Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Скачиваний:
7
Добавлен:
03.02.2024
Размер:
4.32 Mб
Скачать

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования

«Ростовский государственный медицинский университет»

Министерства здравоохранения Российской Федерации

Молодежное научное общество

77 ИНК

Ростов-на-Дону

2023

УДК: ББК:

C -

77-я Итоговая научная конференция / Сборник материалов / ФГБОУ ВО РостГМУ Минздрава России – Ростов н/Д: изд-во РостГМУ, 2023. – с. 352

 

Организационный комитет конференции:

Председатель

 

Шлык С.В.

Ректор, заведующий кафедрой терапии, д.м.н., профессор

Сопредседатели оргкомитета:

Котиева И.М.

Проректор по научной работе, д.м.н., профессор, руководитель МНО

Березина З.И.

Проректор по последипломному образованию, заведующая кафедрой

 

клинической психологии, д.п.н., доцент

Гафиятуллина Г.Ш.

Проректор по обучению иностранных граждан и международному

 

сотрудничеству, заведующая кафедрой нормальной физиологии,

 

д.м.н., профессор

Дроботя Н.В.

Проректор по учебной работе, заведующая кафедрой кардиологии,

 

ревматологии и функциональной диагностики, д.м.н., профессор

Лебеденко А.А.

Проректор по акушерству и педиатрии, заведующий кафедрой

 

детских болезней №2, д.м.н., профессор

Чаплыгина Е.В.

Проректор по социальным вопросам и воспитательной работе,

 

заведующая кафедрой нормальной анатомии, д.м.н., профессор

Ответственный секретарь:

Тодоров С.С.

Заместитель председателя совета МНО

Члены оргкомитета:

 

Котиева И.М.

Проректор по научной работе, д.м.н., профессор, руководитель МНО

Гулян М.В.

Начальник управления научной политики и организации научных

 

исследований, к.м.н., доцент

Волкова Д.В.

Член совета МНО

Дергоусова Т.Г.

Декан фармацевтического факультета, к.фарм.н., доцент

Квасов А.Р.

Декан медико-профилактического факультета, заведующий кафедрой

 

гигиены, д.м.н., профессор

Кещян М.А.

Секретарь совета МНО

Максюков С.Ю.

Декан стоматологического факультета, заведующий кафедрой

 

стоматологии №2, д.м.н., профессор

Момотова Е.И.

Член совета МНО

Орчинская А.В

Член совета МНО

Сапронова Н.Г.

Ученый секретарь учёного совета, заведующая кафедрой

 

хирургических болезней №1, д.м.н., доцент

Сафроненко А.В.

Декан лечебно-профилактического факультета, заведующий

 

кафедрой фармакологии и клинической фармакологии, д.м.н.,

 

профессор

Солдаткина С.В.

Член совета МНО

Стагниева И.В.

Декан педиатрического факультета, заведующая кафедрой

 

оториноларингологии, д.м.н., профессор

Сидоренко Ю.А

Начальник отдела профессиональной ориентации и обучения

 

пациентов, к.м.н., доцент

Селезнева Ю.В.

Председатель совета МНО

Тодоров С.С.

Заместитель председателя совета МНО

Уразмамбетов Р.Т.

Начальник военного учебного центра, полковник медицинской

 

службы

Фурсова В.И.

Член совета МНО

СЕКЦИЯ «ТРУДНЫЙ ПАЦИЕНТ» СЕКЦИЯ «ВНУТРЕННИЕ БОЛЕЗНИ»

СЕКЦИЯ «БОЛЕЗНИ МОЧЕПОЛОВОЙ СИСТЕМЫ» СЕКЦИЯ «ФАРМАЦИЯ» СЕКЦИЯ «ПЕДИАТРИЯ»

СЕКЦИЯ «ХИРУРГИЯ.ТРАВМАТОЛОГИЯ» СЕКЦИЯ «МЕДИКО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКОЕ ДЕЛО И СОЦИАЛЬНАЯ МЕДИЦИНА» СЕКЦИЯ «ИСТОРИЯ»

СЕКЦИЯ «СТОМАТОЛОГИЯ» СЕКЦИЯ «ПЕДАГОГИКА И ПСИХОЛОГИЯ»

