- •Министерство сельского хозяйства и продовольствия республики беларусь
- •Введение
- •Раздел 1. Физиология и биохимия растительной клетки
- •Работа 1. Проницаемость живой и мертвой протоплазмы
- •Работа 2. Влияние ионов калия и кальция на состояние протоплазмы
- •Работа 3. Определение редуцирующих сахаров
- •Работа 4. Определение кислотного числа жиров
- •Работа 5. Определение изоэлектрической точки белка
- •Работа 6. Обнаружение дегидрогеназ в растительных тканях
- •Работа 7. Газометрическое определение активности каталазы растительных тканей
- •Работа 8. Влияние кислотности среды на активность каталазы
- •Работа 9. Влияние температуры на скорость гидролиза крахмала амилазами
- •Раздел 2. Водный обмен растений
- •Работа 10. Определение содержания воды и сухого вещества в растительном материале
- •Работа 11. Получение полупроницаемой перепонки и наблюдение явлений осмоса
- •Работа 12. Явления плазмолиза и деплазмолиза в растительной клетке
- •Работа 13. Определение водного потенциала растительных тканей с помощью рефрактометра (по н. А. Максимову и н. С. Петинову)
- •Работа 14. Определение осмотического потенциала клеточного сока методом плазмолиза
- •Работа 15. Влияние света и влажности воздуха на транспирацию
- •Работа 16. Определение интенсивности транспирации по методу л.А.Иванова (при помощи торсионных весов)
- •Работа 17. Определение относительной транспирации
- •Работа 18. Определение интенсивности транспирации объёмным методом (в модификации в. П. Моисеева)
- •Работа 19. Определение водного дефицита растений
- •Раздел 3. Фотосинтез
- •Работа 20. Изучение химических свойств пигментов зеленого листа
- •Работа 21. Оптические свойства пигментов
- •Работа 22. Определение содержания хлорофилла в листьях
- •Работа 23. Определение интенсивности истинного фотосинтеза по количеству накопленного сухого вещества
- •Работа 24. Определение чистой продуктивности фотосинтеза
- •Раздел 7. Дыхание растений
- •Работа 25. Расходование органических веществ на дыхание
- •Работа 26. Влияние температуры на интенсивность дыхания
- •Работа 27. Определение величины дыхательного коэффициента
- •Раздел 8. Минеральное питание растений
- •Работа 28. Влияние отдельных элементов минерального питания на рост и развитие растений
- •156,36 Г MgSо42н2о содержит 32,06 г s,
- •Работа 29. Определение общей и рабочей адсорбирующей поверхности корней методом д. А. Сабинина и и. И. Колосова
- •Работа 30. Влияние концентрации раствора аммиачной селитры (нитрата аммония) на прорастание семян
- •Работа 31. Антагонизм ионов
- •Раздел 9. Рост и развитие растений
- •Работа 32. Влияние света на рост растений
- •Работа 33. Влияние температуры на рост растений
- •Работа 34. Влияние гетероауксина на рост корней
- •Работа 35. Влияние гетероауксина на укоренение черенков
- •Работа 36. Обнаружение углеводов при прорастании семян масличных культур
- •Раздел 10. Приспособление и устойчивость растений
- •Работа 37. Влияние температуры на прорастание семян
- •Работа 38. Защитное действие сахара на протоплазму при замораживании
- •Работа 39. Определение солеустойчивости растений
- •Раздел 11. Физиология и биохимия формирования качества урожая сельскохозяйственных культур
- •Работа 40. Определение белка в семенах по биуретовой реакции
- •Работа 41. Определение содержания клейковины в зерне
- •Работа 42. Определение индекса деформации клейковины
- •Работа 43. Колориметрический метод определения сахаров
- •Работа 44. Определение содержания крахмала поляриметрическим методом
- •Работа 45. Определение содержания масла в семенах при помощи рефрактометра (по а.И. Ермакову)
- •Работа 46. Быстрый рефрактометрический метод определения йодного числа жиров
- •Работа 47. Определение общей кислотности растительных тканей
- •Работа 48. Обнаружение алкалоидов в растениях
- •Работа 49. Обнаружение дубильных веществ в растениях
- •Работа 50. Определение аскорбиновой кислоты (витамина с)
- •Работа 51. Количественное определение каротина
- •Список литературы
- •Раздел 1. Физиология и биохимия растительной клетки 4
- •Раздел 2. Водный обмен растений 22
- •Раздел 3. Фотосинтез 45
- •Виктор Потапович Моисеев, Николай Петрович Решецкий
- •213407 Г. Горки Могилевской обл., ул. Мичурина, 5
Работа 8. Влияние кислотности среды на активность каталазы
Важным свойством ферментов является их лабильность – зависимость активности от условий среды: концентрации фермента и субстрата, температуры, активаторов и ингибиторов, кислотности среды.
