Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Санитарная микробиология. Учебное пособие

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
07.09.2026
Размер:
2 Мб
Скачать
Ультрафиолетовое излучение может использоваться в виде
«ультрафиолетовых завес», которые устанавливаются над дверьми
тамбура у входа в помещение. Они предупреждают возможность переноса возбудителей из одного помещения в другое. Ультрафио­летовые завесы используются широко в медицинских учреждени­ях, на предприятиях биологической промышленности.
ВНИИВС и Гипрониисельхоз разработали установку для обез-
зараживания воздуха непосредственно
в вентиляционных каналах с помощью ультрафиолетовых лучей. Обеззараживанию может под­вергаться воздух, который подается или удаляется из помещения.
Воздух, поступающий в помещение по вентиляционному кана­лу, предварительно освобождается от взвешенных частиц крупных размеров, проходя через тканевые фильтры, подогревается, а за­тем обрабатывается ультрафиолетовыми лучами. Бактерицидные лампы вмонтированы внутри в диффузоре, который представляет собой трубу цилиндрической или прямоугольной формы из листо­вого железа. Внутренняя поверхность диффузора должна хорошо отражать бактерицидные лучи.
Между рабочей камерой и блоком бактерицидных ламп можно устанавливать термопреобразователи (например, кварцевые лампы накаливания с йодным циклом). Это делается с целью размягчения капсул споровых бактерий внутри воздуховода (А. с. 323933 СССР, МКИ КЛ. А 61 9/00. Ярных В. С.).
В животноводстве и ветеринарии ультрафиолетовое излучение применяют для обеззараживания воздуха в лечебницах и изолято­рах, помещениях мясомолочных и пищевых контрольных станций, цехов биологической промышленности.
Для очистки и обеззараживания воздуха в помещениях различ­ных производств используется озон. Он обладает высоким бактери­цидным действием на различные виды микроорганизмов и является высокоэффективным среди известных в настоящее время дезинфи­цирующих средств. В концентрации 0,001 мг/л он оказывает сильное действие на бактериальные частицы капельной фазы. Микроорганиз­мы на пылевых частицах подвергаются губительному действию озона в концентрации 0,005 мг/л.
Работы по применению озона для обеззараживания воздуха были проведены во ВНИТИП. Было установлено, что озон наи­более эффективен после механической очистки обеззараживаемых объектов. Практически все виды микроорганизмов, имеющих рас-
131
пространение в птицеводческих хозяйствах, полностью обезза­раживаются озоном при дозах более 1 мг/л-ч. Спорообразующие микроорганизмы погибают при дозах 2 мг/л-ч.
Получают озон на месте потребления, при этом использу­ют озонаторные установки различных типов – РГО-1, Озон-1, Озон-2 м и др.
С использованием озона разработана (И. П. Кривопишиным, Б. В. Емельяновым
и Б. А. Трегубовым, 1976–1977) и предложена производству система обеззараживания и обезвреживания воздуха в зациклованной вентиляции птичников.
В основе технологии обезвреживания заложена последова­тельная обработка загрязненного воздуха озоном сначала в вод­ном 10–20 %-ном растворе сульфата и нитрата аммония, а затем в 3–5 %-ном растворе карбоната и гидроокиси натрия с последую­щей дегазацией остаточного озона на твердом катализаторе.
Способ очистки воздуха птичников от производственных за­грязнений с использованием озона прошел апробацию и рекомен­дован производству.
Уничтожение патогенных микроорганизмов в животноводче­ских помещениях с применением химических средств осущест­вляется двумя методами, влажным и аэрозольным. При влажной дезинфекции, основанной на обильном орошении (увлажнении) инфицированных поверхностей дезинфицирующими веществами, не достигается полного уничтожения микроорганизмов, содержа­щихся в воздухе. При этом расходуется большое количество дезин­фицирующих веществ, так как в отдельных случаях необходима 2–3-кратная обработка поверхности.
При аэрозольной дезинфекции, когда дезинфектант распыляет­ся в виде аэрозолей, достигается полное уничтожение микроорга­низмов, содержащихся в воздухе. Возможность обеззараживания помещения аэрозольным методом открывает большие перспек­тивы дезинфекционных работ. При меньших расходах препарата аэрозольный метод позволяет сочетать обеззараживание воздуха и объектов животноводческого помещения. В этом состоит его преи­мущество перед влажным способом.
Механизм действия бактерицидных аэрозолей основан на испа­рении частиц и конденсации паров на поверхностях, содержащих микроорганизмы, а также оседании неиспарившихся частиц на по­верхностях и образовании бактерицидной пленки.
