лист вводили каплю радиоак& тивной аминокислоты, и спустя некоторое время, необходимое для транслокации, лист переносили на фото& пленку. На полученных радиоавтографах радиоактивные участки выглядят черными.
этого нужны и гиббереллины, как, например, в камбии. Взаимодействие цитокининов с дру гими ростовыми веществами мы рассмотрим в разд. 16.3.2.
Одно из интереснейших свойств цитокини нов — их способность задерживать нормальные процессы старения листьев. Если отделить лист от растения, то он обычно быстро стареет, т. е. утрачивает зеленую окраску (хлорофилл), белки и нуклеиновые кислоты (РНК и ДНК). Если же нанести на какойто участок листа каплю кине тина, то в этом месте в окружении отмирающих тканей сохранится зеленый островок активной ткани. Показано, что сюда из других клеток ли ста перераспределяются питательные вещества (рис. 16.23).
16.19. Рассмотрите рис. 16.23 и ответьте на следующие вопросы.
а) В чем различие судьбы аминокислоты,
нанесенной на молодые и старые листья? б) Чем объясняется такая разница? в) Как влияет кинетин на распределение
радиоактивной аминокислоты в старых листьях?
Аналогичный, хотя и менее выраженный эф фект, будет наблюдаться даже в том случае, когда кинетин наносят на отмирающие листья интакт ного растения. Показано, что в стареющих листьях концентрация природных цитокининов снижает ся. Следовательно, программа естественного ста рения, возможно, включает перенос цитокининов из более старых листьев в молодые по флоэме.
Цитокинины также участвуют во многих процессах, связанных с ростом и развитием рас тений (табл. 16.4 и разд. 16.3).
Механизм действия цитокининов
Сходство цитокининов с азотистым основанием аденином, входящим в состав ДНК и РНК, наво дит на мысль о том, что эти фитогормоны могут играть очень важную роль в метаболизме нуклеи новых кислот. Оказалось, что некоторые необыч ные (минорные) основания, выделенные из мо лекул транспортных РНК, обладают цитокини новой активностью, следовательно, возможно участие этих оснований в синтезе тРНК. Впро чем, даже такой вариант еще не объясняет меха низма их действия как ростовых веществ, и в этой области необходимы дальнейшие исследования.
Практическое применение цитокининов
Цитокинины продлевают срок хранения свежих листовых овощей, например латука и капусты
Координация и регуляция у растений 267
(так как задерживают старение), а также срезан ных цветов. Кроме того, их можно использовать для прерывания покоя семян некоторых расте ний.
16.2.8. Абсцизовая кислота
Открытие абсцизовой кислоты
Несколько позднее физиологи растений получи ли данные о том, что для нормального развития растений необходимы не только стимуляторы ро ста типа ауксинов, гиббереллинов и цитокини нов, но и его ингибиторы. Существование таких агентов, обусловливающих, в частности, покой семян, предполагалось довольно давно, но по пытки выделить их были предприняты только в конце пятидесятых годов прошлого века группой ученых из Аберистуитского университета, воз главляемой Уэрингом. В 1963 г. удалось проде монстрировать, что экстракт из листьев березы индуцирует покой ее почек. Эти листья помеща ли в условия короткого дня, имитирующие при ближение зимы. Очищенные кристаллы актив ного вещества такого же типа были выделены в 1964 г. из листьев платана. Это вещество назвали дормином. Оказалось, что оно идентично соеди нению, выделенному другой группой в 1963 г. из молодых плодов хлопчатника. Оно ускоряло их опадение и было названо абсцизином II (от лат. abscidere — отделять; абсцизин I действует сход ным образом, но отличается по химическому строению и менее активен). В 1967 г. было реше но переименовать это вещество в абсцизовую кис лоту (АБК). Абсцизовая кислота обнаружена во всех группах растений от мхов до покрытосемен ных. Аналогичная по функции лунуларовая кис лота выделена из печеночников и водорослей.
