
- •Предмет, содержание, задачи токсикологической химии.
- •Краткий исторический очерк развития токсикологической химии.
- •Связь токсикологической химии с другими химическими, фармацевтическими и биологическими науками.
- •Вклад отечественных учёных в развитие токсикологической химии.
- •Организация судебно-медицинской и химико-токсикологической (судебно-химической) экспертизы в России.
- •Объекты химико-токсикологического исследования и вопросы, решаемые химико-токсикологическим анализом. Понятие «яд», «ядовитое вещество». Классификация ядов и отравлений.
- •Специфические особенности химико-токсикологического анализа.
- •Пути поступления чужеродных соединений в организм. Основные факторы, оказывающие влияние на всасываемость и распределение веществ в тканях и биологических средах организма.
- •Превращение и выделение чужеродных веществ из организма. Общая характеристика.
- •Общая характеристика методов исследования, применяемых в токсикологической химии (методы изолирования, очистки, качественного и количественного анализа).
- •11. Судебная химия – основной раздел токсикологической химии.
- •Документация химико-токсикологических экспертиз и правила её
- •Источники ошибок на основных этапах химико-токсикологического анализа.
- •Правила приёма вещественных (химических) доказательств на экспертизу.
- •Значение данных дознания, истории болезни и результатов судебно-медицинского исследования трупов для судебно-химической экспертизы.
- •Микрокристаллоскопия и кристаллооптика в токсикологической химии.
- •Методы количественного определения. Значение этих определений для оценки результатов исследования (показать на примере «металлических ядов»).
- •Реакции отрицательного судебно-химического значения.
- •Классификация ядовитых и сильнодействующих веществ в токсикологической химии.
- •Охрана окружающей среды и перспективы развития токсикологической химии на современном этапе.
- •Классификация наркотических и психотропных веществ. Основные особенности их химико-токсикологического анализа.
- •Современные физико-химические методы, применяемые в анализе наркотических и психотропных веществ. Основные требования к ним.
- •Фармакокинетика, метаболизм, особенности химико-токсикологического анализа опиатов.
- •Фармакокинетика, метаболизм, особенности химико-токсикологического анализа каннабиноидов.
- •Перспективы развития и совершенствования методов судебно-химических исследований вещественных доказательств.
- •26. Теоретические основы изолирования ядовитых и сильнодействующих веществ из биологического материала дистилляцией водяным паром.
- •27.Синильная кислота. Качественное обнаружение и количественное определение.
- •28. Химико-токсикологическое значение синильной кислоты и её производных.
- •29. Ядовитые галогенпроизводные (хлороформ, хлоралгидрат). Изолирование.
- •30. Ядовитые галогенпроизводные (четыреххлористый углерод, 1,2-дихлорэтан).
- •31. Альдегиды (формалин, формальдегид). Изолирование, качественное обнаружение и количественное определение. Токсикологическое значение и метаболизм.
- •32. Ацетон. Изолирование, качественное обнаружение и количественное
- •33. Метиловый спирт. Изолирование, качественное обнаружение и количественное
- •34. Этиловый спирт. Изолирование. Качественное обнаружение и количественное
- •35. Физико-химические методы количественного определения этилового спирта, применение в судебно-химическом анализе.
- •36. Значение этапа количественного определения этилового спирта при химико-токсикологическом исследовании биологических объектов.
- •37. Реакции отличия метилового и этилового спирта. Методы экспресс-анализа спирта. Пробы Раппопорта и Шинкаренко.
- •38.Спирты (амиловый, этиленгликоль). Качественное обнаружение. Токсикологическое значение. Метаболизм.
- •39. Уксусная кислота. Изолирование. Качественное обнаружение и количественное определение. Токсикологическое значение и метаболизм.
- •40. Нитробензол в химико-токсикологическом отношении.
- •41. Фенолы (фенол, трикрезол) в химико-токсикологическом отношении.
- •42. Анилин в химико-токсикологическом отношении.
