- •Кожина Ольга Владимировна
- •Раздел 1. Белки
- •Тема 1 аминокислотный состав белка. Классификация и свойства аминокислот. Качественные реакции на белки и аминокислоты
- •Лабораторная работа №1 цветные реакции на белки и аминокислоты
- •1.4 Реакция на серусодержащие аминокислоты (реакция Фоля).
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 2 физико-химические свойства белков. Методы осаждения белков. Высаливание и денатурация
- •Лабораторная работа №2 диализ растворов белков
- •Лабораторная работа №3 осаждение белков высаливанием
- •Лабораторная работа №4 осаждение белков при кипячении
- •Лабораторная работа №5 осаждение белков солями тяжелых металлов
- •Лабораторная работа №6 осаждение белков концентрированными минеральными кислотами
- •Лабораторная работа №7 осаждение белков органическими веществами
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 3 количественное определение белка. Оценка на основании фотометрии продуктов цветной реакции. Построение калибровочных графиков
- •Лабораторная работа №8 количественное определение белка
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 4 гидролиз белка. Характеристика пептидной связи
- •Лабораторная работа №9 кислотный гидролиз простого белка
- •Лабораторная работа №10 формоловое титрование (по Серенсену)
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 5 хроматографическое разделение аминокислот
- •Лабораторная работа №11 хроматографическое разделение аминокислот на бумаге
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 2. Ферменты
- •Тема 6 ферменты как биологические катализаторы. Свойства ферментов
- •Лабораторная работа №12 специфичность действия ферментов
- •Лабораторная работа №13 термолабильность ферментов
- •Лабораторная работа №14 влияние реакции среды на действие ферментов слюны
- •Определение оптимума рН действия амилазы слюны
- •Лабораторная работа №15 влияние активаторов и ингибиторов на действие ферментов
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 7 действие ферментов отдельных классов
- •Лабораторная работа №16 определение активности пепсина
- •Лабораторная работа №17 действие пепсина на белок фибрин
- •Лабораторная работа №18 обнаружение каталазы в крови
- •Лабораторная работа №19 действие липазы на жиры
- •Лабораторная работа №20 действие пероксидазы крови
- •Контрольные вопросы:
- •Тема 8 витамины, как структурные компоненты ферментов
- •Лабораторная работа №21 качественные реакции на жирорастворимые витамины
- •Лабораторная работа №22 качественные реакции на витамины группы в
- •Лабораторная работа №23 качественные реакции на витамин с
- •Лабораторная работа №24 количественное определение витамина с
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 3. Нуклеиновые кислоты и их обмен
- •Тема 9 структура и функции нуклеиновых кислот. Нуклеопротеиды
- •Лабораторная работа №25 выделение дезоксирибонуклеопротеидов (днп) из тканей
- •1. Экстракция и выделение днп из тканей.
- •Лабораторная работа №26 гидролиз нуклеопротеидов
- •2. Качественные реакции на составные части нуклеопротеидов.
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 4. Углеводы и их обмен
- •Тема 10 углеводы. Восстанавливающая способность углеводов
- •Лабораторная работа №27 качественное определение глюкозы
- •Лабораторная работа №28 качественное определение фруктозы
- •Лабораторная работа №29 обнаружение восстанавливающей способности углеводов
- •Контрольные вопросы:
- •Лабораторная работа №31 обнаружение молочной кислоты в мышечной ткани
- •Лабораторная работа №32 количественное определение пировиноградной кислоты
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 5. Липиды и их обмен
- •Тема 12 структура и функции липидов
- •Лабораторная работа № 33 качественное определение липидов сыворотки крови
- •Лабораторная работа №34 сравнение ненасыщенности жиров
- •Лабораторная работа №35 обнаружение стеролов
- •Лабораторная работа №36 качественные реакции на холестерин
- •1. Реакция Либермана-Бурхарда.
- •2. Реакция Сальковского.
- •Контрольные вопросы:
- •Лабораторная работа №38 качественные реакции на желчные кислоты
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 6. Гормоны
- •Тема 14 регуляция обмена веществ. Гормоны
- •Лабораторная работа №39 качественные реакции на инсулин
- •Лабораторная работа №39 качественное определение адреналина
- •Контрольные вопросы:
- •Раздел 7. Энергетический обмен
- •Лабораторная работа №42 обнаружение над в дрожжах
- •Контрольные вопросы:
- •Список литературы
- •Содержание
Контрольные вопросы:
Что такое гидролиз белка и как его производят?
Как установить конец гидролиза белка?
Какое значение имеет определение карбоксильных групп методом формолового титрования?
Каков принцип и химизм формолового титрования?
Как различаются белки по форме их молекул?
Что понимают под первичной структурой белка? Какие связи формируют эту структуру?
Что представляет собой вторичная структура белка? Какие связи ее формируют?
Что такое водородная связь?
