Добавил:
batzfo@yandex.ru Обучающиеся по заочной форме выполняют контрольные и курсовые работы(КР) по методическим рекомендациям(МР) соответствующего предмета, выполненные КР высылают на электронную почту заочного отделения техникума(batzfo@yandex.ru) Выставлены методические рекомендации для выполнения курсовой работы по ПМ 03 срок выполнения ДО 01.05.2021 года. Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

chebanov_m_s_galich_e_v_rukovodstvo_po_iskusstv

.pdf
Скачиваний:
299
Добавлен:
21.12.2019
Размер:
7.14 Mб
Скачать

180

Несмотря на информативную ценность, традиционные физиологобиохимические показатели, представленные в таблице 45, к сожалению, не могутширокоиспользоватьсявпрограммахмониторингакачествамолодидля оптимизации управления искусственным воспроизводством. Это ограничение вызвано тем, что используемые методы биохимического и гематологического анализа не являются экспресс-методами и не соответствуют изложенным выше основным требованиям прижизненной полифункциональной оценки фитнес-показателеймолодиосетровых,например,исключенияеётравматизма и гибели.

9.7ОценкаадаптАЦИОННЫХкачествмолоДИпореакциям центральной нервной системы

Тест«открытоеполе»(Рисунок108),разработанныйдляоценкиадаптационных качеств молоди по реакциям центральной нервной системы (ЦНС), позволяет оценитьуровеньдвигательнойактивностимолоди,еёреактивностьнавнешние стимулы (зрительные, тактильные, гидродинамические), её пригодность для выживания в естественной среде (Тихомиров и Хабумугиша, 1997). При проведении опыта определяют остроту реакции молоди из тестируемой выборки на различные раздражители (свет и звук разной частоты). Для этого молодь помещают в круглый аквариум (диаметром 1 м), дно которого разделено на восемь секторов, и регистрируют количество пересечений рыбой линий дна за определенный период времени. Хронологическая схема проведения опытов приведена в Таблице 46.

Рисунок 108: Тест «открытое поле».

181

Таблица 46: Хронологическая схема проведения теста «открытое поле».

Время, мин

Раздражающие элементы (стрессоры)

1–3

Адаптация рыбы в новых условиях (экспериментальные емкости)

3–5

Постадаптационный период

 

Воздействие звуком низкой частоты

5–7

Наблюдение за реакцией на звук

 

Воздействие звуком высокой частоты

7–9

Наблюдение за реакцией на звук

 

Воздействие постоянным светом

 

 

9–11

Наблюдение за реакцией на свет

 

 

 

Воздействие кратковременными вспышками света

 

 

11–13

Наблюдение за реакцией на свет

Адаптация рыбы к новым условиям занимает около 3 мин, в течение которых определяют ориентировочную двигательную активность (ОА, ед/ мин) путем подсчета среднего количества пересеченных рыбой линий. После того как двигательная активность рыб становится относительно постоянной, рассчитывают усредненное количество пересечений линий дна и принимают это значение за фоновую активность (ФА, ед/мин). После воздействия раздражающим элементом определяют реактивность (РА, ед/ мин) – среднее количество пересечений за следующие 30 сек. При этом у молоди может наблюдаться как положительная, так и отрицательная реакция на внешние раздражители. На основе полученных абсолютных характеристик рассчитываются относительные показатели (ОА и РА), позволяющие оценить степень двигательной активности молоди осетровых под действием сильных сенсорных стимулов:

ПА% = ОА/ФА×100%

ПР% = РА/ФА×100%,

гдеПА%–показательактивации;ОА(ед/мин)–ориентировочнаядвигательная активность; ФА (ед/мин) – фоновая двигательная активность; ПР – показатель реактивности; РА(ед/мин) – реактивность.

В качестве примера в Таблице 47 приведены данные сравнительного анализапоказателейдвигательнойактивностивтесте«открытоеполе»молоди севрюги, полученнойот одомашненной формы и диких производителей, заготовленных в Азовском море (Чeбанов, Галич и Меркулов, 2008).

