chebanov_m_s_galich_e_v_rukovodstvo_po_iskusstv

220

Пакеты изготавливают из отрезка (95 см) толстого (0,07–0,15 мм) полиэтиленового рукава шириной 50-80 см, одна сторона которого сварена V-образным швом, а вторая – герметизируется специальным зажимом или резиновыми кольцами. Для увеличения надежности пакеты делают двухслойными. Соотношение воды (с рыбой) и свободного пространства в пакете должно составлять 1:3. Освободив пакет от воздуха, в него закачивают технический кислород, герметизируют одним из указанных выше способов и помещают в картонную коробку, выстланную при необходимости теплоизолирующим материалом (синтепон, пенопласт и пр.).

Рыбу, в упакованных таким образом пакетах, можно транспортировать в течение 24–30 часов. При этом, для обеспечения надлежащего кислородного режима, необходимо обеспечить перемешивание воды в пакетах. При перевозках в жаркое время года, коробки с пакетами необходимо защищать от попаданияпрямыхсолнечныхлучей.Предотвратитьсущественноеповышение температуры воды можно с помощью герметичных емкостей со льдом. При перевозкахпакетырекомендуетсяустанавливатьвертикально,анадлительных стоянках располагать горизонтально. При необходимости длительной, свыше 30 часов, перевозки, запас кислорода в пакетах можно пополнять. В таблице 63 приведена плотность загрузки при температуре 15оС. При более высоких температурах необходимо применить понижающий коэффициент 0,25 на каждые 5оС, при более низких температурах – аналогичный повышающий коэффициент.

Таблица 63: Плотность загрузки (кг) личинок и молоди осетровых при перевозке в полиэтиленовых пакетах (Орлов и др., 1974).

При определении оптимальной плотности посадки, следует учитывать не только обеспеченность молоди кислородом, но и пороговую концентрацию растворенной в воде углекислоты, которая может вызывать гибель рыб. Для личинок массой 10–30 мг это значение составляет 40 мл/л, для более крупной молоди – 20 мл/л. При температуре 15оС среднее выделение углекислоты рыбами составляет 150–200 мл/кг в час, при температуре 20оС – 300–450 мл/ кг в час.

221

11.12.2 Транспортировка оплодотворённой икры осетровых рыб

При перевозке оплодотворенной икры важно не допускать длительного пребыванияпакетовсикройвнеподвижномсостоянии,каквовремяостановок при транспортировке, так и в течение процесса упаковки или разгрузки икры. Продолжительность возможного пребывания икры в спокойном состоянии зависит от плотности погрузки в пакеты и температуры воды и в среднем составляет от 10–15 минут при плотности загрузки 5–6 кг на пакет до 1,0– 1,5 часов при загрузке 2,0–2,5 кг икры на пакет (при температуре 15–17оС). При малых плотностях загрузки (1 кг и менее) и оптимальном температурном режиме транспортировки время пребывания икры в спокойном состоянии может достигать 2–3 часов. При длительных остановках рекомендуется каждые 40 мин. производить легко покачивание пакетов в течение 40–60 сек.Превышение указанного выше времени нахождения икры в спокойном состоянии может приводить к массовой гибели икры достигающей 50%. Оптимальная плотность загрузки оплодотворенной икры в пакет зависит от стадии развития икры, температурного режима и продолжительности перевозки (Таблица 64). Температура воды при транспортировке должна находиться в границах интервала, специфичного для перевозимого вида.

Таблица 64: Норма загрузки икры осетровых рыб при перевозке в полиэтиленовых пакетах при различной температуре, кг (Орлов и др., 1974).

11.12.3 Транспортировка осетровых рыб в открытых емкостях

К открытым емкостям относятся контейнеры, фляги, брезентовые ванны и чаны (традиционно используются для внутрихозяйственных перевозок), живорыбные цистерны (с термоизоляцией или без), устанавливаемые на автотранспорт (Рисунок 125), а также живорыбные вагоны. Перевозка рыбы в специализированном живорыбном автотранспорте должна сопровождаться непрерывной аэрацией воды с помощью компрессоров или баллонов с кислородом. Заполнение емкости водой производят непосредственно перед загрузкой рыбы. Систему аэрации включают сразу после заполнения емкости (не менее чем за 15 мин до загрузки в нее рыбы).

