- •II часть
- •1.Миниатюризация
- •1.1.Мотивация проведения исследований в области нт
- •1.2.Планы и стратегия развития
- •1.3.Границы изменения масштабов
- •1.4.Связь размеров структур с их функциональностью
- •1.4.1.Распределение атомов и связанные с этим свойства
- •1.4.2.Отношения величина - свойства
- •4 Связь размеров структур с их функциональностью
- •2.1.Введение
- •2.2.Биологические строительные блоки
- •2.2.1. Размеры строительных блоков и наноструктуры
- •2.2.2.Основные объекты нанобиотехнологии
- •2.2.3.Строительные блоки.Синтетические и биологические.
- •2.3.Принципы самосборки
- •2.3.1.Нековалентные взаимодействия
- •2.3.2.Межмолекулярная упаковка
- •2.3.3.Биологическая самосборка
- •2.4.1.Самосборка (Другой источник информации): Понятия и определения
- •2.4.2.Типы межмолекулярных взаимодействий
- •2.4.3.Измерение свойств веществ в наномировом масштабе.
- •3.Нанобиотехнология
- •3.1.Проблемы определения используемых понятий
- •3.2.Технологии типа от нано к био
- •3.3.Технологии типа от био к нано
- •3.4.Нанобиотехнология и молекулярные устройства
- •3.4.1.Общие вопросы
- •3.1. Основные направления развития биотехнологии
- •3.4.2. Молекулярные устройства.3.4.2.1. Общие вопросы
- •3.4.2.2.Молекулярные пинцеты
- •4.4.2.3.Ротаксаны и катенаны
- •4.4.2.4.Вращательное движение
- •4.4.2.5.Возвратно-поступательное движение
- •4.4.2.6.Схемы сборки путем нанизывания кольцевых молекулярных
- •4.Биотехнология, медицина и здравоохранение
- •4.1. Состояние исследований и разработок
- •4.2. Цели, проблемы и решения
- •4.3. Инфраструктура, стратегия и приоритеты
- •4.4. Достижения и новые парадигмы
- •4.4.1. Изучение особенностей биологических систем
- •4.4.2. Нанонаука и нанотехнология в процессах создания биологических тканей (тканевая инженерия)
- •4.4.3. Биологическое детектирование боевых отравляющих веществ
- •4.4.4. Флуоресцентные биологические метки на основе полупроводниковых нанокристаллов
- •4.5.5. Нанотехнология изготовления днк-чипов
- •4.5.Иомиметические нанотехнологии
- •4.5.1. Днк как строительный материал нанотехнологий
- •4.5.1.1. Направленная сборка с помощью днк
- •4.5.1.2. Днк как шаблон для молекулярной электроники
- •4.5.1.3. Моторы и наномашины на основе днк
- •4.5.2.1. Действие биологических моторов
- •4.5.2.2. Биологические моторы как часть синтетических систем
- •4.5.3. Искусственный фотосинтез
- •4.7. Использование наноустройств в космических исследованиях
- •5.2.1.Основные технические характеристики микроскопа "supra 60vp"
- •5.3. Сканирующая зондовая микроскопия
- •5.3.1. Общие принципы сканирующей зондовой микроскопии
- •5.4.Сканирующая зондовая микроскопия
- •5.5.Сканирующая туннельная микроскопия
- •5.7.Атомно-силовые измерения в биологических системах
- •6. Технология рекомбинантных днк
- •6.1.Векторы для Escherichia coli
- •6.2.Идентификация клонированных днк
- •6.3.Экспрессия эукариотических белков в е. Coli
- •6.4. Генетическая инженерия с участием других клеток-хозяев
- •6.5.Получение инсулина на основе методов генетической инженерии
- •6.6.Синтез соматотропина
- •6.7.Получение интерферонов
- •6.8.Генная инженерия растений
- •6.8.1.Получение трансгенных растений
- •6.8.1.6.Применение методов генетической инженерии для улучшения аминокислотного состава запасных белков растений
- •6.8.1.7.Повышение эффективности процесса фотосинтеза
- •6.8.1.8.Генно-инженерные подходы к решению проблемы усвоения азота
- •6.8.1.9.Устойчивость растений к фитопатогенам
- •6.8.1.10.Устойчивость растений к гербицидам
- •6.8.1.11.Устойчивость растений к насекомым
- •6.8.1.12.Устойчивость растений к абиотическим стрессам
- •6.9.1.Типы питания микроорганизмов
- •6.9.2.Типы энергетического обмена у микроорганизмов
- •6.9.3.Питательные среды для культивирования микроорганизмов
- •6.9.4.Источники углерода
- •6.9.5.Источники азота
- •6.9.6.Источники витаминов, гормонов и микроэлементов
- •6.9.7.Биохимические и биофизические факторы роста
- •6.9.8.Конструирование питательных сред для выращивания микроорганизмов
- •6.9.9.Технология приготовления питательных сред
- •6.9.10.Пастеризация как вариант термической стерилизации
- •6.9.11.Стерилизация фильтрацией
- •6.9.12Особенности культивирования эукариотических клеток в качестве продуцентов.
