всэ рыб

но без газа или с наличием газа при слабом образовании кис˝лоты) проводят подтверждающий высев на плотную дифференциаль˝ную среду Эндо. Посевы инкубируют при (37±1) °С в течение 18…24 ч.

При наличии на среде Эндо темно-красных, красных, розовых и˝

бесцветных колоний с металлическим блеском и без него их ˝принадлежность к БГКП подтверждают микроскопированием окр˝а-

шенных по Граму мазков. Результат считают положительным п˝ри обнаружении даже одной колонии с признаками бактерий гру˝ппы

кишечных палочек. При обнаружении в посевах грамотрицате˝ль-

ных неспорообразующих палочек, сбраживающих при (37±1) °С

лактозу с образованием кислоты и газа, дают заключение о т˝ом,

что обнаруженные микроорганизмы относятся к бактериям г˝руппы кишечных палочек, и указывают навеску продукта в грамм˝ах.

Определение сальмонелл. Проводят согласно ГОСТ Р 50480

«Продукты пищевые. Метод выявления бактерий рода

Salmonella».

Метод основан на высеве определенного количества продук˝та (25 г) согласно НД и СанПиН 2.3.2.1078 — 01 на жидкие несе-

лективные и селективные питательные среды с выделением ч˝ис-

тых культур на диагностических средах с морфологическим˝и и

культуральными признаками сальмонелл, в проверке биохим˝и-

ческих свойств выделенных культур и серологической иден˝тификации.

Исследуемое количество продукта (25 г) высевают в пептонно˝-

забуферную среду в соотношении 1:5. Посевы инкубируют при

(37±1) °С в течение 16…24 ч. Затем 10 см3 культуры из пептонно-

забуферной среды пересевают в 90 см3 одной из сред обогащения (Кауфмана, Мюллера, селенитовую, магниевую). Посевы инкуби˝- руют при (37±1) °С в течение 24…48 ч. Затем делают пересевы на

две дифференциальные среды (Эндо, Левина) и висмут-сульфит- ный агар (ВСА). Посевы инкубируют при (37±1) °С в течение 18…24 ч, а на ВСА — (48±1) ч. Сальмонеллы на среде Эндо растут в виде бесцветных колоний, на среде Левина — голубоватых, на

ВСА — в виде черных колоний с металлическим блеском и окр˝ас-

кой среды под колониями в черный цвет. При отсутствии подо˝- зрительных колоний на дифференциальных средах работу с п˝осевами прекращают.

Биохимические свойства культуры определяют путем иссле˝до-

вания не менее пяти подозрительных колоний, выросших на д˝иф-

ференциальной среде. Определяют расщепление сахаров, моч˝евины, образование индола, сероводорода, ацетилметилкарбино˝ла (реакция Фогес — Проскауэра), утилизацию цитрата, расщеп˝ле-

ние аминокислот.

Изучение серологических свойств сальмонелл производят ˝с

помощью постановки реакции агглютинации на стекле с поли˝ва-

151

лентными и монорецепторными агглютинирующими адсорбиро˝- ванными сальмонеллезными сыворотками. Результаты иссле˝дований оценивают по каждой пробе в отдельности.

К бактериям рода сальмонелл относят те культуры, которые

дали типичные биохимические и серологические реакции. В п˝ротоколах проведенной экспертизы, в результатах исследова˝ний

обязательно указывают количество навески продукта (25 г). Ускоренная индикация сальмонелл может быть осуществлен˝а с

помощью реакции коагглютинации согласно Методическим у˝каза-

ниям по ускоренному санитарно-бактериологическому конт˝ролю

сырья и продукции животного и растительного происхожден˝ия на

наличие сальмонелл, энтеропатогенных эшерихий и иерсини˝й.

Определение золотистого стафилококка (S. aureus). Проводят

согласно ГОСТ 10444.2 «Продукты пищевые. Методы выявления

и определения количества Staphylococcus aureus».

Метод выявления S. aureus основан на высеве определенного

количества продукта, согласно НД и СанПин 2.3.2.1078 — 01, на элективные питательные среды с повышенным содержанием х˝ло-

рида натрия или с добавлением хлорида лития и на подтверж˝де-

нии принадлежности выросших микроорганизмов к S. aureus ïî

реакции коагулирования плазмы крови кролика.