132
Эффективность обеззараживания воздуха аэрозолями дезинфи­цирующих веществ зависит от температуры и влажности воздуха, герметичности помещения и дисперсности аэрозоля. Температура воздуха должна быть в пределах 15–17 °С, а влажность 60–70 %. Герметичность помещения имеет особое значение. Если помеще­ние недостаточно герметизировано, то аэрозоль дезинфицирую­щих веществ быстро «выдувается» и обеззараживания воздуха не происходит. Дисперсность аэрозоля
(величина частиц) должна
быть в пределах 20–30 мкм.
Для проведения аэрозольной дезинфекции на фермах промыш­ленного типа и комплексах используются формальдегидсодержащие, хлорные препараты, надуксусная кислота и др. Дезинфекция возду­ха в присутствии животных может проводиться высокодисперсными препаратами молочной кислоты (20 мг/м3 за 20 мин), 3 %-ного рас­твора перекиси водорода, триэтиленгликоля, резорцина.
Широкое применение аэрозолей дезинфицирующих веществ для обеззараживания воздуха в помещениях ограничивается сле­дующими обстоятельствами: токсичностью для животных и лю­дей, аллергогенным действием некоторых аэрозолей, необходимо­стью поддерживать постоянство концентрации вещества в воздухе, влиянием на эффект обеззараживания влажности и температуры.
Основной недостаток аэрозольного метода дезинфекции связан с нестабильностью обычных аэрозолей, тенденцией их к конден­сации и осаждению под действием гравитационных сил большей части аэрозольных частиц на горизонтальные поверхности.
Если придать обычным аэрозолям электрический заряд того или иного знака, то их физико-химические свойства улучшатся и будет сохраняться дисперсность. Частицы аэрозолей являются но­сителями дополнительного униполярного заряда. Если они имеют на своей поверхности излишек электронов, то речь идет об унипо­лярном отрицательном аэрозоле, если же недостаток – то это уни­полярно положительный аэрозоль.
Более высокая эффективность электроаэрозолей обусловлена тем, что благодаря действию электростатических сил они более ин­тенсивно осаждаются на поверхностях, особенно металлических. Основными факторами являются электростатическое рассеивание аэрозольного облака и притяжение частиц.
Для получения электроаэрозолей используют генератор ЭТАН, преобразователь тока высокого напряжения, компрессор. НПО «Аг-
133
роприбор» и Одесский завод лабораторного оборудования выпускают электрозарядное устройство к турбулирующей насадке ТАН-УЭ-1, которое предназначено для создания индукционного электростати­ческого поля в зоне выхода струи аэрозоля из сопла насадки ТАН и проведения ручной направленной электроаэрозольной обработки жи­вотноводческих помещений и технологического оборудования.
Годовой экономический эффект при использовании одного
электрозарядного устройства
УЭ-1 в составе портативного аэро­зольного комплекта при направленной аэрозольной обработке де­зинфицирующими растворами помещений птицефабрик составля­ет 11 тыс. руб.
В специальных исследованиях (В. С. Ярных, Н. М. Кальбиха­нов, 1982) установлено, что для повышения эффективности обез­зараживания воздуха капли бактерицидного препарата и бактери­альные частицы необходимо порционно подвергать раздельной электризации с интенсивностью от 10 ческой подвижностью от 10
–10
до 10–4 м/в-с, а обеззараживаемые
–10
до 10–7 А/м3 и электри-
частицы удалять электростатическим рассеиванием.
Поскольку для животных, длительно пребывающих в помеще­ниях, определенную опасность представляют не только патоген­ные, но и сапрофитные микроорганизмы (как живые, так и уби­тые), большое значение имеет очистка воздуха. Для очистки воз­духа от пыли и микроорганизмов используют фильтрацию.
В нашей стране в различных отраслях промышленности приме­няют: электрические фильтры, масляные фильтры КД, фильтры из ткани Петрянова (ФПП – фильтр Петрянова перхлорвиниловый) с электрическим зарядом. Примером такого фильтра является фильтр «Лайк» марки СП-6/15 с тканью ФПП-15-3. Этот фильтр предназна­чен для очистки воздуха от пыли и микроорганизмов. Исследования эффективности работы этого фильтра в свиноводче ских и птицевод­ческих помещениях показали, что он обладает высокой степенью очистки (до 99,9 %), но имеет малую пылеемкость. Это обусловли­вает необходимость частой смены фильтрующей насадки.
