chebanov_m_s_galich_e_v_rukovodstvo_po_iskusstv
.pdf
151
Глава 7 Культивирование живых кормов 7.1 ВВЕДЕНИЕ
Детальное описание производства и использования живых кормов в аквакультуре было дано Лавенсом и Соргелосом (Lavens and Sorgeloos, 1996). Традиционные методы культивирования живых кормов, используемых на осетровых рыбоводных заводах бассейнов Азовского и Каспийского морей, представлены ниже. Для производства живых кормов на осетровых заводах должны быть оборудованы специальные участки.
7.2 КультивировАНИЕ оЛИГОХЕТ(Enchytraeusalbidus)
Для выращивания олигохет необходимо специальное кондиционируемое помещениеспостояннойтемпературойвоздуха(16–20оС)втечениевсегогода, которое должно быть оборудовано водопроводом и канализацией и включать зал со стеллажами (Рисунок 98), а также комнату для отделения червей от грунта, холодильную камеру (для хранения продукции), кормокухню для приготовления питательных смесей.
Рисунок 98: Ящики для выращивания олигохет в специальном цехе.
Выращивание червей (Enchytraeus albidus) производят в деревянных ящикахразмером0,5×0,4×0,12м.Вкачествесубстратаиспользуютпросеянную через 3–5 мм сито и смешанную с перегноем мягкую структурированную почву (например, садовую землю), влажность которой необходимо поддерживать на уровне 22–26%, а рН– на уровне 6,2–6,8. Норма загрузки маточной культуры – 0,2–0,25 кг/м2(40–50 г на ящик) с глубиной грунта 3-4 см. Оптимальная температура для роста, развития и размножения червей составляет 16–18 оС. При этой температуре развитие яиц продолжается 7 сут.,
152
затем вылупляется молодь, которая через 4 сут. выходит из кокона и начинает экзогенное питание. На 21–23-й день черви становятся половозрелыми и достигают массы 6–9 мг. На осетровых рыбоводных заводах кормление культуры производят кормосмесями из отходов мучного производства, картофеля, свеклы, капусты и других богатых углеводами овощей, отрубей, кормовых дрожжей, растительного сырья. Смесь варят и пропускают через измельчитель. Вносят кормосмеси в виде жидкого пюре или теста. Кормовые дрожжи вносят в виде раствора (1 кг дрожжей на 4 л воды). Кормят один раз в неделю, закладывая корма в бороздки, глубиной 4–6 см и засыпая их землей. Норму внесения корма рассчитывают по приросту биомассы червей и кормовым коэффициентам. Кормовой коэффициент овощей составляет 6, мучных отходов – 4,5, кормовых дрожжей – 1. Для кормления олигохет рекомендуется применять следующий кормовой рацион: овощи – 60%, мучные отходы – 20%, кормовые дрожжи – 20%. В первый месяц разведения олигохет прирост их биомассы увеличивается по сравнению с начальной массой в 2 раза, в последующие – в 5 раз. Оптимальная плотность червей 750 г/м2, максимальная – 1500 г/м2. Съем продукции производят при достижении биомассы 750 г/м2, что позволяет еженедельно отбирать 400 г червей с 1 м2.
Для отбора червей кюветы с землей помещают под яркий свет и тепло от ламп накаливания. Уходя от света, черви скапливаются на дне кюветы, откуда их собирают, убирая землю. Средняя продукция олигохет составляет 420 г/ м2 в неделю. Оставшуюся после отбора червей землю, содержащую большое количество коконов с яйцами, высыпают обратно в те же ящики, из которых она была взята.
Вместе с тем, в последнее десятилетие для кормления олигохет на осетровых заводах используют искусственные сухие корма. Так, Мемиш, Челиккале и Эркан (Memiş, Çelikkale and Ercan, 2004) провели эксперимент с использованием пяти различных рационов, четыре из которых содержали углеводы, овощи, фрукты, гранулированный форелевый корм, а пятый представлял комбинацию первых четырёх вариантов. Наибольший прирост биомассы и лучшие репродукивные показатели олигохет были отмечены при использовании форелевого гранулированного корма.