Из продукта или его 10-кратных разведений делают посев в 6,5%-й солевой бульон в соотношении к питательной среде 1:9.

При этом для выделения S. aureus из 1 г продукта берут 10 см3 åãî

первого разведения. Посевы инкубируют при (37±1) °С в течение˝

24…48 ч, затем пересевают поверхностным или глубинным мето-

дом на яично-желточный солевой агар. Посевы просматривают˝ после 18…24 ч инкубирования при (37±1) °С. На яично-желточ- ном солевом агаре колонии S. aureus могут быть белого и различ-

ных оттенков желтого цвета с образованием вокруг зоны лецитиназной активности.

Принадлежность обнаруженных колоний к S. aureus подтверждают микроскопированием мазков, окрашенных по Граму. При

микроскопировании устанавливают колонии с мелкими, собр˝ан-

ными в гроздья грамположительными кокками. Из пяти колони˝й стафилококков проводят пересев на скошенный питательны˝й агар. Посевы термостатируют при (37±1) °С в течение 24…48 ч.

Сравнивают с мазками, окрашенными по Граму, чистоту культ˝у-

ры выделенных стафилококков на скошенном агаре. Выделенн˝ые

чистые культуры проверяют на способность коагулировать˝ плазму крови кролика. Для этого разведенную плазму крови кролика˝ разливают по 0,5 см3 в стерильные пробирки. В нее вносят по петле

анализируемых культур, оставляя одну пробирку с разведен˝ной

плазмой крови и не засеянной (контроль). Внесенную культур˝у

тщательно перемешивают и инкубируют при (37±1) °С в течение

152

3…6 ч. Если через 6 ч коагуляция плазмы не произошла, то проб˝ирки оставляют при (30±5) °С на 24 ч. При отсутствии свертывания плазмы или появлении отдельных нитей через 24 ч исследуем˝ую культуру стафилококков относят к коагулазоотрицательно˝й. Реак-

цию считают положительной при обнаружении даже небольшо˝го компактного сгустка. При получении положительной реакци˝и

плазмокоагуляции считают, что в посевах обнаружен S. àuråus.

При обнаружении роста коагулазоположительных стафилоко˝к-

ков на яично-желточном солевом агаре дают заключение о пр˝и-

сутствии S. aureus в исследуемой пробе продукта (с указанием

массы навески).

Определение промышленной стерильности. Проводят согласно ГОСТ 30425. Сущность метода основана на определении внешне-

го вида и герметичности консервов, выявлении в продукте ж˝изне-

способных микроорганизмов и при необходимости на опреде˝ле-

нии их количества, микроскопировании продукта, а в случая˝х,

предусмотренных нормативным документом на конкретный в˝ид консервов, — на определении рН продукта.

Исследование на выявление КОЕ/1 г парагемолитических вибрионов. С введением в действие с 1 сентября 2002 г. СанПиН

2.3.2.1078—01 (п. 1.3.7.1) в обязательном порядке проводят соглас-

но приложению ¹ 2 к временной инструкции ¹ 13—2/1249 от 26.05.98 г. «По борьбе с вибриозом рыб».

Сущность метода основана на выявлении типичных колоний

на дифференциально-диагностических средах определенног˝о со-

става и установлении принадлежности бактерий к парагемо˝лити-

ческим вибрионам по морфологическим и биохимическим сво˝й- ствам.

Парагемолитические вибрионы — мезофильные грамотрица˝-

тельные палочки, прямые или слегка изогнутые, не образующ˝ие спор, активно подвижны, содержат цитохромоксидазу, не рас˝- щепляют лактозу и сахарозу, растут на питательных средах ˝с содержанием хлорида натрия (3…8 %), декарбоксилируют лизин, об-

разуют индол, ферментируют (без газообразования) арабино˝зу,

глюкозу, мальтозу, не образуют ацетилметилкарбинола.

Определение возбудителя листериоза. Проводят согласно НД, МУК 4. 2.1122—02 «Организация контроля и методы выявления бактерий Listeria monocytogenes в пищевых продуктах» и по ГОСТ

Р 51921—02 «Продукты пищевые. Методы выявления и определе-

ния бактерий Listeria monocytogenes».