Таблица47:Показателидвигательнойактивностимолодисеврюгиразличных групп.

Группа

ОА

ФА

ПА

Пр1

Пр2

Пр3

Пр4

Дикая

34,5

13,2

261,3

110,2

132,9

99,5

89,7

Одомашненная

39,7

19,7

201,5

88,9

71,3

57,5

42,9

182

Прмечание: ОА – Ориентировочная двигательная активность; ФА

– Фоновая двигательная активность; ПА – Показатель активации; Пр1 – Показатель реактивности в первые 30 сек после воздействия низкочастотным звуком; Пр2 – Показатель реактивности в первые 30 сек после воздействия высокочастотным звуком; Пр3 – Показатель реактивности в первые 30 сек после воздействия постоянным светом; Пр4 – Показатель реактивности в первые 30 сек после воздействия кратковременными вспышками света.

Оценку пригодности заводской молоди осетровых к выживанию в естественных водоёмах путём использования теста «открытое поле» и определение плавательной способности посредством её сортировки в гидродинамических лотках с регулируемой скоростью течения в условиях осетровых заводов более эффективно осуществлять в специализированной установке «Ихтиотест» (Никаноров и Витвицкая, 1993; Тихомиров и Хабумугиша, 1997).

9.8 НейрО-фАРМАКОЛОГИЧЕСКОЕ тестирОВАНИЕ

Нейрофармакологическое тестирование молоди, основанное на оценке

устойчивости молоди к стрессирующим абиотическим воздействиям,

так

же является способом прижизненной экспресс-оценки (менее 30

мин)

жизнестойкости рыб (Никоноров и Витвицкая, 1993). Значительным

преимуществом метода является техническая простота применения, позволяющая осуществить нейрофармакологическую оценку в производственных масштабах при выпуске молоди в естественные водоёмы или отборе рыб в ремонтную часть стада. Более устойчивая к нейротропным препаратаммолодьотличаетсяповышеннойжизнестойкостьюиустойчивостью к экстремальным значениям температуры и солености, дефициту кислорода, сенсорным воздействиям и обладает более рациональным уровнем обмена веществ. Методика основана на определении продолжительности действия раствора анестетика, вызывающего устойчивую наркотизацию рыб, выражающуйюся в утрате равновесия и прекращении движений хвостового стебля.

Анализ внешней картины влияния наркоза на поведение молоди позволяет выделить три основные стадии:

повышение двигательной активности с последующим нарушением координации движения;

подавление фоновой активности рыб, потеря рефлекса равновесия;

выключение внешнего дыхания и обездвиживание рыб.

Восстановление жизнедеятельности наркотизированных рыб, при помещении их в чистую воду, происходит в обратной последовательности. Следует отметить,чтосуществуютвидовыеразличияреакциимолодиосетровыхрыбс разной массой на воздействие нейрофармакологического препарата (Таблица

48) (Галич, 2000b).

183

Таблица 48: Динамика обездвиживания при наркотизации МS-222 с концентрацией 50 мг/л и возвращения двигательной активности молоди осетровых рыб (% от общего числа).

 

 

Время наркотизации, мин

 

 

Время реанимации в

 

Виды рыб

 

 

 

 

 

 

 

 

 

чистой воде, мин

 

 

5

 

10

15

20

25

 

30

1

2

3

4

5

6

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Севрюга

10

 

60

80

80

 

40

60

70

100

(крупная)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Севрюга

20

 

20

20

80

80

 

80

40

50

100

(мелкая)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Осетр

 

30

30

60

70

 

70

30

40

40

40

80

80

персидский

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Осетр

 

30

40

40

70

 

70

30

40

40

50

80

100

русский

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Для экспресс-анализа могут быть также использованы и другие нейрофармакологические препараты: хинальдин (2-метилхинолин), гвоздичное масло, гидрохлорид хинолина и др. (Никоноров и Витвицкая, 1993).