7.3 КультивировАНИЕ ветвистоУСЫХ раЧКОВ (Dafnia, Moina)
7.3.1 Общие требования
Для использования в качестве живого корма выращивают дафний и моин
(Dafniamagna, D. pulex, Moinarectirostris, M. macrocopa), отличающихся высокими скоростью роста, плодовитостью и выживаемостью. При этом, в связи с малыми размерами (личинки 0,2–0,4 мм, взрослые 1,5 мм), моины являются наиболее пригодным кормом для кормления личинок в первые дни после перехода на экзогенное питание. Основой биотехники культивирования ветвистоусых является создание благоприятных условий в отдельном несменяемом объеме воды (Богатова, Тагирова и Овчинникова, 1975). Для этой цели подходят любые бетонные (12×3–4 м) либо пластиковые бассейны или лотки объемом не менее 2 м3 и глубиной не более 50–60 см, размещенные,
153
в зависимости от климатических условий на открытом, хорошо освещаемом солнцем месте или в помещении (Рисунок 99).
Рисунок 99: Бетонные бассейны для культивирования ветвистоусых (дафний и моин).
Перед внесением маточной культуры в бассейны вносят минеральные удобрения из расчета 37,5 г/м3 аммиачной селитры или 65 г/м3 сульфата аммония. Для обеспечения быстрого развития рачков в бассейны вносят дополнительный корм. Суточная норма питательных веществ: хлорелла – 200 млн. клеток/м3; пекарские дрожжи из расчета 10–15 г/м3 в виде суспензии (2 л/м3 воды); конский навоз – 0,8–1,5 кг/м3, аммиачная селитра – 18,75 г/ м3, сульфат аммония – 32,5 г/м3. Питательные вещества вносятся вдоль стенок бассейнов ежедневно или раз в 8–10 дней. Интенсивность развития протококковых водорослей, являющихся основным кормом ветвистоусых, контролируют визуально по цвету воды. Ярко-зеленая непрозрачная вода цвет соответствует максимальной плотности водорослей. При достижении этого показателя внесение удобрений временно прекращают. Повышение прозрачностисвидетельствуетобугнетениикормовойбазыислужитсигналом к возобновлению внесения удобрений.
7.3.2. Условия культивирования
Скорость созревания дафнии в значительной мере зависит от внесенной маточной культуры. При плотности посадки 10 г/м3 культура достигает максимума через 15 суток, при 100 г/м3 – через 10 суток. При этом расход сухих дрожжей на выращивание 1 кг ветвистоусых составляет 200–300 г. При необходимости быстрого получения живого корма, период созревания может быть значительно сокращен за счет повышенных норм внесения маточной культуры (Таблица 39). Оптимальные условия культивирования: степень жесткости (odH) - 6–18°, рН - 7,2–8,0, температура - 20–24°С (Daphnia), 24– 30°С (Moina), окисляемость – не выше 50–70 мг О2/л, углекислота – не более
10 мг/л.
154
Таблица 39: Объем внесения маточной культуры Daphnia для получения урожая 0,2–1,0 кг живой Daphniaв сутки при выращивании в бассейнах (Аскеров и Сидоров, 1964).
|
Продолжительность |
Маточная культура Daphnia (кг/м3) |
культивирования до первого |
|
урожая, дни |
0,5 |
10–12 |
1 |
8 |
2 |
5–6 |
3 |
3–4 |
Показателем созревания культуры можно считать наличие в бассейнах 50% взрослых особей дафний и 50% ее молоди. В этом случае можно ежедневно снимать прирост продукции в количестве 30–35 г/м3.
7.3.3 Повышение пищевой ценности Daphnia magna
Рачков отцеживают с помощью сачков из мелкого сита и сразу скармливают или замораживают; при этом питательность кормов почти полностью сохраняется.
Для повышения пищевой ценности D. magna используют метод биоинкапсуляции бактериями (Saccharomyces cerevisiae) (Jafaryan, Alimohamady and Makhodomi, 2009). Так, перед использованием в кормлении личинок персидского осетра (A. persicus)D. magna выдерживали в течение 10 часов в бактериальной суспензии S. cerevisiae. Наиболее высокие темпы роста личинок персидского осетра были получены при использовании суспензии с концентрацией 108,48 (КОЕ/л).