Сущность метода основана на высеве определенного количе˝- ства пищевого продукта (25 г) в жидкую селективную питател˝ь-

ную среду (с предварительным обогащением), последующем пе˝-

реносе на агаризованные селективно-диагностические сре˝ды и

культивировании посевов при оптимальных условиях. Прина˝д-

153

лежность выявленных колоний к Listeria monocytogenes определяют по биологическим свойствам.

Санитарно-гигиенические требования к качеству и безопас˝ности речных раков должны соответствовать Санитарно-эпиде˝мио-

логическим правилам и нормативам (СанПиН 2.3.2.1078—01).

3.2.5. ИССЛЕДОВАНИЕ ХИМИЧЕСКОГО СОСТАВА МЯСА РАКОВ

Исследования проводят согласно ГОСТ 7631—85 «Рыба, морс-

кие млекопитающие, морские беспозвоночные и продукты их п˝е-

реработки. Правила приемки, органолептические методы оце˝нки

качества, методы отбора проб для лабораторных исследован˝ий» и

ГОСТ 7636—85 «Рыба, морские млекопитающие, морские беспозвоночные и продукты их переработки. Методы анализа».

Определение массовой доли влаги методом высушивания. Ñóù-

ность метода основана на испарении воды из навески высуши˝ва-

нием при 100…105 °С и определении разницы массы (веса) при

взвешивании.

П р и б о р ы: сушильный шкаф, электрическая плитка, весы.

П о д г о т о в к а к а н а л и з у. Сухой песок, используемый для

предотвращения спекания навески при высушивании, предва˝ри-

тельно просеивают через сито с диаметром отверстий 1…3 мм˝ и

очищают следующим образом: промывают чистой водопроводн˝ой водой, заливают раствором соляной кислоты (1:1) на сутки, тща˝-

тельно промывают водопроводной, а затем дистиллированно˝й во-

дой до исчезновения кислой реакции на лакмус, высушивают,˝

прокаливают и просеивают.

П р о в е д е н и е а н а л и з а. В чистую, предварительно высушенную и тарированную бюксу со стеклянной палочкой, с пом˝о- щью которой распределяют навеску ровным слоем, вносят 5…10 ˝г

песка и смешивают его с навеской анализируемой пробы масс˝ой

2…3 г, взвешенной с абсолютной погрешностью не более 0,001 г. Навеска может быть увеличена до 5 г при использовании ее п˝осле высушивания для определения содержания жира. Бюксу закры˝вают притертой крышкой, взвешивают на аналитических весах и˝

высушивают в течение 2 ч при 60…80 °С, а затем — в сушильном

шкафу при 100…105 °С до постоянной массы. В сушильном шкафу не следует одновременно высушивать другие виды продук˝тов.

Постоянная масса считается достигнутой, если разница меж˝ду

двумя взвешиваниями не превышает 0,001 г. Перед каждым взве-

шиванием бюксу с пробой закрывают крышкой, охлаждают 30 мин в эксикаторе.

Массовую долю влаги (X1) в процентах определяют по формуле

154

ãäå m — масса бюксы с песком, г; m1 — масса бюксы с навеской и песком до высушивания, г; m2 — масса бюксы с навеской и песком после высушивания, г.

За окончательный результат принимают среднее арифметич˝ес-

кое значение результатов двух параллельных определений˝, допус-

каемые расхождения между которыми не должны превышать

0,5 %. Вычисление проводят до первого десятичного знака.

Макрометод определения массовой доли белковых веществ. Ìå-

тод заключается в окислении органического вещества при с˝жига-

нии его в серной кислоте в присутствии катализатора, отго˝нке об-

разующегося аммиака паром, улавливании его раствором сер˝ной

кислоты и определении содержания азота методом титрован˝ия. П р и б о р ы и р е а к т и в ы: весы, песчаная баня, электричес-

кая плитка, установка для перегонки с водяным паром, вытяж˝ной

шкаф, кислота серная концентрированная и 0,1 н. раствор (ис-

пользуют стандарт-титр серной кислоты), 0,1 н. и прокипяченн˝ый

33%-й растворы гидроксида натрия, сульфат меди 5-водный, сульфат калия, индикатор смешанный (Таширо).

П о д г о т о в к а к а н а л и з у. Приготовление индикатора Та-

широ: 0,12 г метилового красного и 0,08 г метиленового синего

растворяют отдельно в небольшом количестве 90%-го спирта. Ра˝-

створы сливают в мерную колбу вместимостью 100 см3, объем доводят спиртом до метки.