- •10. Что такое паспорт культуры?
- •1. Каковы причины введения международных правил в фармацевтическую практику?
- •9. Экобиотехнология
- •9.1. Введение
- •9.2. Состояние исследований и разработок
- •9.3. Цели, проблемы и решения
- •9.4. Инфраструктура, стратегия и приоритеты
- •9.5. Достижения и новые парадигмы
- •9.6.Биотехнология утилизации твердых отходов.
- •9.6.1. Биотехнология утилизации твердых отходов
- •9.6.2.Биотехнология очистки сточных вод
- •9.7.Биоэнергетика
- •9.8. Ксенобиотики и их биодеградация
9.8. Ксенобиотики и их биодеградация
Ксенобиотики — чужеродные для организмов соединения (пестициды, ПАВ, красители, лекарственные вещества и пр.), которые практически не включаются в элементные циклы углерода, азота, серы или фосфора. Они временно или постоянно накапливаются в окружающей среде и вредно влияют на все живое. Накопление в огромных количествах различных отходов привело к чрезвычайному загрязнению окружающей среды — недр, воды, воздуха, что пред-ставляет огромную опасность для человечества. I Судьба ксенобиотиков определяется комплексом физи-
ческих, химических и особенно биологических факторов. Их биологическая трансформация может протекать в различных направлениях, приводя к минерализации, накоплению или полимеризации.
Ксенобиотики, которые подвергаются полной деградации (т. е. минерализуются до диоксида углерода, воды, аммиака, сульфатов и фосфатов), используются микроорганизмами в качестве основных ростовых субстратов и проходят полный метаболический цикл.
Частичная трансформация соединений происходит, как правило, в процессах кометаболизма или соокисления и не связана с включением образуемых продуктов в метаболический цикл микроорганизмами.
Некоторые ароматические углеводороды и синтетические полимеры вообще не поддаются биологической трансформации.
Поведение ксенобиотика в природе зависит от многих взаимосвязанных факторов: структуры и свойств самого соединения, физико-химических условий среды и ее биокаталитического потенциала, определяемого микробным сообществом. Все эти факторы в совокупности определяют скорость и глубину трансформации соединений. Нельзя забывать о том, что биологическая деградация ксенобиотиков оправдана только тогда, когда происходят их полная минерализация, разрушение и детоксикация. Это может быть достигнуто в результате всего одной модификации структуры соединения. Однако часто в ходе деградации происходит серия последовательных изменений исходного соединения с участием нескольких микробных видов. Именно благодаря гетерогенности природных микробных сообществ ксенобиотики в принципе могут подвергаться биодеградации, а наличие в микробных сообществах взаимосвязанных метаболических путей разрушения токсинов является основой для борьбы с загрязнением окружающей среды.
Существует два пути борьбы с загрязнением биосферы ксенобиотиками: их сбор и детоксикация до момента попадания в окружающую среду; трансформация или удаление ксенобиотиков, попавших в окружающую среду.
Возможности микробных сообществ по деградации многих токсичных соединений значительны. Доказано, что при повторном попадании в среду многих химических соединений время до начала их трансформации (так называемый адаптационный период микроорганизмов по отношению к данному субстрату) значительно короче, по сравнению с первым попаданием этого соединения. В течение этого периода микроорганизмы в ходе адаптации к токсическому соединению как субстрату селектируются по способности деградировать данный субстрат. В результате естественным путем возникают микробные популяции, которые могут сохраняться в почве в течение нескольких месяцев после полной деградации токсиканта.