Строение абсцизовой кислоты
Как и гиббереллины, АБК относится к терпено идам и имеет сложное строение (рис. 16.24). Это
единственное ростовое вещество данного хими ческого класса.
Синтез и распределение АБК
АБК образуется в листьях, стеблях, плодах и се менах. Тот факт, что изолированные хлоропла сты сохраняют способность к ее синтезу, наво дит на мысль о метаболической связи этого ве щества с образующимися также в хлоропластах каротиноидными пигментами. Как и другие фи тогормоны, АБК транспортируется по проводя щей системе растения, главным образом по флоэме. Кроме того, из корневого чехлика она распространяется путем диффузии (см. раздел о геотропизме).
Действие АБК
В табл. 16.4 обобщены данные о влиянии АБК на рост и развитие растений. Она является основ ным ингибитором роста и антагонистом всех трех классов веществ, его стимулирующих. Класси ческими примерами действия АБК служат: индукция покоя почек (в том числе апикальное доминирование), покоя семян и опадения орга нов (разд. 16.3.4). Кроме того, АБК играет какую то роль в процессах увядания, зацветания, старе ния листьев; возможно также, что она регулирует геотропные реакции растений. Она связана и со стрессовыми воздействиями, в частности с поте рей воды при засухе. Так например, в увядающих листьях томата концентрация АБК в 50 раз выше, чем в листьях, сохраняющих нормальный тургор. Полагают, что этот фитогормон вызывает закры вание устьиц. Высокие концентрации АБК пол ностью останавливают рост растений.
Механизм действия АБК
По этому вопросу никаких данных нет.
Практическое применение АБК
АБК можно использовать для опрыскивания плодовых деревьев в конце вегетационного пери ода, чтобы индуцировать одновременное опаде ние плодов. Это сократит период сбора урожая.
Рис. 16.24. Структурная формула абсцизовой кис& лоты.
16.2.9. Этилен (этен)
Открытие фитогормональных свойств этилена
К началу тридцатых годов прошлого века было известно, что газ этилен ускоряет созревание
268 Глава 16
плодов цитрусовых и оказывает различные влия ния на рост растений. Позднее было установле но, что газ с аналогичным действием, выделяют некоторые плоды, например бананы. В 1934 г. выяснилось, что желтеющие яблоки выделяют именно этилен, а еще позже было показано, что этилен выделяют самые разные спелые плоды и другие органы растений, особенно поврежден ные. Следовые количества этилена выделяют практически все органы растений.
Строение этилена
Структурная формула этилена приведена на рис. 16.25.
Рис. 16.25. Структурная формула этилена (этена).
Синтез и распределение этилена
Как говорилось выше, этилен образуют очень многие, а, возможно, и все органы растений. Хотя этилен представляет собой газ, он обычно не мигрирует свободно по внутренним воздуш ным пространствам растения, поскольку быстро улетучивается в окружающую среду. Однако, было показано, что водорастворимый пред шественник этилена переходит по ксилеме из переувлажненных корней в стебли.
сто хранят в бескислородных условиях, а созре вание контролируют вводя кислородноэтиле новую смесь. Патентованное средство «этефон» во время обработки им растений разлагается с выделением этилена; им опрыскивают каучу коносы, чтобы стимулировать истечение из их стволов латекса.

16.3. Синергизм и антагонизм

По мере изучения фитогормонов стало ясно, что обычно они действуют совместно и что нет та ких аспектов роста, которые бы специфически регулировались лишь какимто одним фитогор моном. Существуют, повидимому, два типа регуляции. В одних случаях два или несколько веществ дополняют друг друга в своем действии и часто совокупное действие оказывается на много сильнее, чем результат простого сложе ния их индивидуальных эффектов. Это явление называют синергизмом, а вещества, действующие подобным образом — синергистами. В других слу чаях два регулирующих вещества оказывают противоположное влияние на один и тот же процесс: одно его стимулирует, а другое — ин гибрирует. Это явление называют антагонизмом, а такие вещества — антагонистами. Результат антагонизма зависит от соотношения разно направленных воздействий.