Влияние кислотности среды на активность ферментов объясняется непосредственным действием концентрации водородных ионов на свойства каталитического центра, которые определяют образование фермент-субстратного комплекса, на степень ионизации субстрата и ферментативного белка.
Каждый фермент проявляет наибольшую активность только в определенном, характерном для него интервале рН. При отклонении кислотности среды в любую сторону от оптимальной активность ферментов снижается. Для большинства растительных ферментов оптимальной является нейтральная или слабокислая среда.
Цель работы. Определить активность каталазы при разной кислотности среды: естественной для исследуемого материала, слабощелочной, кислой.
Ход работы. Берут 3 навески проросших семян по 1 г. При первом анализе навеску растирают в ступке, ничего к ней не добавляя, кроме воды (слабокислая реакция среды). Во втором анализе при растирании семян в ступку добавляют 0,5 г СаСО3 (слабощелочная среда). При третьем анализе к семенам добавляют 1…2 капли 10 %-ного раствора H2SО4 (кислая среда). Далее работу выполняют так же, как в работе 7.
Полученные результаты записывают в табл. 8 и делают выводы о влиянии кислотности среды на активность каталазы.
Т а б л и ц а 8. Влияние кислотности среды на активность каталазы
Кислотность среды (рН) |
Выделилось мл О2 за |
Активность каталазы | |||
1 мин |
2 мин |
3 мин |
мл О2/г·мин |
высокая, низкая | |
|
|
|
|
|
|
Вопросы:
Какие факторы влияют на активность ферментов?
Как и почему кислотность среды влияет на активность ферментов?
Укажите оптимум рН каталазы, уреазы, амилазы, аргиназы, пепсина.
Материалы и оборудование: проросшие семена злаков, 3 %-ный раствор пероксида водорода, CaCO3, приборы для определения активности каталазы, ступки с пестиками, весы, стеклянные палочки, часы, мерные цилиндры.
Работа 9. Влияние температуры на скорость гидролиза крахмала амилазами
Ферментативные реакции очень чувствительны к температуре. При повышении температуры от минимальной до оптимальной скорость реакций возрастает, при дальнейшем повышении температуры – она снижается. Это объясняется тем, что ферменты являются белками.
Влияние температуры на скорость ферментативных реакций и активность ферментов можно изучить на примере амилаз (класс гидролазы, подкласс гидролазы гликозильных соединений), гидролизующих крахмал в прорастающих семенах злаков.
Крахмал – неоднородное вещество, состоящее из двух компонентов (амилозы и амилопектина). Амилоза – линейный спиралевидный полимер, у которого остатки α,D-глюкопиранозы соединены гликозидными α(1-4)-связями. Амилоза йодом окрашивается в синий цвет, в горячей воде хорошо растворяется, не образуя клейстера. Амилопектин имеет разветвленное строение, в точках ветвления остатки α,D-глюкопиранозы соединены гликозидными α(1-6)-связями. В горячей воде амилопектин набухает с образованием крахмального клейстера, йодом окрашивается в фиолетовый цвет.
К амилазам относят несколько ферментов, различающихся по характеру действия. Фермент α-амилаза расщепляет гликозильные α(1-4)-связи внутри молекулы крахмала (эндоамилаза) без определенной закономерности, при этом образуются декстрины, состоящие из нескольких десятков или сотней глюкозных остатков, и незначительное количество мальтозы и глюкозы. Фермент β-амилаза расщепляет вторую от конца молекулы крахмала гликозильную α(1-4)-связь, при этом образуется дисахарид мальтоза. Фермент глюкоамилаза расщепляет последнюю от конца молекулы крахмала гликозильную α(1-4)-связь (экзоамилаза) с образованием глюкозы. Фермент амилопектин-1,6-глюкозидаза расщепляет гликозильные α(1-6)-связи амилопектина с образованием декстринов.