- •43. Метод изолирования подкисленным спиртом. Его достоинства и недостатки.
- •44. Метод изолирования подкисленной водой. Вклад отечественных учёных в разработку этого метода, его достоинства и недостатки.
- •45. Частный метод изолирования подкисленной водой в.Ф. Крамаренко. Влияние рН среды и др. Факторов на изолирование и экстрагирование алкалоидов.
- •46. Метод изолирования подщелоченной водой, его достоинства и недостатки.
- •47. Салициловая кислота. Изолирование, качественное обнаружение и количественное обнаружение. Токсикологическое значение и метаболизм.
- •48. Химико-токсикологическое значение производных барбитуровой кислоты. Методы изолирования, очистки барбитуратов.
- •49. Качественное обнаружение барбитуратов в судебно-химическом анализе.
- •50. Количественное определение барбитуратов в судебно-химическом анализе.
- •51. Спектрофотометрическое определение производных барбитуровой кислоты в химико-токсикологическом анализе.
- •52. Токсикологическое значение и метаболизм барбитуратов.
- •53. Фенацетин. Качественное обнаружение и количественное определение.
- •54. Предварительные химико-токсикологические исследования при наличии алкалоидов (общеалкалоидные реакции).
- •55. Методы изолирования, очистки и обнаружение алкалоидов.
- •56. Алкалоиды, производные пиридина и пиперидина (кониин, ареколин). Изолирование, качественное обнаружение и количественное определение. Токсикологическое значение и метаболизм.
- •57. Алкалоиды, производные пиридина и пиперидина (никотин, анабазин) в химико-токсикологическом отношении.
- •58. Пахикарпин в химико-токсикологическом отношении.
- •59. Алкалоиды, производные тропана (атропин, гиосциамин) в химико-токсикологическом отношении.
- •60. Алкалоиды, производные тропана (кокаин) в химико-токсикологическом отношении.
- •61. Производные аминокислот ароматического ряда (новокаин, дикаин) в химико-токсикологическом отношении.
- •62. Алкалоиды, производные хинолина (хинин и его соли). Изолирование, качественное обнаружение и количественное определение. Токсикологическое значение и метаболизм.
- •63. Алкалоиды, производные изохинолина (морфин). Изолирование. Качественное обнаружение и количественное определение. Токсикологическое значение и метаболизм.
- •64. Заменители морфина (кодеин, этилморфина гидрохлорид, апоморфин) в химико-токсикологическом отношении.
- •65. Доказательства отравления опием.
- •66. Алкалоиды, производные бензилизохинолина (папаверин, наркотин) в химико-токсикологическом отношении.
- •67. Алкалоиды, производные индола (резерпин, секуренин) в химико-токсикологическом отношении.
- •69. Алкалоиды, производные пирролизидина (платифиллин) в химико-токсикологическом отношении.
- •70. Алкалоиды, производные пиримидина (кофеин, теобромин, теофиллин) в химико-токсикологическом отношении.
- •71. Ациклические алкалоиды (эфедрин). Изолирование, обнаружение, определение, значение, метаболизм.
- •72. Производные пиразола (антипирин, амидопирин) в химико-токсикологическом отношении.
- •73. Производные 1,4 - бензодиазепина в химико-токсикологическом отношении.
- •74. Производные фенотиазина в химико-токсикологическом отношении.
- •75. Общая характеристика пестицидов (ядохимикатов) в химико-токсикологическом отношении. Классификация.
- •76. Пестициды из группы галогенпроизводных (ддт, гхцг, гептахлор) в химико-токсикологическом отношении.
- •77. Пестициды из класса фенолов (днок, диносеб, зоокумарин). Качественное обнаружение и количественное определение. Токсикологическое значение и метаболизм.
- •78. Пестициды класса фосфорорганических соединений (хлорофос, карбофос) в химико-токсикологическом отношении.
- •79. Пестициды, производные карбаминовой кислоты (севин) в химико-токсикологическом отношении.