Для очистки воздуха, удаляемого из птичников, лабораторией гигиены ВНИИВС разработано устройство, которое состоит из филь­тра грубой очистки (лавсановая ткань), дезинфицирующего раство­ра (5 %-
ный раствор едкого натра и 15 %-ный раствор поваренной соли) и фильтра тонкой очистки ( ткань ФПП-15-3). Устройство пред­ставляет собой металлический ящик 0,8
134
1 м. В нем находится
1
дезинфицирующий раствор. Ящик покрывается крышкой размером 1,2
1,2 м с загнутыми краями величиной 0,2 м. В крышку встав-
ляется воздуховод диаметром 0,8 м. Воздух по воз духоводу через вентилятор поступает на дезинфицирующий раствор и под крыш­ку выбрасывается наружу. Лавсановая ткань размещена на сетке под вытяжным вентилятором, а между краем крышки и стенкой ящика закреплена ткать ФПП-15-3. Степень очистки воздуха со ставляет 98,5 %, от микроорганизмов – 98,7 %.
Очистка воздуха помещения осуществляется также с помощью вентиляции. Наиболее эффективно очищает воздух от микроорга­низмов вентиляция с механическим побуждением.
Исследования, которые проводились в течение трех сезонов в двух типах двухрядных коровников (Г. Петков, Д. Диманов, А. Илиев, 1983), показали, что микробная контаминация в коров­нике с механической вентиляцией
была на 19,5–30 % ниже, чем в
коровнике с естественной вентиляцией.
Определенное значение при санации воздуха имеет его иони­зация (содержание легких и тяжелых аэроионов). Естественный уровень аэроионизации атмосферного воздуха характеризуется со­держанием в 1 см3 700–1000 легких и 4500–7000 тяжелых ионов. В животноводческих помещениях концентрация их сильно снижа­ется и составляет 500–150 в 1 см3. Это объясняется тем, что ма­териалы ограждающих конструкций (особенно железобетонных) нейтрализуют отрицательные ионы. Величина преобладания коли­чества тяжелых ионов над легкими является важным показателем гигиенического состояния среды помещения.
Ионизация оказывает влияние на содержание микроорганиз­мов в воздухе помещений. В опытах Н. М. Хренова (1979) было установлено, что легкие отрицательные аэроионы действуют на бактерии не только осаждающим образом, но и оказывают влия­ние на микробную клетку, задерживая ее размножение и рост и вызывая изменения морфологических и культуральных свойств. Так, кишечная палочка увеличивалась в размерах, принимала не­правильную форму, изменяла отношение к окраске по Граму. Бе­лый стафилококк терял способность к образованию гроздевых скоплений, клетки росли в виде мелких морщинистых колоний. Сенная палочка превращалась в споровую форму. Интенсивность роста была на 47,5–70,5 % ниже. Ионизация снижала содержание в воз духе пыли в 3,8–6,5 раза, а микроорганизмов в 2,5–4,3 раза.
135
-
З. Ненов с сотрудниками (1983) изучали влияние двух режимов ионизации на содержание пыли и микроорганизмов в воздухе по­мещений. Первый режим: исходная ионизация 10–15 тыс. ионов/см3 воздуха. Через каждые 6 часов в течение 30 минут концентрацию повышали до 50–60 тыс/см
3
. Второй режим сводился к непрерыв­ной ионизации в течение опыта с исходной концентрацией ионов 10–15 тыс/см3. В результате исследований установлено, что элек-
трический комплекс – аэроионы и электрическое поле – уменьшает загрязненность воздуха птичников микроорганизмами при приме­нении первого режима на 14,6–54,1 %, второго – на 4,9–28,5 %.
Таким образом, санитарный эффект ионизации обусловлен осаж­дением из воздуха заряженных частиц пыли и микроорганизмов. Между коронирующими электродом и поверхностями помещения создается электрическое поле, по силовым линиям которого дви­жутся заряженные частицы. В силу адгезии осевшие частицы до­статочно прочно удерживаются на поверхностях. Эффективность осаждения аэрозольных частиц из воздуха зависит от величины электрического потенциала и продолжительности ионизации.
Для искусственной ионизации воздуха предложены различные устройства («люстра» Чижевского, игольчатые, антенные иониза­торы). Их действие основано на использовании постоянного элек­трического тока высокого напряжения. Напряжение в пределах 30–40 кВ подается от высоковольтного выпрямителя. Отрицатель­ным полюсом ионизатора является рабочий орган, а положитель­ным – земля. Концентрация аэроионов устанавливается с помощью универсальных счетчиков САИ ТГУ-68, ИТ-6914, а также СИ-1.