222

А. Б.

Рисунок 125: А - Погрузочный контейнер для кратковременной перевозки рыбы объемом 300 л. (Чепуркина и др., 2008), Б - специальная ёмкость для кратковременной перевозки живой рыбы.

Особенностью осетровых является высокое слизеотделение при, даже кратковременном, нахождении вне воды и механических стрессовых воздействиях. В связи с этим после окончания погрузки рыбы производят ее «промывку» проточной водой в течение 20–30 минут, с целью удаления из живорыбной емкости отделившейся слизи. Для снижения стресса молоди и взрослых особей осетровых рыб в период транспортировки целесообразно добавлятьнеионизированнуюсоль(3–5‰).Втечениевсеговремениперевозки необходимо осуществлять контроль за уровнем воды, ёе температурой и содержанием растворенного кислорода, который должен быть не менее 4 мг/л (допускаются только кратковременные понижения концентрации до 2 мг/л). Плотности посадки осетровых в различные ёмкости для транспортировки представлены в таблице 65.

Таблица 65: Плотности посадки осетровых при различных способах транспортировки.

223

Глава 12 Санитарно–профилактические мероприятия

12.1 Основные забОЛЕВАНИЯ оСЕТРОВЫХ рыб

Осетровые в природных условиях более резистентны к различным видам заболеваний,чемдругиевидырыб.Всвязисосложнымижизненнымициклами, обитанием в условиях различных водных сред (соленой, солоноватоводной, пресной) они подвержены лишь незначительному числу заболеваний. У осетровыхрыботмечены:грибковые,вирусные,бактериальные,инвазионные, алиментарные и экологические (т.е. связанные с несоответствием условий содержания экологическим требованиям осетровых) заболевания.

Большинство указанных заболеваний осетровых рыб аналогичны заболеваниям, которым подвержены другие виды рыб в аквакультуре (карповые, лососевые и т.д.) и не являются видоспецифичными. Для диагностики, профилактики и лечения таких заболеваний используют традиционные в ихтиопатологии методы.

Исключение составляют вирусные заболевания. В настоящее времяу осетровых выявлены четыре вида вирусов: Adenoviridae, Herpesviridae,

Iridoviridae и Papovairidae (Hedrick, LaPatra, 2001). Чаще всего у осетровых встречаютсявирусыHerpesviridae иIridoviridae,представляющиенаибольшую угрозу.

Наиболееизучениридовирусбелогоосетра(WSIV),являющийсянаиболее изученным вирусом из поражающих осетровых рыб. Этот вирус впервые отмечен у белого осетра (Acipenser transmontanus) в США (Калифорния), а впоследствии выявлен также у русского осетра (A. gueldenstaedtii) в Северной Европе. Эффективные методы лечения данного вирусного заболевания в настоящее время не разработаны (Hedrickand, LaPatra, 2001).

Сапролегниоз (вызываемый Saprolegnia) – наиболее часто наблюдаемое грибковое заболевание осетровых рыб. В первую очередь повреждаются мертвые и неоплодотворённые икринки, но если не проводить своевременную обработку,воздействиюподвергаетсяинормальноразвивающаясяикра.Кроме непосредственного поражения икры, сапролегниоз значительно ухудшает газовый режим в инкубационных аппаратах. Для профилактики и борьбы с сапролегниозом рекомендуется проводить обработку икры следующими органическими красителями и химическими препаратами:

•малахитовый зеленый концентрации 1 часть на 100000 частей воды (10 мг/л) при экспозиции 10 мин или 1:200000 (5 мг/л) при экспозиции

15 мин;

•метиленовый голубой 1:10000 и 1:20000 (100 мг/л и 50 мг/л) при экспозиции 1 час;

•фиолетовый “К” (C24H28N3Cl) 1:200000 (5 мг/л) при экспозиции 30 мин.