СЕКЦИЯ «ПСИХИАТРИЯ. НЕВРОЛОГИЯ» СЕКЦИЯ «ЗДОРОВЫЙ ОБРАЗ ЖИЗНИ» СЕКЦИЯ «МЕДИЦИНСКОЕ ПРАВО» СЕКЦИЯ «ОНКОЛОГИЯ»

СЕКЦИЯ «ФУНДАМЕНТАЛЬНАЯ МЕДИЦИНА» СЕКЦИЯ «ДОВУЗОВСКОЕ ОБРАЗОВАНИЕ: НАУЧНЫЙ ВЗГЛЯД СО ШКОЛЬНОЙ СКАМЬИ»

СЕКЦИЯ «ТРУДНЫЙ ПАЦИЕНТ» КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ РАЗВИТИЯ РЕАКЦИИ «ТРАНСПЛАНТАТ ПРОТИВ ХОЗЯИНА» У РЕЦИПИЕНТА ПЕЧЕНИ Автор: Давыденко Я.А.

Научные руководители: Пак Е.С., Коробка В.Л., Коробка Р.В.

Ключевые слова: трансплантация печени, реакция «трансплантат против хозяина».

Введение: Трансплантация печени (ТП) – единственный надежный способ спасти больных с терминальной стадией заболеваний печени и повысить их выживаемость [1]. По данным Европейского регистра трансплантаций печени, после проведения ТП одногодичная выживаемость достигает 90%, пятилетняя – 80% [2]. Несмотря на значительные технологические, медицинские и хирургические достижения, трансплантация печени остается сложной процедурой, сопровождающейся значительной заболеваемостью и смертностью [3].

Реакция «трансплантат против хозяина» (РТПХ) после ТП является редким осложнением, но имеет высокую смертность (от 67% до более 75%) и представляет серьезную диагностическую проблему, а единый протокол ведения по-прежнему отсутствует [4]. РТПХ возникает, когда иммунокомпетентные донорские лимфоциты трансплантированной печени подвергаются активации и клональной экспансии, что позволяет им вызывать деструктивный клеточный иммунный ответ против тканей реципиента. Смертность от острой РТПХ после ТП превышает 75%. В большинстве случаев смерть наступает в результате обширного сепсиса или желудочнокишечного кровотечения вследствие поражения костного мозга. Одним из основных методов диагностики является биопсия органов мишеней поражения при РТПХ: в биоптатах кожи можно обнаружить эпидермальный дермолиз, в биоптатах толстой и тонкой кишки – некрозы эпителия крипт. Однако исследование биоптата не всегда бывает информативным [5,6]. Каждый случай РТПХ характеризуется индивидуальными особенностями клинической картины, требуя индивидуального подхода к лечению. В связи с этим, представляется целесообразным проанализировать наш клинический случай.

Клинический случай: Пациентке В., 60 лет, в 2022 г. в условиях Центра хирургии и координации донорства (ЦХиКД) Ростовской областной клинической больницы была выполнена ТП от одногруппного посмертного донора по поводу цирроза печени смешанной этиологии (этанолиндуцированного + HCV) в стадии декомпенсации, MELD 27. Вводная иммуносупрессия базиликсимабом и метилпреднизолоном (МПЗ) по стандартному протоколу. Ранний послеоперационный период – без особенностей, а иммуносупрессивная терапия (ИСТ) ограничивалась такролимусом (TAC) пролонгированного действия (3,5 мг/сутки, концентрация TAC от 4,5 до 13,0 нг/мл) ввиду наличия РНК HCV и запланированного курса противовирусной терапии. На 7 сутки переведена в хирургическое отделение. Лабораторно отмечалась анемия (Hb – 92 г/л, эритроциты – 3,4х1012/л, гематокрит – 25%), лейкопения (3,0х109/л), тромбоцитопения (93,0х109/л). Показатели функциональных печеночных проб и креатинина сохранялись в пределах нормальных значений.