Контроль качества дезинфекции. При проведении контроля за де- зинфекцией возможны различные подходы. В одном случае осущест­вляется контроль за процессом (методический, химический контроль), в другом случае представляется возможным получить конкретные резуль­таты эффективности всех процессов (микробиологический контроль).
Качество аэрозольной дезинфекции препаратами формали­на и хлорсодержащими веществами можно определить физико­химическим методом, который основан на колориметрическом принципе. Его сущность заключается в сопоставлении эффектив­ности обеззараживания с глубиной окрашивания пробирок с инди­каторной средой. Последняя зависит от концентрации формальде­гида в воздухe, экспозиции, температуры. В качестве индикаторной среды используют сульфитную среду или среду Эндо.
136
С целью определения микробиологической эффективности де­зинфекции используются количественные параметры бактериаль­ной контаминации поверхностей с использованием тест-микробов (кишечной палочки и стафилококков).
По наличию кишечной палочки определяется качество дезин­фекции при паратифозных инфекциях; роже свиней, бруцеллезе, пастериллезе, чуме свиней, чуме птиц.
По наличию стафилококка определяется качество дезинфекции при ящуре, оспе
овец, оспе птиц, лептоспирозе и туберкулезе.
Пробы для бактериологических исследований после дезинфек­ции берут с поверхностей ограждающих конструкций, кормушек в различных участках стерильным ватным тампоном, смоченным в нейтрализующем растворе. Известны контактные методы взятия проб (метод отпечатка на агаре).
Если учесть, что при влажной дезинфекции, а иногда и при аэрозольной (если величина капель колеблется от 10 до 100 мкм), микрофлора, содержащаяся в воздухе, не погибает, особое значе­ние приобретает контроль обеззараживания пространств. К сожа­лению, содержание микроорганизмов в воздухе при контроле каче­ства дезинфекции не учитывается.
Нам представляется возможным использование для этих целей прибора для санитарно-бактериологического исследования возду­ха (А. Ф. Дмитриев, 1982). Конструктивные особенности устрой­ства и наличие съемных накопительных емкостей позволяют осу­ществлять стационарную его установку в помещении и постоян­ный или перио дический контроль.
КОНТРОЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ:
Какова микрофлора воздуха закрытых помещений?1. Какова классификация биологический аэрозолей воздуха?2. Как влияет микрофлора воздуха на организм животного?3. По каким микробиологическим показателям проводится са-4. нитарная оценка воздуха закрытых помещений? Какие приборы используются при санитарной оценке воз-5. духа? Каким образом проводится идентификация микрофлоры 6. воздуха? Какими методами проводится обеззараживание воздуха за-7. крытых помещений?
137
Раздел 2. ЛАБОРАТОРНЫЙ ПРАКТИКУМ
Тема 1
Санитарно-микробиологическое исследование мяса
ЦЕЛЬ ЗАНЯТИЯ: ознакомить студентов с навыками опреде-
ления свежести мяса органолептическим путем и при помощи ми­кроскопии мазков-отпечатков. Освоить методику посева образцов мяса на плотные питательные среды.
МАТЕРИАЛЫ И ОБОРУДОВАНИЕ: – образцы мяса по 30 г (свежее, подозрительной свежести, не-
свежее; – чашки Петри с МПА (2 шт.);набор бактериальных красок для метода Грама; – спиртовки (10 шт.); – микроскопы.
Мясо и мясные продукты исследуют как органолептически, так
и по микробиологическим показателям.
Определение свежести мяса. Свежее мясо оценивают органолеп-
тически, на основании микроскопии и данных химического анализа.
Для определения свежести мяса в лабораторию направляют от
каждой туши пробы массой около 200 г, взятые из мышц дра, лопатки, у зареза против четвертого и пятого шейных позвонков.
Свежесть мяса определяют по его внешнему виду, консистен-
ции, запаху мяса, прозрачности и аромату бульона при варке.
Мясо свежее – цвет бледно-розовый, корочка подсыхания су-
хая, консистенция плотная, на разрезе мясо упругое, при надавли­вании шпателем ямка быстро выравнивается. Запах мышечной ткани специфичный для каждого вида животного, мясной сок про­зрачный. При варке мяса – бульон прозрачный, ароматный.
Мясо с частично измененной свежестью – цвет темно-красный,
поверхность слегка липкая, иногда покрыта плесенью. На разрезе мясо мягкое и рыхлое, при надавливании ямка медленно вырав­нивается. Бульон при варке мутный, с запахом, не свойствен ным свежему бульону.