Таким образом, под действием ферментов гидролиз крахмала идет по схеме:
крахмаламилопектин-1,6-глюкозидаза декстрины -амилаза мальтоза глюкоамилаза глюкоза
α-амилаза мальтаза
Крахмал окрашивается раствором йода в иодиде калия в синий и фиалетовый цвета, декстрины – в розовый, мальтоза и глюкоза йодом не окрашиваются. Таким образом, по йодной реакции можно определить окончание гидролиза крахмала, протекающего при участии ферментов.
Цель работы. Определить активность амилаз в проросших семенах злаков при различных температурах.
Ход работы. Приготовление ферментативной вытяжки. Взвешивают 5 г проросших семян, помещают их в ступку и растирают пестиком в течение 2…3 мин. Затем в ступку приливают 10…15 мл воды и семена продолжают растирать до однородного состояния. Полученную массу фильтруют через вату, жидкость переносят в центрифужные пробирки и центрифугируют в течение 3…4 мин при 3000 об/мин. Надосадочную жидкость аккуратно, не взбалтывая, сливают в чистую сухую пробирку и используют для опыта.
Приготовление индикаторных растворов на крахмал. В 10 пробирок наливают по 10 мл воды и добавляют по 3 капли раствора йода в растворе йодида калия.
Определение скорости гидролиза крахмала. В одну чистую сухую пробирку наливают 10 мл 2 %-ного раствора крахмального клейстера, в другую – 1 мл вытяжки амилазы. Обе пробирки помещают в водяную баню заданной температуры (температуру поддерживают в течение всего опыта путем приливания горячей воды). Через 10 мин крахмальный клейстер быстро переливают в пробирку с вытяжкой, содержимое перемешивают и опять помещают в эту же водяную баню, отмечая время начала гидролиза. Затем берут первую пробу на крахмал – 3…4 капли смеси крахмала с амилазой вносят в пробирку с индикаторным раствором. Все это нужно сделать быстро, так как сразу после внесения крахмального клейстера в вытяжку начинается ее гидролиз, особенно интенсивно идущий при оптимальных температурах. Последующие пробы на крахмал ориентировочно берут при 10 С – через 5 мин, при 20 С – 3 мин, при 30 С – 2 мин, при 40…70 С – 1 мин.
Гидролиз крахмала идет постепенно. По мере гидролиза изменяется окраска индикаторных растворов при добавлении в них смеси крахмального клейстера с вытяжкой. В первой пробе, куда добавлен еще негидролизованный крахмал, будет синяя окраска. При последующих пробах промежуточные продукты гидролиза крахмала – декстрины будут давать окрашивание от сине-фиолетового до розового. Конечные продукты гидролиза – мальтоза и глюкоза не дают реакции на йод (окраска остается слабо желтой). После этого отмечают время окончания гидролиза крахмала и рассчитывают активность амилаз по формуле:
Х = ,
где Х – активность амилаз, выраженная количеством мл крахмала, гидролизованного 1 мл вытяжки амилазы за 1 час;
10 – количество мл крахмала, гидролизованного 1 мл вытяжки амилазы при определенной температуре;
60 – коэффициент перевода минут в часы;
Т – время гидролиза 10 мл крахмала при заданной температуре, мин.
Полученные результаты записывают в табл. 9.
Т а б л и ц а 9. Время гидролиза крахмала и активность амилаз при различных температурах
Температура, С |
Время гидролиза крахмала, мин |
Активность амилазы (мл крахмала/1 мл амилазы·час) |
10 |
|
|
20 и т.д. |
|
|
На основании полученных результатов строят график зависимости активности амилаз от температуры и делают выводы.
Вопросы:
Из каких компонентов состоит крахмал, особенности их строения и свойства?
Какие ферменты гидролизуют крахмал в растениях (класс, подкласс, характер действия, продукты реакции)?
На чем основан метод определения активности амилаз?
Как и почему температура влияет на активность ферментов?
Материалы и оборудование: проросшие семена пшеницы, ячменя или другие, 2 %-ный раствор крахмального клейстера, 0,3 %-ный раствор йода в 3 %-ном растворе йодида калия, штативы с пробирками, воронки, вата, центрифуга, фарфоровые стаканы на 0,5…1 л, пипетки мерные на 10 мл, пипетки глазные, весы, ступки с пестиками, термометры, часы.