- •80. Пестициды, производные тиокарбаминовой, дитиокарбаминовой кислот (крысид, тмтд) в химико-токсикологическом отношении.
- •81. Металлоорганические пестициды (гранозан, меркуран, меркургексан) в химико-токсикологическом отношении.
- •82. Неорганические ядохимикаты (фосфид цинка, фторид натрия) в химико-токсикологическом отношении.
- •83. Общая характеристика сероводородного и дробного методов анализа «металлических» ядов.
- •84. Вклад отечественных учёных в разработку химико-токсикологического анализа «металлических ядов».
- •85. Теоретические и методологические основы дробного метода анализа «металлических» ядов, разработанные а.Н. Крыловой.
- •86. Органические реагенты, предложенные а.Н. Крыловой для анализа «металлических» ядов дробным методом.
- •87. Последовательность проведения дробного метода анализа на «металлические» яды.
- •88. Частые методы минерализации органических веществ.
- •89. Минерализация серной и азотной кислотами органических веществ. Достоинства и недостатки.
- •90. Минерализация органических веществ азотной, серной, хлорной кислотами. Достоинства и недостатки метода.
- •91. Методы удаления окислителей из минерализата.
- •92. Исследование осадка после минерализации азотной, серной кислотами (свинец, барий).
- •93. Свинец и тетраэтилсвинец. Качественное обнаружение и количественное определение. Токсикологическое значение.
- •94. Барий в химико-токсикологическом отношении.
- •95. Марганец в химико-токсикологическом отношении.
- •96. Хром в химико-токсикологическом отношении.
- •97. Серебро. Изолирование, качественное обнаружение и количественное определение, поступление, распределение, выведение из организма, токсикологическое значение.
- •98. Медь в химико-токсикологическом отношении.
- •99. Висмут в химико-токсикологическом отношении.
- •100. Сурьма и таллий в химико-токсикологическом отношении.
- •101. Кадмий в химико-токсикологическом отношении.
- •102. Цинк в химико-токсикологическом отношении.
- •103. Ртуть, деструктивные методы изолирования. Качественное и количественное значение. Органические препараты ртути (этилмеркурхлорид).
- •104. Мышьяк в химико-токсикологическом отношении. Общая схема анализа.
- •105. Определение мышьяка в аппарате Марша.
- •106. Определение мышьяка в аппарате Зангер-Блека.
- •107. Изолирование веществ из биологического материала диализом (серная, азотная, соляная кислоты). Качественное обнаружение и количественное определение, токсикологическое значение.
- •108. Изолирование веществ из биологического материала диализом (аммиак, едкий натр, щелочные соли). Качественное обнаружение и количественное определение, токсикологическое значение.
Микрокристаллоскопия и кристаллооптика в токсикологической химии.
Микрокристаллоскопический анализ основан на обнаружении веществ по форме, величине и окраске их кристаллов.
Сущность метода: образующиеся кристаллы являются продуктами взаимодействия определяемых веществ с реактивами. Форма и окраска кристаллов определяется с помощью оптического микроскопа.
Данный вид анализа имеет ряд достоинств:
- требуется малое количество исследуемого вещества;
- работа с потенциально опасными химическими соединениями: взрывчатыми, ядовитыми;
- исключается большое количество громоздких этапов анализа;
Для проведения анализа требуется следующее оборудование:
- чистые сухие предметные стёкла;
- растворы исследуемых веществ;
- растворы реактивов;
- оптический микроскоп;
Кристалл – твёрдое тело, частицы которого расположен в определённой последовательности, периодически повторяющиеся в определённом порядке, образуют кристаллическую решётку.
Кристаллическая решётка – это правильное периодическое расположение атомов или других частиц в кристалле.
Сингония – группа видов симметрии со сходными геометрическими параметрами.
Идеальные кристаллы – все элементы кристаллов занимают правильное симметричное положение, но чаще всего встречаются реальные кристаллы, имеющие некоторые дефекты.