Нейрофармакологическое тестирование молоди по реакции на воздействие нейротропных веществ проводится при различных концентрациях (50 и 75 мг/л) анестетика MS-222 (трикаинметансульфоната). Время экспозиции зависит от концентрации MS-222. При проведении процедуры проводится мониторинг двигательной активности, числа наркотизированных особей и скорости их восстановления в чистой воде (Галич, 2000б; Galich and Chebanov, 2009).

Чувствительность молоди различных видов осетровых рыб к абиотическимстрессорам(высокойтемпературеводы(32oC),солёности(12‰), дефицитукислорода)достаточнотеснокоррелируетсихчувствительностьюк анестетикам(Лукьяненко,КасимовиКокоза,1984).Этопозволяетиспользовать время наркотизации отдельных особей в качестве интегрального показателя жизнеспособности рыб. Вместе с тем, данный метод является прижизненным в отличие от летального метода функциональных нагрузок.

9.9 Флуктуирующая асимметрия как стаТИСТИЧЕСКИЙ показаТЕЛьизменчивоСТИ молоДИ и воздействия экоЛОГИЧЕСКИХ стрессорОВ

Флуктуирующая асимметрия (ФА) (случайные отклонения от идеальной билатеральнойсимметрии)сталапопулярнымметодомоценкинестабильности развития, которая связана с неспособностью организма продуцировать нормальныйфенотипвсвязисгенетическимииэкологическиминарушениями в период онтогенеза (Palmer and Strobeck, 2003; Lemberget and MсCormic, 2009).

184

ОценкастабильностиразвитиямолодиосетровыхрыбпопараметрамФА является одним из элементов программы мониторинга молоди на осетровых заводах. Оценка данного параметра – эффективный нетравматичный способ через проявление внутрииндивидуальной изменчивости выявить возможное снижение гетерозиготности формируемой популяции, а также наличие экологических факторов стресса (Valentine, Soule and Samollow, 1973; Whitlock, 1998; Leung, Forbes and Houle, 2000; Lajus, Graham and Kozhara, 2003). Ввиду стохастической природы данного явления, его анализ возможен только на индивидуальном уровне – уровне групп особей.

ФА часто используется для оценки качества рыб, а также их фитнес- (адаптивных) характеристик (Clarke, 1995), однако корреляция между ФА и фитнес-характеристиками представляется более сложной (Lens et al., 2002).

Для оценки ФА осетровых, как правило, используют следующие билатеральныемеристическиепризнаки:числобоковыхжучексправаислева, число тычинок на первой жаберной дуге, число лучей в грудных плавниках справа и слева и число лучей в брюшных плавниках справа и слева.

Формула для расчета флуктуирующей асимметрии (Md):

Где,d – разности между значениями признака на левой l и правой r сторонах тела у отдельной особи, n – число особей в выборке.

В качестве показателя ФА используется дисперсия ФА (σ2), которая определяется по формуле:

Достоверность различий дисперсий ФА определяется по величине F – критерия Фишера, а средних значений признаков – по величине tst критерия Стьюдента (Плохинский, 1970).

Использование в исследованиях ФА только одного признака не позволяет делать надежные выводы, поэтому предпочтительно использование нескольких признаков. При этом, каждый дополнительный признак добавляет одну степень свободы к оценке уровня нестабильности развития (Palmer and Strobeck, 2003).

Для анализа ФА нескольких признаков, особенно для разноразмерных признаков, необходимо осуществлять нормирование.

Обычно нормирование производится следующим образом (Захаров и Кларк, 1993):

185

Другой метод нормирования был предложен Леунгом, Форбсом и Хоули

(Leung, Forbes and Houle, 2000):

гдеavg|Lij-Rij|означаетусреднениеповсемвыборкам,рассматриваемым в исследовании. В результате применения такой нормировки значения асимметрии оказываются распределены вокруг единицы.