138
в области бе-
Мясо несвежее – цвет серый или зеленоватый, поверхность по­крыта слизью и плесенью. Мышечная ткань на разрезе дряблая, при надавливании ямка не выравнивается. Запах мяса кислый или слабо-гнилостный. Бульон мутный, с большим количеством хло­пьев, с резким неприятным запахом. Цвет жира серый, консистен­ция мажущаяся, запах прогорклый.
Микроскопическое исследование мяса.
Из каждой пробы мяса готовят не менее 2–3 мазков-отпечатков из поверхностного слоя мяса и из центра пробы.
Для приготовления мазка-отпечатка из поверхностного слоя пробу мяса обжигают, затем стерильными ножницами вырезают кусочек мяса размером 2,01,52,5 см. Поверхностями срезов при- кладывают к предметному стеклу. Препарат высушивают на воз­духе, окрашивают по Граму и микроскопируют.
Мясо считают свежим, если в мазках-отпечатках не обнаружена микрофлора или в поле зрения видны единичные (до 10 клеток) кок­ки или дрожжевые клетки, следов распада мышечной ткани нет.
Мясо считают с частично измененной свежестью, если в поле зрения мазка-отпечатка обнаружено не более 30 кокков или палочек, а также следы распада мышечной ткани: ядра мышеч­ных волокон в состоянии распада, исчерченность мышечных во­локон слаборазличима.
Мясо считают несвежим, если в поле зрения обнаружено свыше 30 кокков или палочек, наблюдается значительный распад мышечной ткани: почти полное исчезновение ядер и полное ис­чезновение исчерченности мышечных волокон. На одном пред­метном стекле исследуют 25 полей зрения.
Бактериологическое исследование мяса. Исследования мяса и субпродуктов проводят во всех случаях при подозрении на ин­фекционные болезни, при желудочно-кишечных заболеваниях, удалении кишечника из туши позднее 2 ч с момента обескровли­вания животных, подозрении на наличие сальмонелл, а также по требованию органов, осуществляющих ветеринарно-санитарный надзор.
Для бактериологического исследования мяса в лабораторию от туши направляют часть мышцы сгибателя или разгибателя пе­редней и задней конечностей длиной не менее 8 см или кусок дру­гой мышцы размером не менее 866 см; поверхностный шейный и наружный подвздошный лимфатические узлы с окружающей их
139
соединительной и жировой тканью, а от свиней – поверхностный шейный дорзальный и надколенный лимфатические узлы, долю печени с печеночным лимфатическим узлом или желчным пу­зырем без желчи, почку и селезенку. При исследовании полу­туш или четвертин берут кусок мышцы, лимфатические узлы и трубчатую кость. Пробы отбирают стерильными инструментами, образцы завертывают каждый в
отдельности в по лиэтиленовую пленку или пергамент и помещают в бумажный пакет, на кото­ром ставят дату отбора образца, номер туши и направляют в ла­бораторию в общей таре (ящике).
При пересылке образцов в лабораторию, расположенную за пределами предприятия, где отбирают образцы, тару с образца­ми опечатывают или пломбируют. В сопроводительном доку­менте указывают наименование продукта, вид мяса, от которого взят образец, и его количество, наименование предприятия и его адрес, номера образцов, причину направления образцов на иссле­дование; краткие патологоанатомические данные и предполагае­мый диагноз; дату взятия образцов и подпись лица, направивше­го их на исследование.
В лаборатории приготовляют 2–10 мазков отпечатков из па­ренхиматозных органов (печени, почек, селезенки), лимфатиче­ских узлов туши или пораженных участков органов или тканей. Препараты высушивают на воздухе, фиксируют и окрашивают одновременно по Граму и 2 %-ным раствором сафранина. При бактериоскопии мазков обращают внимание на наличие возбуди­теля сибирской язвы. При окраске сафранином сибиреязвенные бациллы окрашиваются в кирпично-красный цвет, а капсулы – в светло-желтый (метод Ольта).
Бактериологическое исследование мяса и субпродуктов прово­дят для выявления в них возбудителей зооантропонозов (бацилл cибирской язвы, бактерий листериоза, рожи свиней И других возбу­дителей пищевых токсикоинфекций (бактерий рода эшерихиа, саль­монелл, протеус), возбудителей токсикозов (токсигенных кокков) и анаэробов (патогенных и токсигенных клостридий).
При бактериологическом исследовании каждую пробу освобож­дают от жировой и соединительной ткани, погружают в спирт, за­тем вырезают стерильными ножницами из глубины различных мест кусочки 2,0–2,5 см, лимфатические узлы разрезают пополам. Затем все вырезанные кусочки измельчают стерильными ножницами.
140
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]