Применение микрокристаллоскопического анализа:
- недостаток метода – реально трудно получить кристалл строго определённой формы;
- чаще используют термин «сростки кристаллов» в виде различных фигур;
- применения данного метода надо производить после точного установления другими способами вида соединения;
- определяемые вещества должны хорошо быть очищенными от примесей;
Чаще всего таким методом определяют наличие и вид сростков кристаллов барбитуратов.
Методы количественного определения. Значение этих определений для оценки результатов исследования (показать на примере «металлических ядов»).
МЕТОДЫ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ «МЕТАЛЛИЧЕСКИХ ЯДОВ» В МИНЕРАЛИЗАТЕ
Для количественного определения «металлических ядов» в химико-токсикологическом анализе используется гравиметрические, титриметрические и фотоколориметрические методы, но все большее применение находят методы атомно-абсоробционной спектроскопии, эмиссионно-спектрального и рентгено-флуоресцентного анализа. Большинство методик по количественному определению «металлических ядов» в минерализате изложено в методических указаниях, которыми пользуются судебно-химические эксперты и в работе А. Н. Крыловой «Исследование биологического материала на «металлические яды» дробным методом» (М.: Медицина, 1975), а так же в учебнике «Фармацевтическая химия» Беликов В. Г.
Гравиметрический (весовой) метод
Метод основан на количественном определении вещества в виде нерастворимого в воде соединения с последующим выделением, очисткой, высушиванием и взвешиванием осадка.
Весовой метод количественного определения ионов бария по сульфату непосредственно в биологическом материале, после минерализации серной и азотной кислотами дает завышенные результаты (до 144 %), что обусловлено соосаждением ионов кальция и железа, содержащимися в органах и тканях организма человека в значительных количествах. Поэтому для освобождения осадка от примесей этих ионов и для получения более точных результатов предварительно проводят переосаждение осадка бария сульфата из 0,05 М аммиачного раствора трилона Б. Выпавший после перекристаллизации осадок, отфильтровывают, промывают 0,2 М раствором серной кислоты, сушат, прокаливают до постоянной массы и взвешивают. Граница определения — 5 мг в 100 г органа.
Титриметрические (объемные) методы
Комплексонометрический метод.
Комплексонометрия применяется для количественного определения ионов бария, свинца, меди, висмута, цинка, кадмия. Метод основан на образовании растворимых в воде комплексов двух-, трех-, четырехзарядными ионами металлов с титрованным раствором трилона Б (динатриевой соли этилендиаминотетрауксусной кислоты) или с другими комплексонами. Взаимодействие происходит в стехиометрическом соотношении 1:1 не зависимо от заряда катиона. Непременным условием комплексометрии является соблюдение определенного значение рН среды водного раствора, которое достигается с помощью аммиачного буфера для ионов бария, свинца, меди, цинка, кадмия или азотной кислоты для иона висмута. При титровании применяются индикаторы: кислотный хром черный специальный — для бария, свинца, цинка, кадмия; мурексид — для иона меди, пирокатехиновый фиолетовый — для иона висмута.
Для количественного определения ионов бария применяется обратное титрование избытка 0,05 М раствора трилона Б раствором цинка хлорида в присутствии этанола при индикаторе кислотный хром черный специальный. К осадку бария сульфата прибавляют точно отмеренный избыток 0,05 М раствора трилона Б и 25 % раствора аммония гидроксида, нагревают и горячую массу отфильтровывают. К фильтрату прибавляют аммиачный буферный раствор, индикатор кислотный хром черный специальный и избыток трилона Б оттитровывают раствором цинка хлорида до перехода синей окраски в красно-фиолетовую. Затем добавляют избыток (3—5 мл) раствора цинка хлорида, этанол и избыток хлорида цинка оттитровывают 0,05 М раствором трилона Б до перехода красно-фиолетовой окраски в синюю. При расчете количества бария учитывают сумму объемов растворов трилона Б и цинка хлорида. Граница определения 0,5 мг в 100 г органа.