Для отбора и селекции микроорганизмов, характеризующихся высокой скоростью деградации определенных классов ксенобиотиков, возможно использование различных путей: отбор конститутивных мутантов, отбор на генетическую дупликацию и на основе механизма переноса генов. Повышение деградирующей способности возможно также в результате стимуляции естественной почвенной микрофлоры, уже адаптированной к токсикантам.
При попадании новых веществ в окружающую среду может происходить природное генетическое конструирование, в результате которого возникают микробные формы с новыми катаболическими свойствами. В настоящее время идентифицированы разнообразные природные плазмиды, способствующие катаболизму веществ и встречающиеся у различных представителей почвенной микрофлоры. Особенно часто они встречаются среди рода Pseudomonas. Информация, которую несут плазмиды, может расширить круг субстратов хозяина за счет объединения двух метаболических путей, либо полным кодированием нового пути, либо дополнением существующих метаболических путей. Внутри-и межплазмидные рекомбинации приводят к перестановке генов на плазмидах и возникновению новых метаболических путей. Известны также случаи перераспределения генетического материала между плазмидами и хромосомой хозяина, приводящие к появлению совершенно новых генов. Пластичность катаболических плазмид обеспечивает перераспределение генетического материала, что может привести к возникновению в природе нового организма, эффективно деградирующего новый субстрат.
Таким образом, природные генетические механизмы обмена информацией позволяют получать эффективные штаммы-деструкторы ксенобиотиков. Это очень важно, так как общепринятые методы работы с рекомбинантными ДНК, применяемые для клонирования чужеродной ДНК с небольшим числом генов, имеют существенные ограничения при клонировании метаболических путей деградации ксенобиотиков, кодируемых десятками генов. Ограничения также обусловлены недостатком знаний о механизмах деградации и структуре метаболических путей, а также возможностями риска, связанного с попаданием сконструированных организмов в среду. Методы генетической инженерии могут быть полезными и для модификаций уже существующих микробных клеток со способностью к биодеградации.
Известно, что большинство пестицидов, попадающих в окружающую среду при обработке сельскохозяйственных культур, расщепляются бактериями и грибами. Превращение исходного пестицида в менее сложное соединение достаточно эффективно происходит под воздействием микробных сообществ. При этом уже на первой стадии микробной трансформации высокая токсичность ряда пестицидов может утрачиваться, что позволяет разрабатывать относительно простые микробиологические методы борьбы с ксенобиотиками. Описаны опыты успешного применения ферментов (гидролаз, эстераз, ациламидаз и фосфоэстераз) для проведения первичного гидролиза пестицидов и увеличения степени их последующей биодеградации. Например, с помощью паратионгидролазы из Pseudomonas sp. можно достаточно эффективно удалять остаточный паратион из контейнеров с данным пестицидом, а растворы данного фермента применяют для уничтожения разливов паратиона на почвах. На основе иммобилизованных ферментов удаляют пестициды из сточных вод, ферменты применяют также в виде аэрозолей для удаления пестицидов с промышленных установок.
Большую опасность для окружающей среды представляют полиароматические углеводороды. Так, полихлорбифе-нилы (ПХБ) — очень устойчивые соединения, долго присутствующие в окружающей среде в результате прочной адсорбции биологическими и осадочными породами, а также плохой миграции. Микроорганизмы не способны полностью деградировать эти соединения, но могут модифицировать их.
Установлена способность микробных сообществ превращать промышленные ПХБ в новые типы углеводородов, при этом молекулы с низкой степенью хлорирования расщепляются. Устойчивое полиароматическое соединение бензапирен не минерализуется в системах активного ила, хотя описано несколько видов микроорганизмов, способных частично его метаболизировать. В ходе деградации бензапи-рена образуются канцерогенные соединения (гидрокси- и эпоксипроизводные).
