- •II часть
- •1.Миниатюризация
- •1.1.Мотивация проведения исследований в области нт
- •1.2.Планы и стратегия развития
- •1.3.Границы изменения масштабов
- •1.4.Связь размеров структур с их функциональностью
- •1.4.1.Распределение атомов и связанные с этим свойства
- •1.4.2.Отношения величина - свойства
- •4 Связь размеров структур с их функциональностью
- •2.1.Введение
- •2.2.Биологические строительные блоки
- •2.2.1. Размеры строительных блоков и наноструктуры
- •2.2.2.Основные объекты нанобиотехнологии
- •2.2.3.Строительные блоки.Синтетические и биологические.
- •2.3.Принципы самосборки
- •2.3.1.Нековалентные взаимодействия
- •2.3.2.Межмолекулярная упаковка
- •2.3.3.Биологическая самосборка
- •2.4.1.Самосборка (Другой источник информации): Понятия и определения
- •2.4.2.Типы межмолекулярных взаимодействий
- •2.4.3.Измерение свойств веществ в наномировом масштабе.
- •3.Нанобиотехнология
- •3.1.Проблемы определения используемых понятий
- •3.2.Технологии типа от нано к био
- •3.3.Технологии типа от био к нано
- •3.4.Нанобиотехнология и молекулярные устройства
- •3.4.1.Общие вопросы
- •3.1. Основные направления развития биотехнологии
- •3.4.2. Молекулярные устройства.3.4.2.1. Общие вопросы
- •3.4.2.2.Молекулярные пинцеты
- •4.4.2.3.Ротаксаны и катенаны
- •4.4.2.4.Вращательное движение
- •4.4.2.5.Возвратно-поступательное движение
- •4.4.2.6.Схемы сборки путем нанизывания кольцевых молекулярных
- •4.Биотехнология, медицина и здравоохранение
- •4.1. Состояние исследований и разработок
- •4.2. Цели, проблемы и решения
- •4.3. Инфраструктура, стратегия и приоритеты
- •4.4. Достижения и новые парадигмы
- •4.4.1. Изучение особенностей биологических систем
- •4.4.2. Нанонаука и нанотехнология в процессах создания биологических тканей (тканевая инженерия)
- •4.4.3. Биологическое детектирование боевых отравляющих веществ
- •4.4.4. Флуоресцентные биологические метки на основе полупроводниковых нанокристаллов
- •4.5.5. Нанотехнология изготовления днк-чипов
- •4.5.Иомиметические нанотехнологии
- •4.5.1. Днк как строительный материал нанотехнологий
- •4.5.1.1. Направленная сборка с помощью днк
- •4.5.1.2. Днк как шаблон для молекулярной электроники
- •4.5.1.3. Моторы и наномашины на основе днк
- •4.5.2.1. Действие биологических моторов
- •4.5.2.2. Биологические моторы как часть синтетических систем
- •4.5.3. Искусственный фотосинтез
- •4.7. Использование наноустройств в космических исследованиях
- •5.2.1.Основные технические характеристики микроскопа "supra 60vp"
- •5.3. Сканирующая зондовая микроскопия
- •5.3.1. Общие принципы сканирующей зондовой микроскопии
- •5.4.Сканирующая зондовая микроскопия
- •5.5.Сканирующая туннельная микроскопия
- •5.7.Атомно-силовые измерения в биологических системах
- •6. Технология рекомбинантных днк
- •6.1.Векторы для Escherichia coli
- •6.2.Идентификация клонированных днк
- •6.3.Экспрессия эукариотических белков в е. Coli
- •6.4. Генетическая инженерия с участием других клеток-хозяев
- •6.5.Получение инсулина на основе методов генетической инженерии
- •6.6.Синтез соматотропина
- •6.7.Получение интерферонов
- •6.8.Генная инженерия растений
- •6.8.1.Получение трансгенных растений
- •6.8.1.6.Применение методов генетической инженерии для улучшения аминокислотного состава запасных белков растений
- •6.8.1.7.Повышение эффективности процесса фотосинтеза
- •6.8.1.8.Генно-инженерные подходы к решению проблемы усвоения азота
- •6.8.1.9.Устойчивость растений к фитопатогенам
- •6.8.1.10.Устойчивость растений к гербицидам
- •6.8.1.11.Устойчивость растений к насекомым
- •6.8.1.12.Устойчивость растений к абиотическим стрессам
- •6.9.1.Типы питания микроорганизмов
- •6.9.2.Типы энергетического обмена у микроорганизмов
- •6.9.3.Питательные среды для культивирования микроорганизмов
- •6.9.4.Источники углерода
- •6.9.5.Источники азота
- •6.9.6.Источники витаминов, гормонов и микроэлементов
- •6.9.7.Биохимические и биофизические факторы роста
- •6.9.8.Конструирование питательных сред для выращивания микроорганизмов
- •6.9.9.Технология приготовления питательных сред
- •6.9.10.Пастеризация как вариант термической стерилизации
- •6.9.11.Стерилизация фильтрацией
- •6.9.12Особенности культивирования эукариотических клеток в качестве продуцентов.
- •10. Что такое паспорт культуры?
- •1. Каковы причины введения международных правил в фармацевтическую практику?
- •9. Экобиотехнология
- •9.1. Введение
- •9.2. Состояние исследований и разработок
- •9.3. Цели, проблемы и решения
- •9.4. Инфраструктура, стратегия и приоритеты
- •9.5. Достижения и новые парадигмы
- •9.6.Биотехнология утилизации твердых отходов.