2) Аргентометрический метод
Метод используется для количественного определения мышьяка при количестве его в объекте исследования от 1 до 10 мг. Метод основан на поглощении мышьяковистого водорода тированным раствором нитрата серебра, на отделении образующегося осадка металлического серебра и титровании избыточного количества нитрата серебра. Восстановление мышьяка и поглощение арсина нитратом серебра проходит медленно, в течение 2—4 часов. По окончании реакции содержимое приемников объединяют и фильтруют. Фильтрат подкисляют азотной кислотой, и избыток серебра нитрата титруют раствором аммония тиоцианата в присутствии железо-аммонийных квасцов до появления розового окрашивания. Граница определения — 1 мг в 100 г объекта.
Хромато-йодометрический метод
Метод основан на осаждении ионов свинца титрованным раствором калия бихромата в виде свинца хромата с последующим йодометрическим определением избытка бихромата калия. Для количественного определения используют раствор полученный, после обработки осадка горячим раствором ацетата аммония. Граница определения — 2 мг свинца в 100 г объекта.
4) Тиоцианатометрический метод
Титрование минерализата раствором тиоционата аммония используют при резко положительном результате макрореакции на серебро. В качестве индикатора применяют железоаммониевые квасцы или дитизон. Титрование с дитизоном проводят в присутствии хлороформа или четыреххлористого углерода при периодическом встряхивании до тех пор, пока золотисто-желтый цвет органического слоя не изменится в зеленый. Граница определения — 2 мг серебра в 100 г объекта.
Фотоколориметрический метод
Фотометрический метод анализа основан на избирательном поглощении электромагнитного излучения анализируемым веществом и служит для исследования строения, идентификации и количественного определения светопоглощающих веществ. Фотометрические методы анализа подразделяются на визуальную колориметрию, фотоэлектроколориметрию, спектрофотометрию в видимой и ультрафиолетовой областях спектра.
1. Визуальная колориметрия основана на сравнении интенсивности окрасок растворов разных концентраций.
Данный метод используется для количественного определения ртути по окраске взвеси тетрайодомеркуроата меди, образующейся в деструктате при взаимодействии ртути с иодидом меди (I).
Исследование проводят в колориметрических пробирках. Для определения берут 3 различных объема исследуемого раствора ртути. Одновременно с колориметрируемой пробой готовят стандартную шкалу. Для приготовления стандартного раствора ртути используют дважды перекристаллизованный дихлорид ртути. Объемы исследуемых и стандартных растворов доводят до 6 мл 0,24 % раствором йода и во все пробирки одновременно прибавляют по 4 мл реактива, содержащего сульфат меди, сульфат натрия и гидрокарбонат натрия. Пробу и стандартную шкалу сравнивают через 10 мин после их приготовления. Перед колориметрированием пробирки встряхивают. Количество ртути рассчитывают на 100 г органа, взятого на исследование. Граница определения — 0,01 мг. Заключение о количестве обнаруженной ртути дают по среднему значению трех определений.
Колориметрическое определение мышьяка основано на реакции Зангер-Блека. Используют 14 колбочек приборов Зангер-Блека. В первую колбочку помещают минерализат, во вторую — серную кислоту, в двенадцать оставшихся — стандартный раствор мышьяковистого ангидрида в 4 М растворе серной кислоты для приготовления колориметрической шкалы. Далее поступают, как указано при качественном обнаружении мышьяка данным методом.
Через час сопоставляют окраску реактивной бумажки, полученной при исследовании минерализата, с окраской стандартной шкалы. Граница определения — 0,04 мг.
2. Фотоэлектроколоримтрический метод основан, на способности анализируемого вещества поглощать немонохроматический свет. Метод экстракционной фотоэлектроколориметрии используется для количественного определения ионов свинца, серебра, хрома, ртути, меди, таллия, сурьмы по цветным продуктам взаимодействия с органическими комплексами (дитизон, диэтилдитиокарбаминат, малахитовый зеленый, дифенилкарбазид), которые экстрагируются в органический растворитель или реакциям окисления для марганца.