Также устойчив к деградации полистирол, хотя описано несколько случаев частичной деградации измельченных автомобильных шин, изготовленных из стиролбутадиеновой резины. Есть сообщения о росте микробного сообщества на стироле, в ходе которого разрушается ингибитор полимеризации 4-трет-бутилкатехол; далее происходит свободнора-дикальная полимеризация стирола с осаждением образующегося полистирола. Этот полимер впоследствии под воздействием микробного сообщества исчезает из почвы.
Одна из крупнейших групп загрязнителей природы — галогенсодержащие ксенобиотики, которые характеризуются высокой токсичностью и низкой способностью к разрушению. Причина их токсичности и устойчивости определяется наличием в них трудно расщепляемой галогенуглерод-ной связи.
Однако, как оказалось, ряд галогенсодержащих соединений являются природными образованиями и представляют собой метаболиты бактерий, грибов, водорослей. Это определило судьбу отдельных галогенсодержащих соединений в природе.
Для эффективной трансформации родственного ксеноби-отического соединения необходима адаптация микроорганизма, включая его генетическую изменчивость. Длительные исследования путей деградации галогенсодержащих ксенобиотиков показали, что для получения суперштамма, эффективно их разлагающего, нужно модифицировать существующий механизм деградации ароматических соединений.
Идея конструирования катаболических путей принадлежит М. Рейнеке и Кнакмуссу, создавшим штамм Pseudomonas, способный разрушать 4-хлорбензоат. В эксперименте по скрещиванию Pseudomonas putida PaWl, обладающего TOL-плазмидой pWWO с Pseudomonas sp. B13 (pWRl), утилизирующим 3-хлорбензоат, они получили трансконъю-гат, способный использовать 4-хлорбензоат в результате переноса гена толуол-1,2-диоксигеназы (контролируемого плазмидой pWWO) в штамм Pseudomonas sp. В13. Аналогичный результат был получен при совместном культивировании в хемостате двух культур — P. aeruginosa, содержащей плазмиду рАС25, и культуры, содержащей TOL.
Первая плазмида, связанная с катаболизмом галогени-рованных органических соединений (2,4-Д), была обнаружена у Alcaligenes paradoxus, затем у других микроорганизмов. Позже появилась серия публикаций о деградации 2,4-Д, однако сообщения по разрушению 2,4,5-трихлор-уксусной кислоты (2,4,5-Т) были крайне редки. Впоследствии при совместном культивировании в хемостате в течение 8-10 месяцев микробных культур, содержащих несколько катаболических плазмид, при постепенном увеличении концентрации 2,4,5-Т получили штамм, способный к деградации 2,4,5-Т и трихлорфенола.
Биологические методы применимы также для очистки природной среды от нефтяных загрязнений, представляющих собой как сточные воды нефтяной промышленности, так и непосредственное загрязнение в результате разлива нефти. Сточные воды нефтяной промышленности очищают биологическими методами после удаления физическими методами большей части смеси различных углеводородов. Для этого применяют аэрируемые системы биоочистки с активным илом, содержащим адаптированное к компонентам нефти сообщество. Скорость деградации зависит от качественного состава и концентрации углеводородов, а также от температуры и степени аэрации среды. Наиболее эффективно биодеградация осуществляется, когда нефть эмульгирована в воде.
Особую проблему представляют выбросы и аварийные разливы нефти на поверхность почвы. Это приводит к загрязнению не только пахотных земель, но и источников питьевой воды. В почве содержится много микробных видов, способных деградировать углеводороды, но их активность часто низка, в частности и за счет дефицита отдельных биогенных элементов. В таких случаях эффективным является внесение в почву так называемых «олеофильных удобрений», в состав которых входят соединения азота, фосфаты и другие минеральные элементы, концентрации которых в почве достаточно низки и лимитируют рост микроорганизмов. После внесения этих соединений в почву концентрация микроорганизмов-деструкторов существенно возрастает, как и скорость деградации нефти.
С помощью генетического конструирования создан «супермикроб» с плазмидами ОСТ и САМ. Такая мультиплаз-мидная бактерия растет, утилизируя неочищенную нефть. Однако возможность эффективного применения данного организма в естественных условиях требует доказательств.