П р о в е д е н и е а н а л и з а. Навеску исследуемого материала

массой 0,6…1,0 г взвешивают с абсолютной погрешностью не бо-

лее 0,0005 г в закрытой с одной стороны трубочке из фильтровал˝ь- ной бумаги или станиоля, помещают в колбу для сжигания вме˝с- тимостью 100 см3, добавляют несколько мелких кристаллов сульфата меди (0,2…0,3 г) и приливают 10…20 см3 концентрированной

серной кислоты.

Колбу с содержимым осторожно нагревают в вытяжном шкафу, не допуская разбрызгивания жидкости. Когда содержимое˝ колбы станет однородным, прекращают нагревание, дают осты˝ть, прибавляют 0,5 г сульфата натрия и продолжают нагревание до

тех пор, пока жидкость в колбе не станет прозрачной, зелено˝вато-

голубой без бурого оттенка. Внутренние стенки колбы должн˝ы быть совершенно чистыми. Это достигается осторожным взба˝л- тыванием содержимого колбы для смывания со стенок темных˝,

обугленных частиц навески.

По окончании сжигания содержимое колбы охлаждают и подвергают перегонке с водяным паром, для чего монтируют соо˝твет-

ствующую установку. Приемником служит коническая колба в˝ме-

155

стимостью 250…300 см3, в которую наливают 25…30 см3 0,1 н. раствора серной кислоты. Конец трубки холодильника должен б˝ыть погружен в раствор серной кислоты. Содержимое колбы Къель˝даля переносят в отгонную колбу вместимостью 500…750 см3, òùà-

тельно ополаскивают. Полноту смывания проверяют добавле˝нием 1…2 капель раствора метилового красного. Общее количество˝ ра-

створа в отгонной колбе должно быть не более 250…300 см3.

В отгонную колбу осторожно, по стенкам, избегая смешивани˝я

жидкостей, приливают 50…70 см3 33%-го раствора гидроксида на-

трия, бросают кусочек лакмусовой бумаги и быстро закрываю˝т

пробкой, соединенной посредством каплеуловителя с холод˝иль-

ником, осторожно перемешивают содержимое и нагревают. Реа˝к- ция жидкости в колбе должна быть резкощелочной.

После закипания жидкости в колбе приемник опускают так,

чтобы конец трубки холодильника находился на некотором р˝ас-

стоянии от поверхности раствора, и продолжают отгонку до ˝тех

пор, пока не отгонится 1/2 жидкости.

Конец отгонки определяют по лакмусовой бумаге. Если отгон˝-

ка закончена, капля дистиллята не должна вызывать посинен˝ия

красной лакмусовой бумаги. При появлении в конце отгонки ˝при

кипении толчков отгонку прекращают. По окончании отгонки˝

конец трубки холодильника обмывают дистиллированной во˝дой в приемную колбу и содержащийся в ней избыток серной кислот˝ы

оттитровывают 0,1 н. раствором гидроксида натрия в присутс˝твии

индикатора Таширо. Одновременно проводят контрольный ан˝а-

лиз без навески исследуемого образца.

Массовую долю белковых веществ (X2, %) вычисляют по формуле

ãäå V — количество 0,1 н. раствора гидроксида натрия, израсходо˝ванного на титрование серной кислоты в контрольном анализе, см3; V1 — количество 0,1 н. раствора гидроксида натрия, израсходованного на титрование серно˝й кислоты в рабочем анализе, см3; К — коэффициент пересчета на точный 0,1 н. раствор гидроксида натрия; 0,0014 — количество азота, эквивалентное 1 см3 0,1 н. раствора гидроксида натрия; 6,25 — коэффициент пересчета количества азота на бе˝лковые вещества; m — навеска измельченного мяса, г.

За окончательный результат принимают среднее арифметич˝ес-

кое значение результатов двух параллельных определений˝, допус-

каемые расхождения между которыми не должны превышать

0,2 %. Вычисление проводят до второго десятичного знака.

Определение содержания массовой доли жира по обезжиренн˝ому

остатку. Метод основан на экстракции жира органическим ра-

156

створителем из сухой навески и определении его массы взве˝шиванием.