Полученные оценки дисперсии σ2 для каждой партии заводской молоди различных видов следует использовать для сравнения со значениямиσ2 диких особей, в некоторых случаях полученными в предшествующие периоды исследований. Например, подобные оценки σ2 ФА азовских осетровых имеются в работе Дехта (1996), Дехта и Цветненко(1996).

Обычно показатель ФА для заводской молоди различных видов рыб выше, чем для образцов диких рыб (Романов, 2001; Eriksen et al., 2008; Lajus et al., 2009). Среди основных причин, приводящих к повышению уровня ФА заводской молоди, обычно отмечаются высокие плотности посадки, низкое качество воды и генетические изменения, вызванные направленным отбором. Адаптация к условиям осетрового завода, даже когда множество других факторов, таких как качество воды, плотность посадки, гетерозиготность и температура, находятся под контролем, также может приводить к повышению асимметрии (Vøllestad and Hindar, 1997). Естественный отбор против асимметричных особей в природных условиях, и, вследствие этого, снижение уровня ФА в природных популяциях, также считается важным фактором, определяющим значения этого показателя (Казаков и Титов, 1998).

187

Глава 10 Выпуск молоди в естественные водоемы 10.1 Введение

Длительный период нереста, сезонные формы (экотипы) нерестовых мигрантов, продолжительный скат молоди в море являются важными экологическими особенностями осетровых рыб. В естественных речных условиях (до зарегулирования рек) разновозрастная и разноразмерная молодь различныхсезонныхформ(озимых,яровых,летне-нерестящихся)скатывалась в приустьевую часть рек и в море в различные сезоны, что снижало пищевую конкуренцию и оптимизировало использование кормовых ресурсов.

Исследования сезонной динамики кормовых организмов в реке, эстуарии и устьевой области, а также наблюдения за выживаемостью и ростом молоди различных видов осетровых позволили предложить новую стратегию выпуска осетровых. Новый подход включает оптимизацию этого процесса на основе экологических особенностей видов, управлении сезонностью воспроизводства, выпуска разноразмерной и разновозрастной молоди в зависимости от сезона выпуска и водности года (Chebanov, 1996c; Chebanov and Savelyeva, 1999; Chebanov et al., 2002). Поэтому растянутый во времени выпуск разноразмерной и разновозрастной молоди будет способствовать не только повышению выживаемости выпускаемой молоди, но и сохранению биоразнообразия формируемых популяций и рациональному использованию кормовых организмов в реках, их устьях, и в прибрежной зоне моря

(Chebanov, 1998; Chebanov and Billard, 2001).Выпуск рыбоводной продукции производится при положительном заключении об её ихтиопатологическом состоянии (FAO, 2007).

10.2МетОДЫучетавыпускаемойрыбовоДНОЙпроДУКЦИИ

Определение количества молоди, выпускаемой осетровыми заводами, производитсясплошным(весовым,объемным,поштучным)ибонитировочным методами. Конкретный метод учета молоди выбирают в соответствии с особенностями осетрового завода.

10.2.1 Сплошной учет

Вся выпускаемая молодь измеряется объемно, взвешивается или просчитывается поштучно. Учет молоди производится с помощью мерной емкости (не менее 0,5 литра). Каждая десятая по счету объемная мерка просчитывается, определяется средняя арифметическая величина количества молоди в мерке, по среднеарифметической производится подсчет общего количества выпущенной молоди.

10.2.2 Бонитировочный учет

Учет производится перед выпуском молоди. В выростном пруду устанавливаются зоны учета. Пробы отбираются с помощью орудий лова (бим-трал или мальковый невод с размахом «крыльев» 20–25 м), для которых

188

обычно определяют коэффициент уловистости (как правило, коэффициент принимают равным 0,5). Сбор проб производят одновременно или в течение нескольких очень коротких периодов. На основе анализа отобранных проб, с учетом коэффициента уловистости орудий лова, рассчитывают общее количество молоди в водоеме (N):

N nSks

где n – количество молоди в улове, шт.; S – площадь водоема, м2; s – площадь обловленного участка, м2; k - коэффициент уловистости орудия лова (Кушнаренко, 1971).