На 11 сутки отмечено увеличение креатинина до 343 мкмоль/л, мочевины до 45 ммоль/л. Расчетная СКФ (СKD-EPI) 12 мл/мин/1,73м2, диурез 1600 мл/сутки. Появилась тошнота, слабость, а также тремор верхних конечностей и нарастание асцита. Проведена конверсия протокола ИСТ: TAC отменен, назначен эверолимус (EVE, концентрация в крови 7,3 – 8,9 нг/мл), проводилась посиндромная терапия. На 17 сутки после ТП при плановом УЗИ сосудов трансплантата выявлено усиление линейной скорости кровотока до 360 см/с в проекции анастомоза печеночной артерии (ПА). При селективной ангиографии ПА – стенозирование зоны артериального анастомоза до 80%, в связи с чем, имплантированы 3 внутрисосудистых стента BioMime с последующим расширением баллонным катетером. При контрольной ангиографии – ПА проходима, без остаточного рестеноза. При дренировании брюшной полости получена асцитическая жидкость без примесей с отсутствием роста микрофлоры.

На 18-е сутки появилась ремиттирующая лихорадка, гипотония, неукротимая тошнота и рвота, диарея до 12 р/сутки, усилилась тромбоцитопения. Проводились сеансы вено-венозной гемодиафильтрации и плазмособция, достигнута нормализация функции почек. На 24 сутки после ТП на коже шеи, верхних и нижних конечностей пациентки появилась сыпь в виде петехиальных элементов, эритематозных пятен сливного характера до 7-8 см в диаметре. Наросла тромбоцитопения (26х109/л), развился агранулоцитоз (0,1х109/л). Сохранялось нарушение функции почек (креатинин - 174 мкмоль/л; рСКФ-27 мл/мин/1,73 м2). Активность АЛТ и АСТ незначительно повышена (до 2N).

Учитывая наличие лихорадки, сыпи, диареи, выраженной цитопении, было предположено развитие у пациентки РТПХ. Проводилась антибактериальная и противогрибковая терапия. При гистологическом исследовании кожного лоскута – явления дис-, пара- и гиперкератоза, в базальном слое эпидермиса наблюдалась выраженная вакуолизация эпителиоцитов с очаговым формированием щелей на границе с дермой, в прилежащей дерме – лимфо-макрофагальный инфильтрат с тропизмом к базальному слою эпидермиса. При иммуногистохимическом исследовании по Кунсу: в лимфоидном инфильтрате верхних слоев дермы и базального слоя эпидермиса выявлена фиксация CD3. Гистологическая картина характерна для РТПХ. При ЭГДС слизистая залуковичного отдела двенадцатиперстной кишки (ДПК) выраженно отечная, покрыта белесоватым налетом. Гистологически – фрагменты слизистой ДПК с выраженной лимфоидной инфильтрацией собственной фиброзной пластинки на границе с эпителием, на поверхности эпителия - эрозии и обширные скопления спор микроскопического гриба (Candida). Диагностирована РТПХ с поражением кожи, инвазивный кандидоз.

Объем оставленной ИСТ – EVE (1 мг/сутки). Состояние больной ухудшалось, сохранялась фебрильная лихорадка, диспептический синдром, панцитопения. Назначался филграстим, проводились трансфузии тромбоконцентрата, свежезамороженной плазмы. В бактериологическом посеве крови выявлен рост Саndida glabrata. На 25 сутки проведена «пульс-терапия» МПЗ 1000 мг в/в в течение трех дней. Несмотря на проводимое лечение, состояние больной оставалось крайне тяжелым с нарастанием полиорганной недостаточности, анемией, геморрагическим синдромом, явлениями грибкового сепсиса, психомоторным возбуждением. На 32 сутки после ТП констатирована смерть.

При аутопсии – слизистая пищевода, желудка и тонкой кишки сглажена, истончена, краснобурого окраса, с точечными и пятнистыми кровоизлияниями диаметром 0,3-0,8 см. На разрезе слои стенки толстой кишки не различимы. Согласно гистологическому исследованию – участки изъязвления слизистой пищевода, субтотальная десквамация слизистой тонкой и толстой кишки с обширными кровоизлияниями, лейкоцитарной инфильтрацией и множественными скоплениями бластоспор микроскопического гриба. Трансплантат печени отечен, полнокровен, анастомозы состоятельны. Микроскопически – множественные микроабсцессы с лейкоцитарной инфильтрацией и скоплением микотической флоры. Костный мозг резко гипоклеточный, представлен созревающими формами гранулоцитарного ростка, с резкой гипоплазией эритроидного и мегакариоцитарного ростка. Патологоанатомами был подтвержден клинический диагноз РТПХ – острая форма с поражением кожи и слизистой желудочно-кишечного тракта. Течение основного заболевания осложнилось септикопиемией, вызванной микотической микрофлорой (Candida glabrata). В почках был выявлен субтотальный некроз эпителия извитых канальцев, что, в совокупности с отеком легких и головного мозга, явилось непосредственной причиной смерти пациентки.