- •9.6.1. Биотехнология утилизации твердых отходов
- •9.6.2.Биотехнология очистки сточных вод
- •9.7.Биоэнергетика
- •9.8. Ксенобиотики и их биодеградация
2.3.2.Межмолекулярная упаковка
При высоких концентрациях упаковка молекул блок-сополимеров или низкомолекулярных амфифильных веществ приводит к образованию лиотропных жидкокристаллических фаз, таких как кубическая упаковка сферических мицелл, гексагональная упаковка цилиндрических мицелл, ламел-лярные и взаимно непрерывные кубические фазы (рис. 2.6). Какая фаза образуется, зависит от свободной энергии, определяемой кривизной границы раздела ПАВ—вода. Существует два похода к подсчету свободной энергии, связанной с искривленной поверхностью раздела. Одна модель анализирует кривизну поверхности с помощью дифференциальной геометрии, игнорируя молекулярное строение. Во второй модели поверхность раздела описывается в терминах коэффициента молекулярной упаковки. Оба эти подхода будут представлены в этом подразделе.
В модели непрерывной поверхности раздела для вычисления кривизны используют дифференциальную геометрию поверхностей. В каждой своей точке Р поверхность характеризуется двумя типами кривизны: средняя кривизна и гауссова кривизна. Обе могут быть определены через главные значения кривизны сх = \/Rv с2 = l/R2, где Rx и R2 — радиусы кривизны. Средняя кривизна Н = (сх + с2)/2, а гауссова кривизна К — схс2.
Радиусы кривизны элемента так называемой седловой поверхности (элемент поверхности ПАВ во взаимно непрерывной кубической структуре) показаны на рис. 2.7, хотя их также легко можно определить для других типов поверхностей, например выпуклых или вогнутых поверхностей, встречающихся в мицеллярных фазах. Для определения знаков радиусов кривизны необходимо определить направление нормали к поверхности в точке Р. Его традиционно считают положительным, если поверхность в точке Р направлена наружу. На рис. 2.7 сх будет отрицательна, а с2 — положительна. Средняя и гауссова кривизны различных поверхностных агрегатов перечислены в табл. 2.4.
Следует заметить, что здесь мы пренебрегли концевыми эффектами удлиненных мицелл, которые закрываются колпачком из поверхностно-активных молекул, что придает им форму эллипсоида или сфероцилиндра (цилиндр, закрытый колпачками в виде полусфер). Величина, на которую меняется средняя и гауссова кривизна, зависит от соотношения между площадью поверхности колпачков и площадью цилиндрической части. Упругая свободная энергия, связанная с искривлением поверхности, содержит, при малых деформациях, сумму вкладов от средней и гауссовой кривизны. Таким образом модель кривизны непрерывной поверхности раздела позволяет определить по средней и гауссовой кривизне упругие модули к и к соответственно. Их можно измерить (например, по светорассеянию) и охарактеризовать гибкость пленки ПАВ. Незаряженные пленки ПАВ обычно имеют упругую энергию F < кБТ; т. е. они достаточно гибкие.
Рис.2.6.
Рис.2.7. Главные радиусы кривизны седловой поверхности
Альтернативный подход к описанию лиотропных мезофаз основан на понятии молекулярной упаковки. Соотношение между эффективной площадью поверхности гидрофильной головки а и длиной гидрофобного хвоста определяет кривизну поверхности раздела. Эффективная площадь поверхности головки (эффективная площадь молекулярного сечения) определяется балансом между гидрофобной силой на хвосты ПАВ, которая ассоциирует молекулы друг с другом (и тем самым уменьшает а), и стремлением головок максимизировать свой контакт с водой (и тем самым увеличить а). Этот баланс дает оптимальное значение площади на одну гидрофильную головку а, при котором энергия взаимодействия с растворителем минимальна.
Таблица
2.4.
Простые геометрические основания позволяют определить коэффициент упаковки, величиной которого определяется наиболее выгодная форма агрегата. Можно показать, что для сферической мицеллы выполняется следующее условие: V/la < 1/3, где V— объем молекулы; / — длина гидрофобного хвоста (который легко можно рассчитать). Величина Ns = V/la называется коэффициентом упаковки ПАВ, или критическим коэффициентом упаковки. Этот коэффициент можно использовать для оценки эффективной площади головки ПАВ а, и наоборот, по а можно рассчитать коэффициент молекулярной упаковки. В коэффициенте упаковки сконцентрирована зависимость, отражающая изменения главным образом в а (и в некоторой степени в V) при изменениях количества растворителя.
Сферические мицеллы можно рассматривать так, словно они состоят из упакованных конусов, соответствующих эффективным молекулярным объемам. Другие агрегаты также можно считать состоящими из упакованных усеченных конусов или цилиндров.
Модель упаковки ПАВ и описание кривизны поверхности раздела взаимосвязаны. Уменьшение коэффициента упаковки ПАВ соответствует возрастанию средней кривизны. Коэффициент упаковки применяется также для объяснения стабильности более сложных структур, например взаимно непрерывных кубических фаз. В последнем случае элементом упаковки является клин, который служит приближением элемента седловой поверхности (см. рис. 2.7). С его помощью можно подсчитать разности в значениях гауссовой кривизны, а равно и средней кривизны, между различными структурами.