П р и б о р ы и р е а к т и в ы: аппарат экстракционный Сокслета, весы, сушильный шкаф, вытяжной шкаф, электрическая˝

плитка, водяная или песочная баня, эфир петролейный с темп˝е- ратурой кипения 40…60 °С или эфир этиловый (по Госфармако-

пее), не содержащий пероксидов, высушенный над хлоридом кальция или сульфатом натрия.

Ï î ä ã î ò î â ê à ê à í à ë è ç ó. Делают пакет из фильтроваль-

ной бумаги, которую предварительно обезжиривают следующ˝им

образом. Листы фильтровальной бумаги свертывают в трубку˝ и

помещают в цилиндр (вместимостью 100…200 см3) с пришлифованной пробкой, в котором находится 100…200 см3 этилового

эфира или петролейного. После того как растворитель подни˝мет-

ся по бумаге до верхнего края, цилиндр открывают, бумагу вы˝ни-

мают и дают растворителю испариться, затем ножницами от в˝ерх-

него края отрезают полоску шириной 4…5 см, а остальную част˝ь бумаги используют для приготовления пакетов. Вату обезжи˝рива-

ют также в цилиндре. Обезжиренную вату и бумагу хранят в за˝к-

рытой посуде. Обезжиренный прямоугольный (8 × 9 см) кусок бу-

маги навертывают на деревянную болванку. По мере навертыв˝а-

ния свободный край бумаги подворачивают складками для образования донышка пакета. Бумагу и болванку берут таким об-

разом, чтобы стенки пакета получились двойными. На дно пак˝ета

кладут кусочек обезжиренной ваты.

П р о в е д е н и е а н а л и з а. Навески исследуемого образца

массой 2…5 г, отвешенные с абсолютной погрешностью не боле˝е 0,001 г, высушивают в пакете из фильтровальной бумаги, помещенном в бюксу (также можно использовать навеску, оставшу˝юся

после определения воды). Стенки бюксы протирают небольши˝м кусочком ваты, смоченным в петролейном эфире, вату присое˝диняют к навеске в пакет. Пакет с навеской вкладывают в друго˝й пакет из фильтровальной бумаги размером 9 × 10 см так, чтобы

линии загиба обоих пакетов не совпадали во избежание поте˝ри

вещества. Наружный пакет нумеруют графитовым карандашом˝. Пакет с навеской помещают в ту же бюксу и высушивают до постоянной массы в сушильном шкафу при 100…105 °С. Высушенный до постоянной массы пакет с навеской помещают в эк˝-

страктор аппарата Сокслета так, чтобы он не был выше верхн˝его

изгиба трубки. Колбу аппарата Сокслета наполняют примерн˝о на 2/3 петролейным эфиром и присоединяют к экстрактору. Пускают воду в холодильник и колбу с растворителем нагревают˝ на

водяной или песочной бане. Интенсивность нагрева должна

быть такой, чтобы в течение 1 ч происходило не менее 5…6 и не

более 8…10 сливов растворителя.

157

Экстракцию эфиром продолжают в течение 10…12 ч. Оконча- ние экстракции проверяют нанесением капли стекающего из˝ экстрактора растворителя на стекло. После испарения растворителя на стекле не должно быть жирного пятна.

По окончании экстракции пакет помещают в ту же бюксу и в течение 20…30 мин выдерживают в вытяжном шкафу для удале-

ния эфира. Затем высушивают в шкафу при 100…105 °С до постоянной массы в течение 1…3 ч, охлаждают в эксикаторе и взвеши˝-

вают с абсолютной погрешностью не более 0,001 г.

Массовую долю жира (Õ3, %) вычисляют по формуле

=−

ãäå m1 — масса высушенных бюксы, пакета и образца до экстракции, г; m2 — масса высушенных бюксы, пакета и образца после экстракции, г; m — масса исследуемого образца, г.

За окончательный результат принимают среднеарифметичес˝-

кое значение результатов двух параллельных определений˝, допус-

каемые расхождения между которыми не должны превышать

0,5 %. Вычисление проводят до второго десятичного знака.

Определение массовой доли золы. Метод основан на удалении

органических веществ из анализируемой навески сжигание˝м и

определении золы взвешиванием.

Ïр и б о р ы: электрическая плитка, вытяжной шкаф, муфель-

íàÿ ïå÷ü.