Изучение возможностей использования методов генетического конструирования микробных штаммов-деструкторов ксенобиотиков в практических целях находится на ранней стадии. Одна из основных проблем при конструировании микроорганизмов на основе природных катаболических плазмид — стабильность. Стабильность систем «хозяин — вектор» особенно важна при интродукции штаммов в естественную среду. При возвращении микроорганизма с новой катаболической функцией в исходную природную среду ему приходится конкурировать с хорошо адаптированной к данным условиям среды естественной микрофлорой, сталкиваться с огромным разнообразием источников углерода, в том числе высокотоксичных. При этом совершенно не ясны перспективы сохранения стабильности новой катаболической функции, а следовательно, самого штамма. Пока же существует большой разрыв между достижениями в области конструирования микроорганизмов и возможностями их практического применения. В будущем наиболее перспективными для детоксикации ксенобиотиков представляются биологические системы, состоящие из микробиологической консорции индивидуальных организмов и микробных сообществ, полученных методами клеточной и генетической инженерии.
Биоремедиация
Все живые организмы (животные, растения, бактерии и др.) для поддержания жизни поглощают и переваривают питательные вещества и выделяют в окружающую среду образующиеся при этом продукты жизнедеятельности. Разным организмам для поддержания жизни необходимы разные питательные вещества. Некоторые бактерии «с удовольствием» поглощают химические соединения, содержащиеся в отходах, другие питаются токсическими химикатами, такими, как метиленхлорид, детергенты и креозот.
Специалисты в области охраны окружающей среды пользуются двумя методами биоремедиации (биовосстановления) зараженных органическими отходами земель: вносят в зараженную почву либо специализированные штаммы бактерий, либо питательные вещества, стимулирующие активность уже присутствующих там микроорганизмов. Бактерии поглощают токсины и разлагают их до безвредных продуктов жизнедеятельности. После того как весь запас токсических соединений переработан, численность популяции бактерий-очистителей возвращается к нормальному уровню или же они отмирают.
Различные методы биоремедиации с помощью природных микроорганизмов применяют для обезвреживания промышленных отходов перед их выбросом в окружающую среду, а также для очистки уже существующих загрязнений. В настоящее время несколько усовершенствованных систем очистки, использующих генетически модифицированные микроорганизмы, проходят тестирование на эффективность обезвреживания плохо поддающихся деградации соединений.
В некоторых случаях продукты жизнедеятельности микроорганизмов — «борцов» за чистоту окружающей среды — сами обладают полезными свойствами. Например, бактерии, расщепляющие образующиеся в процессе производства бумаги соединения серы, выделяют метан.
Одним из направлений биоремедиации является фито-ремедиация — комплекс методов очистки вод, почв и атмосферного воздуха с использованием зеленых растений. На использовании растений были основаны первые простейшие методы очистки сточных вод (поля орошения и поля фильтрации). Первые научные исследования в этом направлении были проведены в 1950-х гг. в Израиле. Активное развитие метода фиторемедиации началось только в 1980-х гг. Известно, что растение воздействует на окружающую среду разными способами, основными из которых являются:
— ризофильтрация — корни всасывают воду и химические элементы, необходимые для жизнедеятельности растений;
— фитоэкстракция — накопление в организме растения опасных загрязнений (например, тяжелых металлов);
— фитолатилизация — испарение воды и летучих химических элементов (As, Se) листьями растений;
— фитостабилизация — перевод химических соединений в менее подвижную и активную форму (снижает риск распространения загрязнений);
— фитодеградация — деградация растениями и симбио-тическими микроорганизмами органической части загрязнений;
— фитостимуляция — стимуляция развития симбиоти-ческих микроорганизмов, принимающих участие в процессе очистки.
Главную роль в деградации загрязнений играют микроорганизмы. Растение является своего рода биофильтром, создавая для них среду обитания (обеспечение доступа кислорода, разрыхление грунта). В связи с этим процесс очистки происходит также вне периода вегетации (т. е. не только летом) с несколько сниженной активностью.
В фиторемедиации может быть использован широкий спектр водных растений (гидроботаническая очистка). К ним относятся тростник (Phragmiittes communiis), ива (Salix cinerea, Salix peuntandra), ряска (Lemna sp.) и др.