Выводы: Таким образом, при неэффективности консервативной терапии терминального заболевания печени, трансплантация является приоритетным выбором для спасения жизни пациента, но не всегда гарантирует благоприятный исход в виду послеоперационных осложнений. При лечении РТПХ предлагаются диаметрально противоположные подходы: усиление иммуносупрессии или ее уменьшение вплоть до полной отмены. Широкая антибиотико – и противогрибковая профилактика имеет ключевое значение, поскольку при РТПХ часто встречаются септические осложнения [7]. Благодаря раннему проведению эндоскопического исследования ЖКТ можно выявить поражение до развития клинических проявлений, и возможно, определить тяжесть и прогноз болезни. Несмотря на редкость развития РТПХ после ТП, летальность в ее исходе высока, а терапия до конца не разработана.

Список литературы:

1.Коробка В.Л., Пак Е.С., Пасечников В.Д., Кострыкин М.Ю. Рекомпенсация пациентов с терминальными заболеваниями печени – трудная, но реально достижимая цель терапии. Эффективная фармакотерапия. 2019 Т. 15 № 28 С. 18–26. doi: 10.33978/2307-3586-2019-15- 28-18-26

2.Katsounas A., Canbay A. Intensive care therapy for patients with advanced liver diseases. Visc.

Med. 2018 Vol. 34 №4 P. 283–289.

3.Wiesner R., Rakela J., Ishitani M., Mulligan D., Spivey J., Steers J., et al. Recent advances in liver transplantation. Mayo Clinic Proceedings, 78 (2003), pp. 197-210 doi: 10.4065/78.2.197

4.Chesdachai S, Udompap P, Yetmar ZA, Watt KD, Aqel BA, Yang L, Beam E. Infectious complications in acute graft- versus-host disease after liver transplantation. Transpl Infect Dis. 2022 Aug;24(4):e13843. doi: 10.1111/tid.13843. Epub 2022 Jun 1

5.Attas RAA, Bader RM, Mashhour M, AlQahtani ZA, Mohammed A, Qahtani M et al. Graft-versus- host disease after pediatric liver transplantation: A diagnostic challenge. Pediatric Transplant. 2022 May;26(3):e14205. doi: 10.1111/ petr.14205.

6.Kitajima T, Henry M, Ivanics T, Yeddula S, Collins K, Rizzari M et al. Incidence and Risk Factors for Fatal Graft- versus-host Disease After Liver Transplantation. Transplantation. 2021 Dec 1;105(12):2571-2578. doi: 10.1097/ TP.0000000000003607.

7.Cooper JP, Perkins JD, Warner PR, Shingina A, Biggins SW, Abkowitz JL, Reyes JD. Acute Graft- Versus-Host Disease After Orthotopic Liver Transplantation: Predicting This Rare Complication Using Machine Learning. Liver Transpl. 2022 Mar;28(3):407-421. doi: 10.1002/lt.26318

СЛУЧАЙ СОЧЕТАНИЯ САРКОИДОЗА С ПЯТНИСТЫМ АМИЛОИДОЗОМ НА КОЖЕ С СИСТЕМНЫМИ ПРОЯВЛЕНИЯМИ Авторы: Щепетнова М.А., Петухова Д.М.

Научные руководители: Сидоренко Е.Е., Сидоренко О.А., Анисимова Л.А.

Ключевые слова: саркоидоз, дифференциальная диагностика, гистология.