Ïр о в е д е н и е а н а л и з а. Навеску образца массой 4 г, взве-

шенную с абсолютной погрешностью не более 0,001 г, помещают

âпредварительно прокаленный, доведенный до постоянной м˝ассы фарфоровый тигель, осторожно обугливают на плитке (на а˝с- бестовой сетке для фосфора) до прекращения выделения дым˝а, а затем озоляют в муфельной печи при 500 °С. После взвешивания˝

остывшего в эксикаторе тигля с золой его повторно прокали˝вают

âтечение 1 ч до постоянной массы, охлаждают и взвешивают с˝ абсолютной погрешностью не более 0,001 г. Цвет золы может быть белым, желтым, серым, оранжевым и другим, но зола не должна содержать черных вкраплений.

Массовую долю золы (X4, %) вычисляют по формуле

=−

ãäå m — навеска исследуемого образца, г; m1 — масса пустого тигля, г; m2 — масса тигля с золой, г.

158

За окончательный результат принимают среднеарифметичес˝- кое значение результатов двух параллельных определений˝, расхождения между которыми не должны превышать 0,01 %. Вычисление проводят до второго десятичного знака.

3.2.6. ОПРЕДЕЛЕНИЕ РАДИОЛОГИЧЕСКОЙ БЕЗОПАСНОСТИ РАКОВ

Партии речных раков подлежат обязательной дозиметрии. Раки непригодны в пищу, если гамма-фон исследуемой партии˝

выше контрольного уровня в 30 мкР/ч.

Содержание в мясе раков токсичных элементов и радионукли˝-

дов не должно превышать опасных для здоровья человека кон˝цен-

траций и соответствовать требованиям СанПиН 2.3.2.1078—01. Раки непригодны в пищу, если в их мясе содержание нормируе˝-

мых токсикантов превышает предельно допустимые концент˝ра-

öèè.

159

Ã Ë À  À 4

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ГЕЛЬМИНТОЗООНОЗОВ В РЫБЕ И ДРУГИХ ВОДНЫХ ЖИВОТНЫХ

4.1. ПАРАЗИТЫ РЫБ. ОБЩИЕ ТРЕБОВАНИЯ И ПОРЯДОК ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ РЫБ

Паразитарные заболевания рыб опасны как источник возмож˝-

ного заражения человека. Кроме того, они вызывают истощен˝ие и

вообще ухудшают санитарно-гигиенические показатели, пит˝а-

тельные, вкусовые и другие товарно-пищевые свойства рыбы.˝ На-

пример, могут обусловливать разрушение нормальной конси˝стенции мяса рыб («бесструктурность мяса»), которое в мировом ˝ры-

боловстве принято именовать молочным, творожистым,

желированным или студенистым, известковым и просто размя˝г-

ченным. При «молочном состоянии» в мясе рыбы, главным обра˝-

зом вдоль спинки, располагаются единичные или многочисле˝н- ные «карманы», заполненные молочно-белой, иногда более те˝м-

ной жидкостью, образовавшейся из гипертрофированных

мышечных волокон. Карманы могут быть прерывисто (гнездам˝и)

расположенными или сплошными. Такое состояние мяса обычн˝о

бывает связано с присутствием только в зоне этих молочных˝ карманов спор миксоспоридий из рода хлоромиксум (Chloromyxum)

или спор других невидимых невооруженным глазом паразито˝в. Необходимо правильно определять степень опасности данн˝ых

паразитов для человека, вероятность их визуального обнар˝ужения и характер реакции потребителя, а также и степень истощен˝ности рыбы. Иногда из-за пораженности паразитами необходимо пот˝ро-

шение и даже удаление некоторых съедобных органов и мяса.˝

У рыб паразитируют не только животные, но и растительные организмы: вирусные, бактериальные, микозные, или грибы, и так называемые альговые, когда возбудителями являются па˝разитические водоросли (от лат. Algae).

Инвазионные болезни подразделяются на: протозойные (воз-˝

будителями служат простейшие одноклеточные животные), ге˝льминтозы (возбудители — паразитические черви — гельминты), а также вызываемые ракообразными паразитами, кишечнополо˝ст-

ными и личинками моллюсков.

Паразиты рыб весьма разнообразны. Так, длина ленточного

червя лигулы (ремнеца) нередко составляет метры, а длина н˝еко-

торых вирусов — микрометры.

160