224

Следует отметить, что использование малахитового зелёного в товарном рыбоводстве не рекомендуется (он запрещен в ЕС и в некоторых других странах) в связи с выявленным канцерогенным и мутагенным эффектом. Однако при выращивании молоди осетровых для выпуска в естественные водоемы (не для пищевых целей) его использование допустимо. Обработка выполняется не менее двух раз на стадиях щелевидного бластопора (стадия 18) и на стадии прямой сердечной трубки (стадия 28). Для отбора мёртвой и поражённой грибком сапролегнией икры используют сифон из резинового шланга различного диаметра в зависимости от вида осетровых рыб.

Эффективен также способ пролонгированного действия в малых дозах препарата фиолетовый “К” с момента закладки икры на инкубацию до стадии вращения эмбрионов (стадии 33–34) при концентрации не превышающей 0,2 мг/л (Мамедов, 2000).При расходе воды в инкубационом аппарате 4,0 м3/ч, для поддержания концентрации 0,2–03 мг/л, препарат дозируют по 60–96 капель (7,5–12 мл/мин.) стандартного раствора 1,5 г/л.

Для предотвращения заболеваний при выращивании личинок и молоди необходимо следить за качеством воды, кормов и избегать стрессирующих факторов - повышенной плотности посадки и частых ручных манипуляций

(FAO, 2007; Arthur, Bondad-Reantaso and Subasinghe, 2008).

При выращивании молоди наиболее часто отмечаются поражение ее внешнимипаразитами(Trichodinidae,Diclybotrium,Nitzsсhia)ибактериальные заболевания. Большинство прочих паразитов и заболеваний могут ухудшать физиологическое состояние отдельных особей, но не приводят к массовой гибели рыб. В ряде случаев отмечается поражение икры внутриполостным паразитом Polypodium hydryformе.

12.2КлиническиепризнакинаибоЛЕЕРаспрОСТРАНЕННЫХ забоЛЕВАНИЙ

Клинические признаки наиболее распространенных заболеваний осетровых при выращивании в искусственных условиях приведены в Таблице 66.

225

Таблица 66: Клинические признаки основных заболеваний (изменённая Матишов, Пономарев и Пономарёва, 2007).

Для своевременной диагностики заболеваний и предотвращения массовогоразвитиязаболеванийнеобходимопроводитьрегулярныйконтроль. БурлаченкоиБычковой(2005)предложенодляудобстварегистрацииианализа внешних признаков клинического состояния осетровых рыб составлять специальные таблицы для рыб (отдельно по каждой выростной емкости: бассейну, лотку, садку, пруду) (Таблица 67). Интенсивность таких патологий как повреждение жучек, поражение жабр эктопаразитами предложено оценивать по 4-бальной шкале (III – максимальная степень поражения). Для оценки показателей, характеризующих более узкий диапазон патологических

226

изменений (таких как снижение секреции слизи, воспаление и потемнение жабр) рекомендуется применять 3-бальную шкалу (0–II).

Таблица 67: Внешние клинические признаки некоторых заболеваний осетровых рыб и оценка степени их проявления (в баллах) (Бурлаченко и Бычкова, 2005).

1 - окраска жабр (светлая или темная) может быть отличительным клиническим показателем при некоторых заболеваниях.

12.3 Методы лечения и профилактики

Лечение и профилактику заболеваний осетровых проводят одним из следующих способов:

•перорально – препарат смешивается с кормом непосредственно перед кормлением, либо используются специальные лечебные (профилактические) корма. Недопустимо долговременное (более шести часов) хранение самостоятельно приготовленных лечебных кормов.

•ванны–препаратрастворяютвводевспециальныхбассейнахиливтех же емкостях, где содержится рыба. При проведении ванн необходимо контролировать концентрацию препарата в воде, температурный и кислородныйрежимистрогособлюдатьвремяэкспозиции.Впроцессе обработкиведутнепрерывныйконтрользасостояниемрыбы.Вслучае

227

резкого ухудшения состояния рыб обработку прекращают, а рыбу переводят в емкости с чистой водой и повышенным водообменом.