Ниже мы рассмотрим некоторые относи тельно хорошо изученные процессы роста и раз вития растений, продемонстрировав на их при мерах значение синергизма и антагонизма фитогормонов.
Действие этилена
Этилен известен главным образом своим стиму лирующим влиянием на созревание плодов, которое сопровождается резким усилением ин тенсивности их дыхания (так называемый кли мактерический период) у некоторых видов (разд. 16.3.5). Как и АБК, он иногда служит ингибитором роста и способен индуцировать опадение плодов и листьев. Его эффекты пере числены в табл. 16.4.
Практическое применение этилена
Этилен индуцирует зацветание ананасов и сти мулирует созревание плодов томатов и цитрусо вых. Чтобы замедлить созревание плодов, их ча
16.3.1. Рост побегов
Действие гиббереллинов на удлинение стеблей, черешков, листьев и гипокотилей (подсемядоль ное колено) зависит от присутствия ауксинов.
16.20. Как это можно показать экспериментальным путем?
16.3.2. Деление и дифференцировка клеток
Цитокинины стимулируют клеточное деление только в присутствии ауксинов. Иногда какую то роль играют и гиббереллины, как, например,
Координация и регуляция у растений 269
Рис. 16.26. Культуры каллусов табака. В каждом случае культуральная среда содержала ИУК (2 мг/л) и разные концентрации кинетина. Культура, содержавшая 0,2 мг кинетина на 1 л (в центре), продолжала расти в виде каллуса; при меньшей концентрации кинетина (0,02 мг/л) начинался рост корней, а при его более высокой кон& центрации (0,5 мг/л) развивались побеги.
в камбии, куда ауксины и гиббереллины посту пают из находящихся поблизости почек и листь ев. Впервые взаимодействие цитокининов с другими ростовыми веществами было проде монстрировано в классических экспериментах Скуга, уже упоминавшихся выше. В пятидеся тых годах XX в. его группа исследовала влияние различных концентраций кинетина и ИУК на рост каллуса из сердцевинных клеток табака. При высоком отношении ауксин/цитокинин наблюдалось образование корней, а при высо ком соотношении цитокинин/ауксин формиро вались боковые почки, из которых развивались облиственные побеги. При промежуточных со отношениях концентраций шел рост недиффе ренцированной клеточной массы (рис. 16.26).
16.3.3. Апикальное доминирование
Апикальное (верхушечное) доминирование за ключается в том, что присутствие растущей вер хушечной (апикальной) почки подавляет разви тие боковых почек ниже по стеблю. Точно так же рост главного корня тормозит образование отходящих от него боковых корней. Удаление верхушечной почки (в растениеводстве такая операция называется в зависимости от методи ки обрезкой, чеканкой или пинцировкой, т. е. прищипкой) приводит к тому, что начинают
развиваться боковые почки, т. е. происходит ветвление стебля. С этой целью, например, об резают древеснокустарниковые культуры, ког да важна не их высота, а густая крона.
16.21. а) Какое ростовое вещество образуется в верхушке побега?
б) Продумайте, как поставить эксперимент,
чтобы доказать, что именно это вещество
ответственно за апикальное доминирование.
Интересно отметить, что содержание аукси нов в боковых почках часто бывает не настолько высоким, чтобы подавить их рост. Как действу ют при этом ауксины, пока еще неизвестно; воз можно, они какимто образом «привлекают» питательные вещества к верхушке. Показано, что у дурнишника падение концентрации аук синов в стебле после пинцировки позволяет бо ковым почкам инактивировать содержащуюся в них в большом количестве АБК. Гиббереллины часто усиливают реакцию на ИУК. Однако об работка боковых почек кинетином во многих случаях, хотя бы на время, прерывает их покой.