Введение: Саркоидоз – это системное воспалительное заболевание неизвестной этиологии, характеризующееся образованием эпителиоидно-неказеифицирующихся гранулём, мультисистемным поражением различных органов и активацией Т-клеток в месте гранулёматозного воспаления с высвобождением различных хемокинов и цитокинов, включая фактор некроза опухоли (TNF-α). [1] Несмотря на то, что открытие саркоидоза датируется 1877 годом, до сих пор нет общепринятой единой концепции этиологии данного заболевания. Основными теориями манифестации саркоидоза признаны генетическая и иммунная. Согласно первой: выделены геныкандидаты восприимчивости к болезни и связь с наличием аллелей HLA (-DRB1, -DPB2 и -DQA2) с клиническими проявлениями саркоидоза. Описаны триггер-факторы, которые могут спровоцировать саркоидоз у генетически детерминированного организма: Chlamydophila pneumoniae, Borrelia burgdorferi, Propionibacterium acnes, микобактерии, вирусы гепатита С и герпеса. Согласно второй концепции, в основе патогенеза лежит реакция гиперчувствительности замедленного типа. Существует дефект иммунного ответа в виде изменения соотношения Т- супрессоров и Т-хелперов, что характерно для аутоиммунных процессов и приводит к неполной элиминации неизвестного агента. Циркуляция в организме антигена приводит к превращению макрофагов в эпителиоидные клетки, секретирующие TNF-α. Активация провоспалительных цитокинов способствует повышению активации фибробластов, которые ограничивают зону воспаления и завершают образование саркоидной гранулемы. [2] Поражение легких встречается у 90% пациентов с симметричной двусторонней внутригрудной лимфаденопатией и/или диффузными микроузелками в легких, в основном вдоль лимфатических структур, которые являются наиболее вовлекаемой системой. Среди внелегочных проявлений наиболее часты поражение кожи, увеит, поражение печени или селезенки, периферическая и абдоминальная лимфаденопатия и периферический артрит с распространенностью 25-50%. Наконец, кардиальные и неврологические проявления, которые могут быть начальными проявлениями саркоидоза, такие как двусторонний паротит, носо-синусные или ларингеальные симптомы, гиперкальциемия и почечная дисфункция, встречаются менее чем у 10% пациентов. Клинически саркоидоз кожи проявляется папулами, гладкими или шелушащимися бляшками, их количество разнообразно, красновато-фиолетового или бледно-розового цвета, полушаровидные, плотные, с четкими границами, склонны к слиянию. Далее высыпания регрессируют, приобретая желто-коричневую окраску, на месте бывших элементов остается атрофический рубчик. Высыпания могут локализоваться на любых участках кожи, но наиболее часто поражается кожа лица, шеи и верхней части туловища. Ведущую роль в правильной постановке диагноза саркоидоза кожи отводят междисциплинарному подходу, а также морфологическому методу исследования гистологического биоптата. Все пациенты с подозрением на саркоидоз кожи должны быть комплексно обследованы на полиорганный, системный процесс в специализированных учреждениях здравоохранения. Пациенты с установленным диагнозом саркоидоза должны находиться на диспансерном учете и динамическом наблюдении у специалистов. Только характерные высыпания на коже, хоть и встречаются реже (до 25 % случаев), служат первым признаком саркоидоза и указывают на необходимость расширенного диагностического поиска. [3]