7.4 КультивировАНИЕArtemiasalina 7.4.1 Инкубация цист артемии
Для инкубации цист артемии Artemia используют прозрачные конусовидные сосуды емкостью от 40 до 300 л. Высокое содержание кислорода и перемешивание яиц в аппарате осуществляется аэрацией воды с помощью компрессора, распылители которого устанавливаются в донной части аппарата. Над аппаратами обеспечивается постоянное интенсивное (2000 лк) искусственное освещение. Для инкубации активированные яйца артемии помещают в 4–5% раствор поваренной соли (NaCl). Плотность закладки яиц зависит от их качества и размера и составляет, в среднем – 4–5 г/л. В инкубационном аппарате необходимо поддерживать температуру 27– 29°С, рН – 7,5 – 8,5. При этих условиях выклев науплий происходит через 24–30 часов после закладки яиц (Литвиненко и др., 2000). По завершению инкубации на 15 минут выключается свет и компрессор. В результате этого оболочки всплывают вверх, а науплии концентрируются в нижней части аппарата. После этого через сливной кран сначала сливаются мертвые и непроклюнувшиеся цисты (скапливающиеся в нижней конической части), а затем в мешок из газ-сита (114 мкм) сливают науплий. Полученных науплий
155
либо сразу скармливают, либо помещают в бассейны с 3–5% раствором соли для дальнейшего подращивания или замораживают (Литвиненко и др., 2000).
7.4.2 Биоинкапсуляция науплий артемии
Для снижения коэффициента конверсии корма и, соответственно, увеличения выживаемости, темпов роста личинок и их устойчивости к стрессу рекомендуется использовать метод биоинкапсуляции - обогащение науплий Artemia ω-3 высоконенасыщенными жирными кислотами(Lavens and Sorgeloos, 1996; Noori, Azari Takami and Sorgeloos, 2002; Hafezieh et al., 2009) (Рисунок100).
Рисунок 100: Схема обогащения (биоинкапсуляция) науплий артемии (изменённая Çiftci et al., 2002). (NF - раствор фуразолидона, 3 мг/л).
Дляповышениятемповростаикачестваличинокосетровыхтакжеиспользуют способ биоинкапсуляции науплий Artemia пробиотиками. Науплии Artemia перед использованием в кормлении личинок осетровых выдерживаются в течение 10 часов в бактериальной суспензии (Bacilluslicheniformis, B. subtillis, B. polymixa, B. laterosporus, B. circulans - коммерческое название
“Protexinaquatic”). Наилучшие результаты при кормлении личинок шипа А. nudiventris биоинкапсулированными науплиями Artemiaurmiana были получены с использованием концентраций бактериальной суспензии 3×105 бактерий/мл(КОЕ/мл).
7.4.3 Выращивание артемии в бассейнах
Разводить,выращиватьартемиюможновтакихженефильтрующихбассейнах, какие применяются для разведения ветвистоусых рачков, но изготовленных из солеустойчивого бетона или пластика. Для этого в бассейнах создают соленость от 40–50‰ и запускают взрослых артемий А. salina (10 г на м3) или вносят яйца артемии из расчета 500–600 г/м3. В природе главная пища
156
рачковА. salina – микроводоросль Dunaliella salina, а также бактерии грунта и органические остатки. Для развития протококковых водорослей в бассейн вносят культуру Chlorella (1 млн. клеток на 1 мл) и растворенные в воде соли (из расчета 0,1 кг/м3глауберовой соли (сернокислого натрия), 0,05 кг/м3 азотнокислого калия и 0,05 кг/м3 суперфосфата).
В качестве корма для Artemia можно использовать кормовые дрожжи, которыевносятврастворенномвидеповсейплощадибассейнаизрасчета0,01 кг/м3. Начиная с третьего дня после вылупления науплий кормовые дрожжи вносят 1 раз в 5 суток из расчета 20 г/м3. Когда рачки Artemia становятся половозрелыми, частоту кормления увеличивают до 1 раза в 3 суток, а при их массовом размножении кормовую норму повышают до 35 г/м3. Оценивать условия содержания Artemia и обеспеченность её кормом можно визуально по поведению рачков. Равномерное распределение артемий в толще воды указываетнанормальныеусловиясреды,ихскоплениеуднаистенокбассейна характеризует недостаточность кормовой базы. Концентрация рачков у поверхности воды и их замедленные движения свидетельствуют о дефиците кислорода. Отлов артемий начинают, когда в бассейне на одну половозрелую особь приходится не менее десяти неполовозрелых рачков. В этом случае допустимая норма изъятия культуры составляет 1/3–1/2 всей биомассы или 100–120 г/м3. Для получения устойчивого выхода продукции необходимо поддерживать в бассейнах стабильную концентрацию поваренной соли и содержание растворенного в воде кислорода (на уровне не менее 4 мг/л), способствующие выклеву науплий. По окончании рыбоводного сезона яйца артемии можно оставлять в бассейнах на зиму.