Количественное определение свинца основано на измерении оптической плотности окрашенного в пурпурно-красный цвет раствора дитизоната свинца в хлороформе. Измерение оптической плотности проводят на фотоэлектроколориметре при К = 520 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм и в качестве раствора сравнения используют хлороформ. Расчет содержания свинца производят по калибровочному графику. Стандартный раствор для построения калибровочного графика готовят путем растворения соли свинца хлорида или свинца основного ацетата в воде очищенной, подкисленной раствором хлористоводородной кислоты при кипячении. Метод позволяет определять свинец при содержании его в пределах 0,02—2 мг в 100 г объекта.
Для количественного определения ртути используют дитизонат данного металла, который имеет золотисто-желтую окраску и экстрагируется хлороформом или четыреххлористым углеродом при рН = 1,0—2,0 (4—5 М раствора серной кислоты). Определению ртути по его дитизонату мешают ионы серебра, золота, платины и палладия, которые, однако, являются исключительно редкими объектами исследования в химико-токсикологическом анализе. Также мешать определению ртути могут продукты окисления дитизона (карбадиазон и др.), окрашенные в желтый цвет, сходный по окраске с дитизонатом ртути при небольшом содержании ртути (II). Они растворимы в четыреххлористом углероде и хлороформе. Максимум поглощения их (390—470 нм) лежит близко к дитизонату ртути (485 нм). Поэтому для определения ртути следует пользоваться свежеприготовленный раствор дитизона. Раствором сравнения служит хлороформ или четыреххлористый углерод. Количество ртути определяют по калибровочному графику. Для построения графика готовят стандартные растворы ртути (II) в серной кислоте. Граница определения — 0,005 мг.
Фотоколориметрическим методом, основанным на реакции образования однозамещенного дитизоната серебра, целесообразно проводить определение при небольших количествах осадка серебра хлорида. Измеряют оптическую плотность раствора дитизоната серебра в хлороформе или четыреххлористом углероде, при длине волны 462 нм в кювете с толщенной поглощающего слоя 10 мм. Раствором сравнения является органический растворитель. Определение количестна серебра производят по калибровочному графику. Стандартный раствор для построения графика готовят из перекристаллизованного нитрата серебра. Граница определения — 1 мг серебра в 100 г объекта.
Ион таллия может быть определен по дитизонату, полученному в условиях приведенных выше. Измеряют оптическую плотность при длине волны 505 нм, раствором сравнения является хлороформ. Расчет количественного содержания ведут по калибровочному графику, для построения которого используют стандартный раствор таллия в серной кислоте.
В основе количественного определения ионов марганца в минерализате лежит реакция окисления с калия периодатом, так как окраска получаемого перманганат аниона устойчива в течение длительного времени. В зависимости от интенсивности окраски полученного в результате реакции раствора, его разбавляют водой до 10 мл и измеряют оптическую плотность, при X ~ 525 нм в кювете с толщиной поглощающего слоя 10 мм. Раствором сравнения служит опыт, в котором минерализат заменен 20 % раствором кислоты серной. Количество марганца определяют по калибровочному графику, который строят по стандартным растворам перманганата калия. Раствором сравнения служит вода. Граница определения ОД мг марганца в 100 г объекта.
Хром количественно определяют по реакции с дифенилкарбазидом. Условия окисления хрома и проведения реакции описаны выше. Комплекс хрома с дифенилкарбазидом окрашивается полностью через 20—30 мин. Окраска сохраняет устойчивость в течение 2—3 часов. При содержании хрома менее 0.5 мг в 100 г объекта (на границе чувствительности) окраска комплекса появляется в течение 5—10 мин и через 20—30 мин начинает желтеть. Оптическая плотность окрашенных растворов измеряется на фотоэлектроколориметре, при длине волны 546 нм и в кювете с толщенной поглощающего слоя 20 мм. Определение хрома проводят в минерализате и в осадке, в случае образования окрашенного в серо-зеленый цвет осадка сульфатов. Результаты определения суммируются. Для расчета количественного содержания хрома используют калибровочный график, построенный по стандартным растворам бихромата калия. Граница определения — 0,1 мг хрома в 100 г объекта.