Клинический случай: Нами описывается клинический случай саркоидоза в сочетании с пятнистым амилоидозом с сопутствующим поражением легких. Пациентка N. 57 лет. Считает себя больной около 2-х лет, когда впервые отметила появление высыпаний в виде очагов гиперпигментации на коже правой лопаточной области. Субъективных ощущений и жалоб на ухудшение общего состояния пациентка не отмечала, высыпания доставляли дискомфорт только лишь как косметический дефект. Самостоятельно не лечилась, к дерматологам не обращалась. С течением времени в центре очагов появились папулы красновато-оранжевого цвета, которые постепенно увеличивались в размерах, присоединился зуд, что побудило пациентку обратиться на консультацию к дерматологу. В ходе осмотра были выставлены предварительные диагнозы: ограниченный нейродермит, меланодермия, очаговая склеродермия, и было принято решение о проведении гистологического исследования кожи методом панч-биопсии. По результатам гистологического исследования патоморфологическая картина характеризовалась наличием периваскулярных гистиолимфоцитарных инфильтратов, эпителиоидноклеточных гранулем в верхних отделах дермы с гигантскими клетками типа Пирогова-Лангханса, при окраске Конго красным – отложения амилоида в сосочковом слое дермы, что позволило установить диагноз: саркоидоз в сочетании с пятнистым амилоидозом. Для исключения системности процесса пациентке было назначено дообследование. Выполнено КТ органов грудной клетки, по заключению которой выявлена КТ-картина лимфопролиферативного заболевания с поражением лимфатических узлов средостения и корней легких (больше правого), начальные интерстициальные проявления (утолщения перибронхиального интерстиция, междолевой плевры и наличие очагов по междолевой плевре). Дифференциальный ряд (саркоидоз/лимфома/другие заболевания). После пациентка была проконсультирована пульмонологом, который поставил диагноз саркоидоз легких и внутригрудных лимфоузлов II степени. По данным проведенного ультразвукового исследования (УЗИ) органов брюшной полости получено заключение: эхографические признаки кист печени, умеренных диффузных изменений печени и поджелудочной железы, небольшого количества мелкодисперсной взвеси в просвете желчного пузыря, умеренных структурных изменений стенок желчного пузыря, перегибов желчного пузыря, метеоризма, лимфоузлы не увеличены. В общем анализе крови отклонений от нормы не обнаружено, в биохимическом анализе наблюдались повышение уровня гамма-глютамилтранспептидазы (ГГТП) – 64 Ед/л (норма – 0-50 Ед/л), аланиламинотрансферазы (АЛТ) – 126,6 Ед/л (норма – 0-34 Ед/л), аспартатаминотрансферазы (АСТ) – 96,6 Ед/л (норма – 0-31 Ед/л), в связи с чем пациентке было рекомендовано обратиться к гастроэнтерологу. Также по результатам анализов обнаружена дислипидемия тип IIа (холестерин – 6 ммоль/л, холестерин высокой плотности – 0,9 ммоль/л, холестерин низкой плотности – 4,45 ммоль/л, индекс атерогенности – 5,67), маркеры воспаления отрицательные. В качестве базовой терапии пульмонологом был выбран препарат триамцинолон 4 мг 4 таблетки в сутки в течение 3 недель, затем постепенно дозировка была уменьшена до 1 таблетки в день. Параллельно назначен пентоксифиллин 600 мг 2 раза в день, витамин Е 200 мг 2 раза в день. Дерматологом проведено обкалывание очагов суспензией в разведении препарата бетаметазона динатрия фосфат+бетаметазон, назначены топические ингибиторы кальциневрина, топическое средство с клобетазолом. На фоне проводимой терапии отмечена положительная динамика и частичный регресс высыпаний. Пациентке было рекомендовано продолжение лечения и наблюдение у дерматолога и пульмонолога.

Выводы:

1.Данный клинический случай демонстрирует значимость проведения дифференциальной диагностики элементов кожной сыпи в контексте выявления системных воспалительных заболеваний.

2.Можно сделать акцент на использовании гистологического исследования в своевременной верификации системного диагноза на основании кожных проявлений, что в дальнейшем позволит обозначить спектр дообследований и выбор правильной тактики терапии.

Список литературы:

1.Sève P, Pacheco Y, Durupt F, Jamilloux Y, Gerfaud-Valentin M, Isaac S, Boussel L, Calender A, Androdias G, Valeyre D, El Jammal T. Sarcoidosis: A Clinical Overview from Symptoms to Diagnosis. Cells. 2021 Mar 31;10(4):766. doi: 10.3390/cells10040766. PMID: 33807303; PMCID: PMC8066110.

2.Llanos O, Hamzeh N. Sarcoidosis. Med Clin North Am. 2019 May;103(3):527-534. doi: 10.1016/j.mcna.2018.12.011. Epub 2019 Feb 21. PMID: 30955519.

3.Cooper D, Suau S. Sarcoidosis. Emerg Med Clin North Am. 2022 Feb;40(1):149-157. doi: 10.1016/j.emc.2021.08.012. Epub 2021 Oct 29. PMID: 34782085.

ОСЛОЖНЕНИЕ В ЛЕЧЕНИИ ДИАЛИЗНОГО ПЕРИТОНИТА: СЛУЧАЙ РАЗВИТИЯ ОТОТОКСИЧНОСТИ, АССОЦИИРОВАННОЙ С ПРИМЕНЕНИЕМ ГЕНТАМИЦИНА

Авторы: Батюшина А.М., Колесникова Н.А.

Научный руководитель: Куделина О.М., Ганцгорн Е.В., Батюшин М.М.

Ключевые слова: ототоксичность, диализный перитонит, гентамицин, нейросенсорная тугоухость.