7.5 КультивировАНИЕ краСНОГО калифорнийскОГО червя
(Eiseniafoetida)
Калифорнийский червь (Eisenia foetida) эффективно используется для кормления молоди (Лабенец и Никоноров, 1999). Для культивирования червей можно использовать лотки высотой 0,2–0,3 м, которые обычно устанавливаются на стеллажах (Рисунок101).
Рисунок 101: Участок выращивания калифорнийского червя (осетровый завод, Атырау, Казахстан).
157
Субстраты для культивирования червей готовят из ферментированного навоза, садовой земли, резаной соломы или других целлюлозосодержащих материалов. После этого субстрат увлажняется и заселяется червями с плотностью 5000 особей на 1 м2. Культивирование проводится при рН 6,5– 7,5, влажности 75–80%, температуре 22–23оС. После заселения червей лотки с субстратом покрываются соломенными или камышовыми циновками для поддержания влажности почвы.
Для удержания червей в субстрате необходим источник УФ-излучения. Для этого в теплице устанавливаются ртутные лампы. Субстрат необходимо регулярно увлажнять. По мере оседания (за счет поедания органики червями) субстрат по необходимости, дополняется до уровня бортов лотков. Цикл культивирования длится 90–120 суток. За это время количество червей возрастает до 30 000–40 000 особей на 1 м2, биомасса достигает 9–12 кг/ м2. За два цикла культивирования в год биомасса составляет 18–25 кг/м2.По завершении цикла культивирования субстрат с червями подсушивается до 50– 60% влажности и проводится разделение субстрата и червей. Измельчённые черви могут также скармливаться рыбам в сухом или вареном виде.
159
Глава 8
Биотехнология промышленного воспроизводства осетровых рыб на основе управления сезоннностью размножения мигрантов различных сроков нерестового хода
8.1 Введение
Изменение водного режима нерестовых рек и переход на преимущественно искусственное воспроизводство вызывают значительные изменения видовой и внутрипопуляционной структуры нерестовых стад осетровых, что отрицательно сказывается на генетическом разнообразии. Поскольку запасы осетровых рыб определяются результатами искусственного воспроизводства, его биотехнология должна быть ориентирована на формирование популяций с восстановлением их природной разнокачественности (Баранникова, 1970, 1979). Утрата природной гетерогенности обусловлена ориентацией промышленного осетроводства только на «валовый» выпуск молоди. Такой подход подразумевает использование для воспроизводства наиболее зрелой части стада осетровых рыб (первой половины нерестового хода) и приводит к уменьшению экологической и эволюционной пластичности вида (Казанский, 1975; Баранникова, 1975).
При традиционной технологии получение половых продуктов от производителей ограничено короткими сроками анадромной миграции и физиологическим состоянием, не позволяющим рыбам длительно сохранять состояние функциональной зрелости. Опыт эксплуатации цехов длительного выдерживания производителей (ЦДВП) при низких температурах в дельте р. Волга в течение нескольких лет (Казанский и Молодцов, 1974) показал возможность смещения полового цикла в пределах трех месяцев для ранних «яровых» (весенних) производителей русского осетра каспийской популяции путем выдерживания в IV завершенной стадии зрелости. Методика, разработанная в ходе экспериментов, не обеспечивала устойчивый рыбоводный эффект в процессе перевода рыб в нерестовое состояние. Кроме того, биологическое состояние нерестовой части популяции значительно трансформировалось при изменении экологических условий миграции. Поэтому ЦДВП при низких температурах не эксплуатировали, несмотря на особую актуальность перехода на новую биотехнику всех осетровых заводов бассейна Азовского моря.
Развитие и сочетание различных методов эколого-гормонального управления сезонностью размножения (севрюги, русского осетра, белуги и стерляди) позволило в производственных масштабах (с использованием ЦДВП при низких температурах) (Рисунок 102) осуществлять сдвиг полового цикла мигрантов различных сроков нерестового хода и выращенных производителей на ранние (до 5 месяцев) и более поздние (до 6 месяцев) сроки (Чебанов, 1996а; Chebanov, 1997) и существенно повысить эффективность использования производителей, особенно летненерестящейся севрюги.