Обычно коэффициент уловистости малькового трала принимают равным 0,5. Кроме того, существует прямая зависимость между массой молоди и коэффициентом уловистости, который значительно увеличивается при достижении рыбой массы 0,4 г. Для более крупной молоди (весом более 10–12 г), коэффициент уловистости считают равным 0,8 (Кушнаренко, 1971).

При проведении бонитировочного учета в водоемах с молодью белуги укрупненной массы (5–7 г) коэффициент уловистости малькового трала принимают равным 0,25–0,3. При этом он зависит от плотности посадки и возрастает до 0,58 при ее увеличении до 1500 шт./м2 (Крупий, Григорьев и Отпущенникова, 2005).

10.3 Выпуск моЛОДИ из прУДОВ

Сброс воды из прудов осуществляется через специальные рыбоуловители, из которых, по мере накопления, молодь переносят в садки или непосредственно

вживорыбный транспорт. Следует отметить, что выдерживание молоди

всадках (или огороженной аэрируемой части прудов) перед выпуском в естественные водоемы в течение 1–1,5 суток благоприятно влияет на ее адаптивные способности, поскольку скорость плавания молоди, голодавшей

втечение 1–2 суток значительно выше, чем сытой, что может способствовать поиску кормовых площадей и повышению её выживаемости, после выпуска в естественные водоемы.

10.4 ВыбОР оптимальных мест выпуска моЛОДИ

Выпускмолодиосуществляетсявзаранеевыбранныеместа,соответствующие биологическим потребностям выпускаемого вида осетровых (Рисунок 109). Основными критериями при выборе мест выпуска осетровых являются: обеспеченность пищей в соответствии с количеством выпускаемой молоди и ее доступность; состояние дна (плотные, песчаные, слабозаиленные грунты) во избежание скопления молоди на ограниченных участках.

189

Рисунок 109: Выпуск молоди осетровых в прибрежную часть моря.

Выпуск молоди в реки или приустьевые участки моря должен быть рассредоточенпоплощадиивовремени,сучетомразмеровосновныхкормовых организмов, отсутствия большого числа хищников, вредителей молоди и подводной растительности. Перед выпуском молоди необходимо оценить соответствие ключевых гидрохимических показателей (температурный режим, рН, содержание кислорода и токсических веществ) видовым требованиям. В местах выпуска молоди должна отсутствовать термическая и солевая стратификация, снижающая скорость расселения, что может привести клокализацииплощадинагулаиповышениюпрессахищников,отрицательно сказаться нафизиологическомсостояниимолодии,соответственно,науровне её выживаемости (Левин, 1989).

10.4.1 Солеустойчивость молоди различных видов осетровых как критерий оптимизации выпуска

Солеустойчивость молоди осетровых играет важную роль при выпуске в естественные водоёмы. Поэтому анализ солерезистентности различных размерно-возрастных групп рыб позволяет оптимизировать места, сроки выпуска и видоспецифичные схемы адаптации молоди, выращенной на осетровых заводах, к различной солёности.

В естественных условиях скатывающаяся молодь осетровых по мере роста осваивает все более соленые участки моря. Молодь осетровых старшего возраста обладает более сформированными механизмами осмотического и ионного гомеостаза. Важным условием является то, что эмбриональное развитие (например, A. gueldenstaedtii, H.huso и A. stellatus) должно проходить в пресной воде (максимальная допустимая соленость 2–3‰). Наиболее чувствительной к колебаниям солености воды является развивающаяся икра шипа, высокий уровнь смертности эмбрионов (до 30%) наблюдается уже