Введение. Перитонеальный диализ (ПД), является одним из методов заместительной почечной терапии, широко применяемых в мировой практике [1]. Осложнениями применения ПД являются инфекционные реакции в области мягких тканей, окружающих перитонеальный катетер и диализный перитонит (ДП) [2, 3]. Диагноз ставится на основании клинических симптомов и результатов обследования. Проводится бактериологическое исследование перитонеальной жидкости и изменений лейкоцитарной формулы в общем анализе крови (ОАК). Лечение данного осложнения включает в себя назначение антибактериальных лекарственных средств (ЛС), к которым наиболее чувствительна микрофлора отделяемого из раны и перитонеальной жидкости [4].

Применение антибактериальных средств, назначенных с целью лечения ДП, может вызвать осложнение, в виде ототоксичности. Данный побочный эффект, встречается довольно редко, однако, необходимо помнить о том, что некоторые группы ЛС, в частности, группа аминогликозидных антибиотиков, могут быть причиной возникновения у пациентов необратимой нейросенсорной тугоухости [5].

Целью описания данного клинического случая, являются вопросы диагностики и ведения пациента с развитием редкого осложнения в клинической практике, а также анализ возможных точек развития ятрогенных осложнений с подходами к их объяснению и дальнейшей профилактике.

Клинический случай. Больной П., 34 лет, на протяжении 8 лет страдал хроническим гломерулонефритом, который привел к развитию терминальной стадии хронической болезни почек (ХБП). В 2019 году возникла необходимость в проведении заместительной почечной терапии, в связи с чем пациенту был вшит в брюшную полость перитонеальный катетер. Больной получал три процедуры, ежедневно.

Спустя полгода, пациент отметил покраснение кожных покровов в месте выхода катетера и явные признаки инфекционного процесса и самостоятельно осуществлял обработку водным раствором йода. Однако, спустя трое суток у него повысилась температура тела до 38-39°С, присоединилась выраженная общая слабость и умеренные боли ноющего характера в области живота, без четкой локализации. Пациент обратился в нефрологическое отделение клиники РостГМУ, где ему было выполнено клиническое обследование с целью постановки диагноза.

В ОАК отмечалось увеличение количества лейкоцитов до 16*109 (норма - 4-9 х109), нейтрофилез со сдвигом формулы влево (палочкоядерные - 7), повышение СОЭ до 54 мм/час (норма - 2-16 мм/час). Биохимическое исследование крови показало, повышение С-реактивного белка - 12 пг/мл (норма до 4 пг/мл), креатинина до 780 мкмоль/л (норма - 44-100 мкмоль/л), мочевой кислоты - 450 мкмоль/л (норма 202-416 мкмоль/л), и значительное снижение скорости клубочковой фильтрации - 4 мл/мин при норме 100-130 мл/мин. Патологического роста микрофлоры в посеве крови на стерильность и чувствительности к антибиотикам не отмечалось. При исследовании посева отделяемого из раны (место выхода катетера), обнаружен S. aureus, чувствительный к гентамицину, амикацину. Перитонеальная жидкость при исследовании была мутная, опалесцирующая с хлопьями желтоватого цвета, обнаружен цитоз за счет нейтрофилов и макрофагов, и также обнаружен S. aureus, чувствительный к гентамицину и амикацину. Пациенту был поставлен предварительный диагноз - перитонит, обусловленный S. aureus.

Дифференциальная диагностика проводилась с перитонитом, обусловленным прободением полого органа. Однако при обследовании, у пациента не отмечалось выраженного болевого синдрома. На рентгенографии органов брюшной полости не было признаков газообразования, гнойного воспаления аппендицита, желчного пузыря и поджелудочной железы, а также отсутствовали локальные признаки раздражения брюшины.

Учитывая клинические рекомендации по ведению перитонита у больных на ПД, пациент был переведен на заместительную почечную терапию путем гемодиализа, через перманентный сосудистый двухходовой катетер, установленный в правую яремную вену. Пациенту назначена

общая дезинтоксикационная терапия (обильное питье, инфузии физиологического раствора до 400 мл/сутки), антибактериальная терапия с применением гентамицина.

Суточная доза гентамицина для в/в и в/м введения при заболеваниях средней тяжести одинакова для взрослых с нормальной функцией почек - 3 мг/кг/сутки. Однако, при почечной недостаточности, согласно клиническим рекомендациям, препарат назначают 1 раз в сутки в дозе 120-160 мг в течение

7-10 дней [6].