Количественное определение висмута проводится после экстракции в виде диэтилдитиокарбамата из минерализата и последующей реэкстрации в водный слой кислотой азотной. Данный метод используется при слабоположительных результатах качественных реакций на висмут. Определение проводятся по тиомочевинонному комплексу висмута. Оптимальные условия развития окраски комплекса: 1 М раствор кислоты азотной и 6—12 % раствор тиомочевины. Измеряют оптическую плотность окрашенного в желтый цвет раствора при длине волны 470 нм в кювете с толщенной поглощающего слоя 10 мм, раствором сравнения является вода очищенная. Определение количества висмута производят по калибровочному графику. Для построения графика используют стандартный раствор висмута (III) в 2 М растворе кислоты азотной. Граница определения — 0,1 мг висмута в 100 г объекта.
Окрашенный раствор диэтилдитиокарбамата меди в хлороформе используют для ее количественного определения. Измерение оптической плотности окрашенного раствора проводят на фотоэлектроколориметре, при X = 435 нм в кювете с толщенной поглощающего слоя 10 мм. Раствор сравнения — хлороформ. Для расчета количественного содержания меди используют калибровочный график, построенный по стандартным растворам соли меди (II). Граница определения — 0,1 мг меди в 100 г объекта.
Фотоэлектроколориметрическое определение по реакции с малахитовым (бриллиантовым) зеленым возможно производить как, при раздельном присутствии сурьмы и таллия, так и при их совместном присутствии. В последнем случае таллий определяют дополнительно по дитизонату как описано выше и затем по разности вычисляют количество сурьмы. Окрашенные соединения сурьмы и таллия с органическими комплексами количественно экстрагируются толуолом. Измеряют оптическую плотность окрашенного в голубой цвет раствора, при длине волны 610 нм для сурьмы и 640 нм для таллия в кювете с толщенной поглощающего слоя 10 мм. Раствором сравнения является толуол. Определение количества сурьмы и таллия производят по калибровочному графику, который строят отдельно по стандартным растворам катионов в растворе кислоты серной. Граница определения — 0,1 мг
3. Спектрофотометрия в видимой области спектра. Для предложенных соединений может быть записан спектр поглощения в видимой области, определена оптическая плотность в максимуме поглощения и рассчитано содержание вещества в растворе по калибровочным графикам.
Атомно-абсорбционная спектроскопия
Метод атомно-абсорбционной спектроскопии - это метод элементного анализа и исследования вещества по атомным спектрам поглощения. Для наблюдения этих спектров через атомный пар пробы пропускают видимое или ультрафиолетовое излучение. В результате поглощения квантов излучения электроны атомов переходят с нижних энергетических уровней на возбужденные. Этим переходам в атомном спектре соответствуют так называемые резонансные линии, характерные для данного элемента. Достоинствами метода является высокая избирательность, высокие пределы обнаружения (10-1 - 10-4 мг/мл) хорошая воспроизводимость результатов.
Эмиссионный спектральный анализ
В основу метода положена способность атомов вещества испускать электромагнитные волны под действием пламени, плазмы, дугового или высокочастотного разряда в плазматронах. Спектры испускания регистрируют в спектрогрофах на фотопластинах (спектрограммы). Эмиссионный спектральный анализ позволяет определить почти все элементы при содержании в растворах от 10-4 до 10-20мг/мл.
Рентгено-флуоресцентный метод
Данный метод применяется для определения всех элементов периодической системы в растворах и твердых объектах. Предел обнаружения 10-3 до 10-4 мг/мл. Также может быть использован для исследования природы химических связей, распределения валентных электронов и определения зарядов катионов. Метод основан на изучении рентгеновских спектров испускания (эмиссионные PC) и поглощения (абсорбционные PC).