Что понимают под третичной структурой белка? Какие связи формируют эту структуру?
Чем различаются структуры молекул глобулярных и фибриллярных белков?
Что понимают под четвертичной структурой белка?
Какими методами изучают структуру белковой молекулы?
Тема 5 хроматографическое разделение аминокислот
Хроматографические методы применяются для сорбционно-динамического разделения смеси аминокислот, белков (а также углеводов, липидов и их метаболитов).
Различают несколько видов хроматографии:
1) адсорбционная – основана на различной способности отдельных компонентов смеси адсорбироваться на поверхности твердой фазы сорбента (М.С. Цвет, 1903 г.);
2) распределительная – основана на различной растворимости разделяемых веществ в двух малосмешивающихся жидкостях;
3) ионообменная – основана на различной способности разделяемых веществ к обмену их ионов на ионы неподвижной фазы сорбента;
4) осадочная – основана на образовании труднорастворимых осадков в определенной последовательности;
5) диффузионная – основана на разделении веществ по скорости диффузии внутрь сорбента в зависимости от размера молекул.
Различают хроматографические методы и по технике выполнения: колоночная и плоскостная. В зависимости от агрегатного состояния фаз: газовая, жидкостная и газожидкостная хроматография. По направлению движения растворителя: восходящая, нисходящая, одномерная, двумерная и радиальная.
Лабораторная работа №11 хроматографическое разделение аминокислот на бумаге
ПРИНЦИП РАБОТЫ:
С помощью хроматографии можно выделить отдельные вещества из небольшого количества сложной смеси.
Отдельные аминокислоты обладают различной растворимостью в двух частично смешивающихся жидкостях, одной из которых является вода, а другой – водонасыщенный органический растворитель, например фенол. Из них один растворитель должен быть полярный (неподвижная фаза), а другой – неполярный (подвижная фаза). Более гидрофобные аминокислоты, лучше растворяющиеся в неполярном растворителе, движутся с большей скоростью от линии старта, чем гидрофильные аминокислоты. В результате этого смесь аминокислот по окончании хроматографического разделения оказывается на разном расстоянии от линии старта.
РЕАКТИВЫ и ОБОРУДОВАНИЕ:
1) растворы аминокислот; 2) смесь бутанола, уксусной кислоты и воды (15:3:7) или водонасыщенный раствор фенола; 3) нингидрин, 0,2 % спиртовой раствор; 4) вертикальные хроматографические камеры; 5) полоски хроматографической бумаги (длина 20-30 см, ширина 10-12 см); 6) капилляры для нанесения аминокислот; 7) пинцеты; 8) сушильный шкаф, нагретый до 70-90 ºС; 9) линейка с делениями.
ХОД РАБОТЫ:
На полоске хроматографической бумаги простым карандашом проводят стартовую линию на расстоянии 2-3 см от нижнего края. В точки 1,2,3 (обозначенные карандашом на расстоянии 2 см друг от друга) наносят специальной пипеткой (или стеклянным капилляром) аминокислоты: в точку 1 - триптофан (аланин или аргинин), в точку 2 - глицин (аргинин или лизин), в точку 3 - их смесь. Нанесение проводят в несколько приемов, следя за тем, чтобы пятно раствора при каждом прикосновении капилляра к бумаге не растекалось более чем на 3 мм. Каждую последующую порцию раствора наносят после полного высыхания предыдущей. Диаметр пятна не должен превышать 5 мм. Расстояние точек от бокового края хроматографической бумаги должно быть не менее 2 см. Полоску бумаги следует держать за края (!)
Полоску хроматографической бумаги с нанесенными на нее растворами (после высушивания) помещают в хроматографическую камеру, в которую предварительно (за сутки) налита разделительная система бутанола, уксусной кислоты и воды (15:3:7) или водонасыщенный фенол. Нижний край хроматограммы погружают в жидкость примерно на 3-5 мм и подвешивают в камере, которую затем закрывают.
После достижения фронтом растворителя (водной смеси, бутанола и уксусной кислоты или фенола) верхнего конца бумаги (1-1,5 часа), полоску просушивают в сушильном шкафу, предварительно отметив границу фронта растворителя. После этого опускают её в 0,2 % спиртовой раствор нингидрина на 3 секунды. Затем просушивают в сушильном шкафу при температуре 70-90 ºС (15 минут). Позиции аминокислот на хроматограмме выявляются в виде сине-фиолетовых пятен.
Вклейте хроматограмму в тетрадь. Идентифицируйте пятна, рассчитав для каждого пятна коэффициент распределения Rf или скорость перемещения по формуле:
Rf = а/ b,
где а – расстояние в мм, пройденное аминокислотой от места нанесения аминокислоты до середины ее пятна; b – расстояние в мм от места нанесения аминокислоты до фронта растворителя.
РЕЗУЛЬТАТЫ и ВЫВОД: