chebanov_m_s_galich_e_v_rukovodstvo_po_iskusstv

210

Таблица 59: Репродуктивные показатели диких и домашних производителей осетровых(Чебанов, Галич и Чмырь, 2004).

11.8.2 Зависимость скорости созревания от общего теплозапаса (суммы эффективных температур) при содержании осетровых

Скорость генеративных процессов у осетровых зависит в первую очередь от температуры содержания (Казанский, 1975). При расчете теплозапаса, выражающегося в градусо-днях, принимается во внимание только период времени, проведенный рыбой при так называемой эффективной температуре. Эффективной принято считать температуру от нерестового оптимума до минимальной температуры воды, при которой рыба перестает питаться.

При формировании маточных стад осетровых для каждого разводимого вида следует принимать во внимание значения двух показателей:

•теплозапас, необходимый для достижения половой зрелости;

•теплозапас,необходимыйдляпрохожденияодногоциклагаметогенеза (Таблица 60).

Таблица 60: Сумма эффективных температур, обеспечивающая первое и последующие созревания самок осетровых.

Таким образом, применение показателя «суммы эффективных температур» позволяет более точно прогнозировать созревание производителей в зависимости от условий конкретного хозяйства или оптимизировать управление температурным режимом.

211

Хотяобщийтеплозапасявляетсядостаточноуниверсальнымпоказателем, это не единственный фактор, определяющий возраст полового созревания и продолжительность межнерестовых интервалов. При превышении плотностей посадок, слишком малом или избыточном рационе, несоблюдении рекомендаций по проведению зимовки, созревание производителей может сильно затянуться и сопровождаться значительными нарушениями гонадогенеза. Восстановление репродуктивных качеств таких рыб или окажется невозможным или потребует применения длительной и сложной терапии.

11.9 МорФОЛОГИческие аномалии, наибоЛЕЕ ЧАСТО ВСТРЕЧАЮЩИЕСЯ у осетрОВых рыб в ремонтно-маТОчных стаДАХ

В связи с отсутствием в условиях аквакультуры большинства факторов естественного отбора, свойственных природным популяциям (конкуренция в питании, пресс хищников, условия среды и пр.), некоторая часть рыб в ремонтно-маточных стадах имеет различные аномалии строения.

(Рисунок 120). Они включают: несращение перегородки обонятельного органа, нарушения строения обонятельных розеток, а также отсутствие обонятельного эпителия (разделы 5.2 и 5.3). Более вероятно, что основной причиной возникновения этих аномалий являются колебания температуры воды в период эмбрионального и постэмбрионального развития, поэтому, эти аномалии наиболее часто встречаются у рыб, выращенных на рыбоводных хозяйствах, и являются своего рода меткой их искусственного происхождения (Подушка Левин, 1988).

212

A. Б.

В. Г.

Рисунок 120: Аномалия обонятельных органов: А – русского осётра, Б – белуги, В – шипа, Г – стерляди.

11.9.2 Аномалия органов зрения

Аномалия органов зрения выражается в недоразвитии или отсутствии одного или обоих глаз (Рисунок 121). При индустриальном выращивании (в замкнутых системах, садках или бассейнах) наличие данной аномалии, как правило, не снижает выживаемость, т.к. органы зрения осетровых не имеют решающего значения в пищевой конкуренции. Однако, отмечались случаи, когда у осетровых признак отсутствия глаз передавался потомству. Например, в 1997 г. потомство слепой самки белуги на 30% состояло из особей, имеющих одиннедоразвитыйглазилинеимеющихглаз(Чебанов,ГаличиЧмырь,2004). Во избежание подобных проблем, такие особи должны отбраковываться на ранних этапах.

214

11.9.5 Фенодевианты

Совсем иной характер имеют такие аномалии, как наличие дополнительной пары плавников, недоразвитие брюшных плавников (вплоть до полного их отсутствия) (Рисунок 123), которые относятся к группе так называемых фенодевиантов (Подушка и Шебанин, 1996). Эти аномалии очень изменчивых по проявлению и частоте встречаемости отклонений от нормы являются показателемослаблениягенетическойконституции.Появлениефенодевиантов свидетельствует о необходимости корректировки селекционной работы и установлении более строгого контроля за подбором пар производителей.

Рисунок123:Фенодевиантыстерляди:А–отсутствуютнормальныебрюшные плавники, имеются дополнительные парные плавники в рудиментарном состоянии, Б – присутствуют дополнительные парные плавники в рудиментарном состоянии (Чебанов. Галич и Чмырь, 2004).

Следует упомянуть, что среди отклонений в развитии встречается парное сращение усиков. Причем усики срастаются не основаниями, а концами, что является, скорее всего, следствием глубокого нарушения развития в раннем онтогенезе. При выращивании в искусственных условиях выживаемость фенодевиантов не отличается от нормальных особей, но при бонитировках они должны отбраковываться и не использоваться для воспроизводства.

11.10 ПАСПОРТИЗАЦИЯ МАТОЧНОГО СТАДА: генетический контрОЛь за чистОТОЙ племенногО маТЕРИАла

Генетическое тестирование маточного стада проводится методами молекулярной генетики путем анализа нуклеотидных последовательностей митохондриальной ДНК, анализа микросателитных локусов ядерной ДНК с использованием случайных праймеров (RAPD), полиморфизма длин рестрикционных фрагментов (AFLP). С помощью ДНК фингерпринтинга можно определять не только происхождение рыб, но и оценивать гетерогенность маточных стад различных видов и генетические расстояния между популяциями и отдельными особями.

215

Для проведения индивидуального тестирования особей, достигших половой зрелости, проводят отбор образцов ткани, обычно представляющих собойкусочек(1–2г)плавника,фиксированногов96%этаноле.Каждойпробе присваивается индивидуальный номер. Рыбу, от которой взят образец тканей, метят индивидуальной ПИТ-меткой. Традиционно, анализ образцов тканей проводят по четырем микросателитным локусам (Таблица61).

Таблица 61: Микросателитные локусы, используемые для проведения индивидуальной паспортизации осетровых.

1 Для более точной генетической паспортизации в последние годы используется еще один локус – Ao×D161 (Mugue and Barmintseva, 2009).

На основании анализа электрофореграмм по каждому из локусов выявляют аллели, характерные для исследуемых особей. Для определения генотипа исследуемых особей подсчитывают количество аллелей по каждому из локусов в отдельности.

По итогам исследований для каждой особи, входящей в маточную часть стада составляется индивидуальный генетический паспорт (Рисунок 124), включающий номер индивидуальной ПИТ-метки, данные о происхождении, размерно-весовые показатели, результаты генетического тестирования и изображение каждой рыбы, входящей в нерестовую часть стада.

216

Рисунок 124: Образцы индивидуальных генетических паспортов.

11.11ОсобенностиадаптАЦИИ«диких»рыбксодерЖАНИЮ

вискУССТВЕННЫХ усЛОВИЯХ

11.11.1 Технологическая схема адаптации «диких» рыб к содержанию в искусственных условиях

Оптимизация адаптации производителей и незрелых рыб, выловленных в естественных водоемах, к условиям содержания на заводах, в том числе к созреванию в пресной воде и питанию искусственными кормами, является важным элементом формирования маточных стад и сохранения природного генетического разнообразия осетровых. Проведение такой работы особенно целесообразно при малой эффективной численности имеющегося маточного стада, а также в отношении рыб, обладающих редкими генотипами.

Технологическая схема адаптации «диких» рыб к содержанию в искусственных условиях включает следующие элементы:

•прижизненное получение от производителей половых продуктов;

•перевод на питание искусственными кормами;

•содержание на рыбоводном предприятии до (повторного) созревания;

и

•эксплуатация (повторно) созревших производителей.

217

Процесс адаптации к условиям заводского содержания следует начинать с выдерживания рыб на отдельном адаптационном участке, обеспечивающем минимальное воздействие на рыбу стрессовых факторов, при пониженных температурах (10–15оС) и высоком содержании кислорода. Понижение температуры воды способствует снижению уровня обменных процессов в организме, и, как следствие, уменьшению энергетических затрат в период привыкания рыбы к содержанию в искусственных условиях (ограниченный объем, проточность и т.д.). В этот период необходимо максимально снизить воздействиенарыбуразличныхвнешнихфакторов(шумит.д.)иподдерживать на участке световой режим близкий к естественному.

11.11.2 Перевод «диких» рыб на питание искусственными кормами

Перевод на питание искусственными кормами является наиболее сложным элементом адаптации диких рыб и должен производиться поэтапно.

Первоначально рыб приучают к питанию естественной пищей (рыба, моллюски, черви, ракообразные) в условиях искусственного содержания (бассейны, садки) с постепенным переходом на пастообразные смеси, содержащие животные компоненты и комбикорма. Сначала искусственный корм вводят в пастообразный естественный (рыбный, мидиевый, креветочный фарш и т.п.) в виде порошка и в незначительном количестве (не более 5%) и только, когда рыбы начинают питаться этой смесью, содержание искусственного корма в смеси постепенно увеличивают, одновременно увеличивая размер крупки искусственного корма.

В целях стимуляции потребления пастообразных кормов, целесообразно подсаживать к адаптируемым рыбам питающихся особей того же вида из маточного стада.

Рыб, не начинающих питаться естественным образом кормят принудительно, через зонд пастообразным кормом, сначала с использованием добавок, а потом используя только гранулированный корм с разбавителями. Принудительные кормления проводят не чаще, чем один раз в трое суток. В ряде случаев для начала питания отдельных рыб достаточно покормить принудительнооднократно.Поэтойпричинепередповторнымпринудительным кормлениемрыбкормятпастообразнымкормомвбассейне(садке)иначавших питаться рыб отсаживают или метят и больше повторно не кормят (Чебанов. Галич и Чмырь, 2004). Обычно, при правильном подборе ингредиентов, рыбы начинают питаться не позже, чем после пятого принудительного кормления. Рекомендуется использовать аттрактанты и стимуляторы вкуса для лучшей адаптации рыб к искусственным кормам (Kasumyan and Døving, 2003).

Эффективность работ по адаптации, как и при преднерестовом выдерживании может быть повышена за счет осуществления витаминных инъекций.Дляэтихцелейприменяютвитамины«С»(аскорбиноваякислота)и «Е» (α-токоферол), которые имеют большое значение для жизнедеятельности организма, влияя на жировой, белковый и минеральный обмен (см. 4.5.3).

218

Поскольку основным источником этих витаминов является корм, то в период адаптации к условиям искусственного содержания рыбы испытывают его острую нехватку, что влечет за собой еще большее ухудшение аппетита, обводнение и атрофию мышц, а также повышает предрасположенность к инфекционным заболеваниям. Эффективные суточные дозы витаминов при проведении адаптации ниже, чем при преднерестовом инъецировании и составляют 5-10 мг/кг аскорбиновой кислоты и 10-15 мг/кг α-токоферола из расчета на один кг. массы производителя. Продолжительность инъекций составляет 5–7 суток. В период приучения рыб к корму их следует держать при температуре 12–15оС, так как непитающиеся особи при более высокой температуре быстро теряют в весе, и их физиологическое состояние ухудшается, что может привести к необратимой дистрофии.

Следует учитывать, что различные виды осетровых рыб в естественных условиях питаются разными кормовыми организмами и состав кормосмеси в ходе приучения к кормам также должен различаться (Таблица 62)

Таблица 62: Требования к составу пастообразных кормов, используемых при доместикации «диких» особей осетровых рыб (Чебанов, Галич и Чмырь, 2004).

Общая продолжительность периода адаптации рыб к условиям искусственного содержания может варьировать от 40 до 85 суток и зависит от возраста рыбы, условий содержания, ингредиентов кормосмесей и выбранной схемы проведения работ. Наиболее быстро к условиям искусственного содержания адаптируется белуга, вместе с тем имеются данные об успешном переводе севрюги на питание искусственным кормом за 39 дней (Memiş, Ercan and Yamaner 2011).

219

Для повторного созревания яичников одомашненным самкам требуется не только восстановить энергетические и пластические потери, понесенные за период зимовки, нерестового хода, выдерживания, заживления травм и периода адаптации к кормлению, но и накопить достаточное количество трофопластическихзапасов(жирибелок)дляформированияновыхгенераций ооцитов.

После получения икры от одомашненных самок следующее созревание отмечалось через 4–7 лет содержания в искусственных условиях при естественном температурном режиме (Шевченко, Попова, Пискунова, 2004).

После получения у диких самок зрелых половых продуктов, в течение первого нагульного сезона происходит существенное снижение массы рыб: у белуги до 15%, у русского осетра и севрюги до 13,5%. Максимальный прирост массы доместицированных производителей приходится на второй и третий год межнерестового интервала. К концу второго года содержания оперированных самок дегенеративные процессы в гонадах продолжаются, о чем свидетельствует наличие пигментных гранул. В яичниках доместицированных рыб начинается пролиферация оогоний и развитие клеток новых генераций (Попова, Пискунова и Шевченко, 2004). У самок русского осетра и севрюги в яичниках появляются крупные ооциты, содержащие желточные зерна. Продолжительность межнерестового интервала перешедших на искусственные корма рыб можно сократить за счет содержания в течение первых двух лет на «теплой» воде с круглогодичным кормлением (Шевченко, Попова и Пискунова, 2004).

11.12 ТрАНСПОРТИРОВКА

Перемещение рыб как внутри завода, так и между различными хозяйствами является необходимым элементом биотехники выращивания осетровых. Основные принципы управления в рамках ответственного перемещения живых водных животных описаны в (FAO, 2007). Транспортировка рыб или икры может осуществляться в герметичных либо в открытых емкостях. Независимооттипаемкости,основнымкритериемуспешнойтранспортировки рыб является определение оптимальной плотности посадки, которая зависит от размеров, возраста, вида рыб, а также интенсивности обмена веществ при выбранном температурном режиме перевозки. Кормление рыб, отобранных для транспортировки, прекращают не менее чем за 30 часов до начала погрузки.

11.12.1 Транспортировка молоди осетровых рыб в герметических емкостях

В качестве герметических емкостей для перевозки осетровых рыб используют пакеты из полиэтиленовой пленки стандартного (20-40 л) или увеличенного объема, а также цистерны из прорезиненной ткани, или другие аналогичные приспособления. Транспортировка осетровых рыб в полиэтиленовых пакетах традиционно используется для перевозок оплодотворенной икры, личинок и молоди, но в отдельных случаях может быть применима и для крупных рыб.