- •Передмова
- •Правила роботи в клініко-діагностичній лабораторії
- •Правила роботи в клініко-діагностичній лабораторії
- •Розділ 1 інструментальні методи аналізу в медицині
- •Розділ 2 правила роботи з приладами
- •2.1. Фотоелектроколориметри
- •2.1.2. Колориметр фотоелектричний концентраційний кфк-2мп
- •2.1.4. Фотометр аналітичний медичний мефан-8001
- •2.2. Правила проведення фотометрії та розрахунок результатів досліджень
- •2.3. Поляриметр
- •2.4. Рефрактометр ирф–22
- •2.5. Прилади для потенціометричного аналізу
- •2.5.2. Універсальний йономір эв–74
- •Контрольні питання до розділів 1 – 2
- •Розділ 3 методи вивчення білкового обміну
- •Визначення загального білка в сироватці крові й інших біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 1 Уніфікований метод визначення загального білка в сироватці крові. Біуретова реакція
- •Лабораторна робота № 2 Рефрактометричний метод визначення загального білка в сироватці крові
- •Лабораторна робота № 3 Визначення загального білка в сечі. Проба Гелера
- •Клініко-діагностичне значення визначення загального білка у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 4 Проби колоїдостійкості білків сироватки крові. Тимолова проба
- •Приклад побудови калібрувального графіка для визначення тимолової проби
- •Клініко-діагностичне значення тимолової проби
- •Лабораторна робота № 5 Визначення білкового спектру сироватки крові методом електрофорезу на папері
- •Приклад розрахунку білкових фракцій у відносних одиницях
- •Приклад розрахунку білкових фракцій в абсолютних одиницях
- •Клініко-діагностичне значення дослідження електрофореграм
- •Приклад опрацювання електрофореграм за допомогою комп'ютера
- •Контрольні питання до розділу 3
- •Розділ 4. Небілкові нітрогенвмісні (Азотисті) сполуки
- •Методи дослідження вмісту сечовини, креатину, креатиніну та сечової кислоти в біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 6 Визначення сечовини в сироватці крові та сечі за кольоровою реакцією з діацетилмонооксимом
- •Готування робочого реактиву
- •Клініко – діагностичне значення кількісного визначення сечовини у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота № 7 Визначення креатиніну в біологічних рідинах за кольоровою реакцією Яффе
- •Б) Хід визначення вмісту креатиніну в добовій сечі
- •Клініко-діагностичне значення дослідження концентрації креатиніну у біоматеріалі
- •Лабораторна робота № 8 Визначення сечової кислоти в сироватці крові за реакцією з фосфорно-вольфрамовим реактивом
- •Лабораторна робота № 9 Кількісне визначення сечової кислоти в сечі
- •Клініко-діагностичне значення дослідження вмісту сечової кислоти у біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 4
- •Розділ 5. Ферменти
- •Визначення активності α-амілази в біоматеріалі
- •Лабораторна робота № 10 Визначення активності α–амілази зі стійким крохмальним субстратом. Метод Каравею
- •Лабораторна робота № 12 Визначення активності α-амілази в сироватці крові. Метод Кінга
- •Лабораторна робота № 13 Вплив рН середовища на активність ферментів
- •Лабораторна робота № 14 Вплив активаторів та інгібіторів на активність ферменту α-амілази
- •Лабораторна робота № 15 Вплив температури на активність
- •Готування розведеної слини
- •Клініко-діагностичне значення визначення активності α-амілази у біологічних рідинах
- •Визначення амінотрансфераз у сироватці крові
- •Лабораторна робота № 16 Колориметричний метод визначення активності аспартатамінотрансферази у сироватці крові (за Райтманом – Френкелем)
- •Клініко-діагностичне значення визначення активності амінотрансфераз у сироватці крові
- •Контрольні питання до розділу 5
- •Розділ 6. Методи вивчення вуглеводного обміну
- •Лабораторна робота № 17 Якісне визначення глюкози в біологічних рідинах. Реакція Тромера
- •Лабораторна робота № 18 Визначення глюкози в біологічних рідинах глюкозооксидазним (уніфікованим) методом
- •Лабораторна робота № 19 Кількісне визначення глюкози в сечі за кольоровою реакцією з о-толуїдиновим реактивом
- •Лабораторна робота № 20 Кількісне визначення глюкози в сечі поляриметричним методом
- •Клініко-діагностичне значення визначення глюкози в біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 6
- •Розділ 7. Обмін ліпідів
- •Біологічна роль ліпідів
- •Лабораторна робота №21 Якісна реакція на ацетон та ацетоацетатну кислоту
- •Лабораторна робота №22 Якісна реакція на ацетоацетатну кислоту. Реакція Герхарда
- •Лабораторна робота №23 Якісне виявлення ацетону у біологічних рідинах
- •Лабораторна робота №24 Якісна реакція на β-оксимасляну кислоту
- •Клініко-діагностичне значення визначення кетонових тіл у біологічних рідинах
- •Контрольні питання до розділу 7
- •Біохімічні показники для дорослих у нормі
- •Література
- •Безпальченко Віолета Михайлівна
- •Практикум Навчальний посібник для студентів вищих навчальних закладів
Готування розведеної слини
Рот обполіскують 2 – 3 рази водою для видалення залишків їжі. Відміряють циліндром 50 мл дистильованої води і обполіскують нею рот протягом 3 – 5 хвилин в декілька прийомів. Зібрану рідину (приблизно 50 – 60 мл) фільтрують через вату і фільтрат використовують для роботи.
