chebanov_m_s_galich_e_v_rukovodstvo_po_iskusstv

110

Рисунок78:АппаратыМак-Дональда:А–инкубационнаялиния,Б–отдельные аппараты, смонтированные на бассейны для вылупления предличинок.

Рисунок 79: Схема инкубационных аппаратов: А - Вейса, Б - Мак-Дональда.

5.2.1.4 Подготовка инкубационных аппаратов

Перед закладкой икры проверяют систему подачи и сброса воды в аппаратах, их комплектность и состояние инкубационных секций. Водоподающую систему промывают, аппараты после промывки дезинфицируют и вновь промывают чистой водой.

111

5.2.2 Нормы закладки икры на инкубацию

Учет количества инкубируемой икры осуществляют при закладке в аппараты объёмным или весовым методом. Норма загрузки икры в инкубационные аппараты представлены в Таблице 22.

Таблица 22: Норма загрузки икры в инкубационные аппараты.

Следует отметить, что приведенные нормы загрузки инкубационных аппаратов Ющенко и «Осетр» были разработаны и использовались на рыбоводных заводахАзовского и Каспийского бассейнов (Сборник инструкций…, 1986) в период максимальных объемов заготовки диких производителей и необходимости единовременной инкубации десятков миллионов икры. В современных условиях нормы загрузки аппарата «Осетр» целесообразно снизить на 20–30%.

5.2.3 Расход воды в инкубационных аппаратах

Расход воды в аппаратах устанавливают в зависимости от их типа. Интенсивность потребления кислорода в процессе эмбрионального развития существенно возрастает: осетра - в 20–25 раз, севрюги – в 15–27, шипа – в 39–50 раз (в расчёте на один г - живой массы и на одну икринку) (Коржуев, Никольская и Родзиевская, 1960). Содержание растворенного в воде кислорода не должно снижаться менее 7,5 мг/л. Концентрация ниже 6,0 мг/л (80% насыщения) приводит к различным отклонениям в развитии (гипертрофия сердца, водянка перикарда и др.), концентрация кислорода 3,0– 3,5 мг/л приводит к полной гибели эмбрионов. Для создания благоприятного кислородного режима (6,6–9,0 мг/л) необходимо обеспечить расход воды: в аппарате Мак-Дональда (13 л) - от 4–5 л/мин (30–40% объёма в минуту) до 10 л/мин на завершающих стадиях (Conte et al.,1988), в аппарате Вейса – 1–8 л/ мин.

112

Нормы расхода воды в аппарате Ющенко в зависимости от стадии эмбрионального развития представлены в таблице 23, а в аппарате «Осётр» в таблице 24.

Таблица 23: Удельный расход воды в аппарате Ющенко (Мильштейн, 1982).

Таблица 24: Удельный расход воды в аппаратах «Осётр» (Сборник инструкций…, 1986).

5.2.4 Освещенность

Уровень освещенности инкубационных аппаратов должен соответствовать видовым требованиям (белуга – менее 100 лк, севрюга – 20–100 лк, русский осетр и шип – 10–20 лк (Касимов, 1987). При большей освещенности увеличивается число аномалий развития и снижается выживаемость эмбрионов.

5.2.5 Контроль инкубации икры осетровых рыб

В ходе инкубации ведут круглосуточное наблюдение за бесперебойным водоснабжением, газовым, гидрохимическим и температурным режимом (суточные колебания не должны превышать 2оС), своевременно удаляя неразвивающиеся икринки.

114

Рисунок 81: Время взятия проб для определения процента оплодотворения яиц: A - русский осетр; Б – севрюга; В – белуга; Г – стерлядь, в зависимости от температуры инкубации (Детлаф, Гинзбург и Шмальгаузен, 1981).

Примечание: кривые показывают время от осеменения до появления борозд второго (I) и третьего (III) делений дробления, II лучшее время для взятия пробы.

Для подсчёта процента оплодотворения икру в аппарате перемешивают, берут пробу 100–200 икринок, просматривают невооруженным взглядом или с помощью бинокуляра, отделяют мертвые, неоплодотворенные активированные, полиспермные икринки, а затем подсчитывают долю нормально развивающихся эмбрионов в общем количестве икринок в пробе.

5.2.5.2 Наблюдение за дальнейшим развитием икры

В ходе инкубации ведётся наблюдение за синхронностью и соответствием норме эмбрионального развития осетровых. Указанный контроль более удобно проводить на стадии «большой и малой желточной пробки» (стадии

16–17) (Рисунок 82).

115

Рисунок 82: Нормальное развитие зародыша на стадиях 16–17 (Детлаф, Гинзбург и Шмальгаузен, 1981).

Следует отметить, что только после завершения этой стадии обычно может приниматься окончательное решение о возможной транспортировке данной партии икры. Действительно, к началу стадии (для русского осетра - 31,4 часа после осеменения при температуре воды 18оС) (Таблица 25), к концу гаструляции погибают все неоплодотворившиеся яйца русского осетра, а нормально развивающиеся зародыши не имеют желточных пробок, или эти пробки очень маленькие.

116

Таблица 25: Хронология зародышевого развития русского осетра Acipenser gueldenstaedtii colchicus (Детлаф, Гинзбург и Шмальгаузен, 1981).

117

1 - τ0 - продолжительность одного митотического цикла в период синхронных делений дробления.

Последующий контроль осуществляется на стадиях формирования зачатковсердца(стадии26–28)когдапоколичествунормальноразвивающихся эмбрионов можно получить четкое представление об ожидаемом выходе предличинок (Рисунок 83).

118

Рисунок 83: Нормально развивающиеся зародыши на стадиях 26–28 (Детлаф, Гинзбург и Шмальгаузен, 1981): h – вид со стороны головного отдела, d – вид со спинной стороны.

Оптимальное время отбора проб для контроля за ходом эмбриогенеза зависит от температурного режима инкубации икры (Рисунок 84).

119

Рисунок 84: Продолжительность зародышевого развития A. gueldenstaedtii

(AG), A. stellatus (AS), H. huso (HH), A. ruthenus (AR), и время взятия проб для определения типичности развития в зависимости от температуры инкубации, (Детлаф, Гинзбург и Шмальгаузен, 1981).

Примечание: I – время от осеменения до конца гаструляции (стадия 18); II – стадии слияния боковых пластинок перед образованием зачатка сердца (стадия 26); III – стадии вылупления единичных предличинок (стадия 35). Ось ординат, время после осеменения, часы; ось абсцисс значения температурыоС.

5.2.5.3 Нарушения эмбрионального развития

Типичные нарушения нормального развития эмбрионов на разных стадиях детально описаны Детлаф, Гинзбург и Шмальгаузен (1981). Наиболее часто встречающиеся из них представлены на рисунках 85, 86, 87.