В данном случае, пациенту вводили 160 мг 1 р/день, в/м, в течение 10 дней. Местно - кожа вокруг катетера обрабатывалась растворами антисептиков: бетадином, перекисью водорода и гентамициновой мазью 0,1%. Катетер был сохранен и через него осуществляли лаважи брюшинной полости физиологическим раствором, а также растворами антисептиков. Спустя двое суток у пациента нормализовалась температура тела. На 10-е сутки количество лейкоцитов в ОАК снизилось до 8*109/л; полностью нормализовался клеточный состав перитонеальной жидкости, она стала прозрачной, а также при ее посеве роста микроорганизмов не обнаружено; вокруг перитонеального катетера признаков воспаления не выявлено.

Однако, на 10-е сутки, пациент стал отмечать некоторое снижение слуха с двух сторон, о чем проинформировал лечащего врача. При проведении аудиограммы были обнаружены признаки умеренного повышения порога восприятия звука на всех тонах с двух сторон. ЛОР-врач зафиксировал признаки нейросенсорной тугоухости с обеих сторон. Проводилась дифференциальная диагностика с острым отитом внутреннего уха, признаков которого обнаружено не было.

Причиной возникновения у пациента нейросенсорной тугоухости стало применение антибиотика из группы аминогликозидов – гентамицина. Назначение данного ЛС было обусловлено тем, что микрофлора, вызвавшая ДП, имела чувствительность исключительно к антибиотикам данного ряда. В соответствии с международными рекомендациями по ведению пациентов с ДП, аминогликозиды являются препаратами первого ряда, несмотря на возможные побочные реакции. В данном случае, речь шла о спасении жизни пациента, а развитие необратимой нейросенсорной тугоухости является потенциально возможным побочным эффектом (ототоксическое действие).

Выводы. Причиной развития ДП было позднее обращение больного и самолечение по поводу инфицирования околокатетерных тканей (инфицирование места выхода, гнойные выделения, покраснение кожи в месте соприкосновения с катетером, отек, болезненность над местом подкожного канала катетера), что определяет необходимость регулярных осмотров врачомнефрологом пациентов с данной патологией.

Использование антибиотиков из группы аминогликозидов, может стать причиной развития нейросенсорной тугоухости (ототоксическое действие). Однако, в описанном клиническом случае, применение гентамицина, было обосновано наличием устойчивой микрофлоры (S. aureus) как в отделяемом из мягких тканей, так и при посеве перитонеальной жидкости.

Таким образом, следует помнить, что применение ЛС, которые могут впоследствии привести к развитию ототоксичности, следует применять с осторожностью, соблюдая правила индивидуального дозирования ЛС, кратность их введения и строго контролировать длительность фармакотерапии не только на основании клинических рекомендаций, но и учитывать тяжесть течения заболевания пациента. Помимо этого, проводить аудиометрию каждые 2-3 дня, на протяжении всего курса лечения аминогликозидами с целью выявления ранних признаков снижения слуха и минимизации развития лекарственно-индуцированной ототоксичности.

Список литературы:

1.Kiebalo T., Holotka J., Habura I., Pawlaczyk K. Nutritional Status in Peritoneal Dialysis: Nutritional Guidelines, Adequacy and the Management of Malnutrition // Nutrients. - 2020;12(6):1715.

2.Szeto C.C., Li P.K. Peritoneal Dialysis-Associated Peritonitis // Clin. J. Am. Soc. Nephrol. - 2019;14(7):1100-1105.

3.Oza-Gajera B.P., Abdel-Aal A.K., Almehmi A. Complications of Percutaneous Peritoneal Dialysis Catheter // Semin. Intervent. Radiol. - 2022;39(1):40-46.

4.Philip Kam-Tao Li, Kai Ming Chow, Yeoungjee Cho, Stanley Fan, Ana E Figueiredo [et al.] // ISPD. - 2022.4.64-99.

5.Watts K.L. Ototoxicity: Visualized in Concept Maps // Semin. Hear. - 2019;40(2):177-187.

6.Li P.K., Chow K.M., Cho Y. et al. ISPD peritonitis guideline recommendations: 2022 update on prevention and treatment // Perit. Dial. Int. - 2022;42(2):110-153.