Хід визначення
В чотири пронумеровані пробірки наливають по 2 мл розчину крохмалю. Пробірку №1 вміщують у киплячу водяну баню, пробірку № 2 – у водяний термостат при 37 оС, пробірку № 3 залишають при кімнатній температурі, а пробірку № 4 занурюють у лід. Через 10 хвилин в усі пробірки додають по 0,5 мл розведеної слини, перемішують за допомогою скляної палички і залишають при тих же умовах. Спостерігають за гідролізом крохмалю за реакцією з йодом. Для цього наносять на фарфорову пластину кілька крапель розчину йоду в калій йодиді і змішують їх з краплями суміші , що гідролізується в кожній пробірці, беручи проби через 1, 2, 4, 6, 8, 10 і 12 хвилин. За зміною кольору розчину визначають ступінь гідролізу крохмалю в кожній пробірці. Результати спостережень заносять у таблицю 15.
Таблиця 15
Результат впливу температури
на гідроліз крохмалю
№ пробірки |
Температура реакції, оС |
Час реакції, хвилини |
||||||
1 |
2 |
4 |
6 |
8 |
10 |
12 |
||
1 |
100 |
|
|
|
|
|
|
|
2 |
40 |
|
|
|
|
|
|
|
3 |
15 – 20 |
|
|
|
|
|
|
|
4 |
0 |
|
|
|
|
|
|
|
В таблиці 15 результати спостережень відмічають таким чином:
літерою "с" – позитивну пробу з йодом на крохмаль (синій колір);
літерою "ч" – позитивну пробу на декстрини (червоний колір);
літерою "ж" – негативну пробу (жовтий колір).
За отриманими даними роблять висновок про вплив температури на активність α-амілази слини і визначають величину температурного оптимуму ферменту.
Клініко-діагностичне значення визначення активності α-амілази у біологічних рідинах
Активність α–амілази в крові та сечі протягом дня (а також від одного дня до іншого) піддається значним змінам. Відзначено істотні індивідуальні розходження цих показників у обстежуваних без патології органів травлення. Коливання виділення амілази викликають необхідність її дослідження в сечі, зібраної за добу. На показниках активності цього ферменту позначається характер харчування: при збільшенні утилізації глюкози вміст амілази в крові знижується. Емоційні, стресові стани призводять до гіперамілаземії.
Значне зростання активності амілази зустрічається при захворюваннях підшлункової залози. При гострому панкреатиті активність ферменту в крові і сечі збільшується в 10 – 30 разів. Гіперамілаземія наступає на початку захворювання, досягає максимуму за 12 – 24 години після розвитку, потім швидко знижується і приходить до норми на 2 – 6 день. Гіперамілазурія триває довше. Амілазна активність підвищена у 3 – 5 рази при гострому апендициті, перитоніті, перфоративній виразці шлунку та дванадцятипалої кишки. У хворих на перитоніти збільшується амілазна активність, як наслідок розвитку утворюючих амілазу бактерій. У цілому причинами гіперамілаземії є порушення відтоку секретів із залоз (продуцентів амілази), некрози тканини. Гіперамілаземію викликають багато фармакологічних і деяких інших речовин: кортикостероїдні препарати, адреналін, фуросемід, гістамін, саліцилати, антикоагулянти, морфін, кодеїн, тетрациклін, а також алкоголь. У більшості випадків це пояснюється впливом препаратів на відтік секрету із залози і стимуляцією його продукції.
Гіпоамілаземія в клінічній практиці зустрічається рідко і свідчить про недостатність екзокринної функції підшлункової залози.
Майже завжди амілаземія супроводжується амілазурією, але визначення активності амілази сечі не завжди є показником діагностики. Дослідження амілази в добовій сечі є надійним біохімічним тестом діагностики захворювання підшлункової залози.
Коефіцієнт відношення активності α–амілази крові до активності α–амілази сечі служить показником функціональної повноцінності ниркового фільтра.
Захворюваннями, при яких спостерігається значне підвищення активності α-амілази в крові, є паротити. У хворих із захворюваннями печінки (гепатитами, цирозами, інтоксикаціями, злоякісними пухлинами й їхніми метастазами у печінку) спостерігається зниження амілазної активності крові. Гіпоамілаземія відзначається також у хворих із великими опіками шкіри, цукровим діабетом, із загальним розладом харчування і падінням ваги.