•внутримышечные инъекции – препарат вводят непосредственно в тело рыб.

12.4ПрепарАТЫ, применяемые для лечения оСЕТРОВЫХ

Перечень лечебных и профилактических препаратов, применяемых при различных заболеваниях молоди осетровых приведен в Таблице 68.

Таблица 68: Перечень лечебных и профилактических препаратов, применяемых при различных заболеваниях молоди осетровых (изменённая

Hochleithner and Gessner, 1999).

12.5 Использование антибиотикОВ

Использование антибиотиков допускается только для лечения заболеваний бактериальной природы у рыб, содержащихся в ремонтно-маточных стадах. Применениетакихпрепаратовдлялечениямолоди,выпускаемойвестественные водоемы не рекомендуется. Лечение антибиотиками должно обязательно сопровождаться восстановительной терапией с применением пробиотиков, на основе бактериальных препаратов, содержащих, например, культуру субтилис Bacillus subtilis и В.licheniformis из расчёта 100 доз на 1 кг. в течение 5–10 суток (1 доза эквивалентна 700 млрд. спор), Bifidobacterium globosum из расчёта 1 доза на кг в течение 10 суток (1 доза = 1 миллион бактериальных клеток) и др. (Бурлаченко и Бычкова, 2005). Для восстановительной терапии

228

используют специально приготовленные корма, содержащие бактериальный препарат. Продолжительность восстановительного курса должна быть не менее 14 дней. Кроме того, для повышения иммунного статуса целесообразно вводить в рацион комплекс жирорастворимых витаминов AD3E (150 мг/кг в течение 5 суток) и витамин С (1 г на кг корма 7–10 суток) для снижения последствий стресса. Помимо ежедневного контроля на предприятиях должен осуществляться комплекс профилактических мероприятий в соответствии с рекомендациями ФАО (Arthur, Bondad-Reantaso and Subasinghe, 2008).

Для профилактики и лечения болезней в осетроводстве используются общепринятыеваквакультуреметодыиприёмы(КазарниковаиШестаковская, 2005; ФАО, 2007). Поэтому в данном разделе эти вопросы, за исключением некоторых наиболее важных аспектов рассматриваются кратко. Кроме того, некоторые разрабатываемые авторами, новые методы УЗИ ранней неинвазивной прижизненной диагностики аномалий воспроизводительной системы рассмотрены в данном руководстве (см. Главу 14).

229

Глава 13.

Мечение

13.1 ТребОВАНИЯ к мечению

В зависимости от целей, вида и размера рыбы применяют следующие типы меток:

•внутренние метки: ПИТ-метки, магнитные кодируемые проволочные микрометки (CWT), химические вещества (окситетрациклин), подкожно введенные органические красители, латексы;

•наружные метки: клипсы для крупного рогатого скота (КРС) (Рисунок 126 А), скобки (Рисунок 126 Б), якорные метки;

•мечение красителями (например, неоновыми) и татуировками (клеймение) (Рисунок 126 В);

•мечение путем усечения части плавников или жучек.

Мечениерыбявляетсянеобходимымэлементоммногихпроизводственных процессов, включая: заготовку производителей, отбор рыб для нерестовой компании, племенную работу с ремонтно-маточным стадом, определение жизнестойкости, оптимального размера и возраста выпускаемой молоди, идентификация мест выпуска и т.д.

В каждом из перечисленных случаев, оборудование для мечения и способ введения метки должны обеспечивать соблюдение следующих требований:

•сохранность меток в течение необходимого периода времени (в некоторых случаях до конца жизни рыб);

•высокая скорость мечения;

•легкостьобнаруженияметокврыбах,втомчислевполевых условиях;

•возможность передачи максимального объема необходимой информации;

•минимально возможная стоимость меток и оборудования для их прикрепления и обнаружения.