Добавил:
ivanov666
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Предмет:
Файл:Универсальный справочник медсестры
.pdf
Предстерилизационная очистка — по ОСТУ 42-21-2-85 с использованием CMC «Биолот» или CMC «Лотоса» с перекисью
водорода.
Стерилизация — паровой, воздушный или химический ме-
тод по ОСТ-42-21-2-85.
Обработку игл из серебра и платины проводить согласно
ОСТ-42-21-2-85.
Иглы из серебра и сплавов серебра дезинфицируются спиртом; предстерилизационная очистка по ОСТ-42-21-2-85. Стерилизация только воздушным методом.
Обработка перчаток
1. Дезинфекция перчаток проводится одним из способов:
1) погружение в 3%-ный раствор хлорамина на 60 мин, затем
промывание проточной водой и высушивание;
2) погружение в 6%-ный раствор перекиси водорода на 60 мин,
прополаскивание в проточной воде и высушивание;
3) погружение в 0,5%-ный раствор CMC с 6%-ным раствором
перекиси водорода на 60 мин, прополаскивание в проточ-
ной воде и высушивание;
4) погружение в 0,03%-ный раствор нейтрального анолита
на 60 мин, прополаскивание в проточной воде и высуши-
вание.
2. Стерилизация перчаток.
Перед стерилизацией перчатки подвергают предстерилизационной очистке по ОСТу 42-21-2-85. Стерилизацию проводят
следующим способом:
Паровой метод стерилизации водяным насыщенным паром
под повышенным давлением в паровом стерилизаторе-автоклаве. Для этого перчатки внутри и снаружи пересыпают тальком (предварительно тщательно высушив), каждую перчатку
перекладывают бязевой салфеткой, затем каждую пару заворачивают отдельно в пеленку или бязевый мешочек и в таком
виде закладывают в стерилизационные коробки (биксы). Стерилизуют при 1-м режиме t 20 °C, 1,1 атм. в течение 45 мин.
Химконтроль: бензойная кислота, ИС на 120 °С.
Дезинфекция помещений, предметов обстановки
2-кратное протирание ветошью, смоченной в растворе:
1) хлорамин Б — 1%-ный раствор;
2) перекись водорода 3%-ного, раствор с моющим средством;
481
3) лизоформин 3000, лизоформин-специаль, амоцид;
4) 0,2%-ный раствор жавель-солид.
Обработка ветоши
1. Погружение в один из растворов на 60 мин перед исполь-
зованием:
1) хлорамин Б 1%-ный раствор;
2) гипохлорид Са 0,5%-ный раствор.
2. Кипячение в 2%-ном содовом растворе — 15 мин.
3. Кипячение в дистиллированной воде — 30 мин.
4. Лизоформин-специаль 2%-ный — 4 ч.
Порядок проведения текущей уборки
1. Влажная уборка процедурного кабинета проводится не
менее 2 раз в сутки, при необходимости чаще: утром перед началом рабочего дня и в конце рабочей смены. Влажную уборку
всегда необходимо сочетать с дезинфекцией и бактерицидным
облучением помещения. Для дезинфекции могут быть использованы 1%-ный раствор хлорамина с добавлением 0,5%-ного
раствора моющего средства, 1,5%-ного раствора лизоформина-специаль, 1,5%-ного раствора амоцида, раствора нейтрального анолита согласно методическим указаниям к раствору.
2. Медсестра или санитарка для уборки надевает халат
и перчатки. В специальную емкость наливается дезраствор
и закладывается чистая ветошь для обработки поверхностей.
Протираются все поверхности двукратно с интервалом 15 мин
в строгой последовательности — стол для стерильного материала, шкафы для стерильных растворов, оборудования, манипуляционные столы, стулья, кушетки для больных.
3. Для уборки используется специально выделенный уборочный инвентарь, имеющий четкую маркировку с указанием помещения, вида уборочных работ и специальное место хранения.
4. После влажной уборки включаются бактерицидные потолочные или настенные облучатели на 60 мин, после чего проветривается помещение.
5. Уборочный инвентарь после использования подвергается
дезинфекции.
Порядок проведения генеральной уборки
Генеральная уборка проводится один раз в неделю. В по-
мещениях предварительно проводят уборку с применением
482
растворов моющих средств для удаления механических и других загрязнений с целью более эффективного воздействия на
обрабатываемые поверхности дезинфицирующего средства.
Затем помещение (пол, стены), оборудование протирают ветошью, обильно смоченной одним из дезрастворов: 6%-ным
раствором перекиси водорода с 0,5%-ным моющего средства,
5%-ным раствором хлорамина, 1%-ным активированным раствором хлорамина, 0,75%-ным раствором Лизоформина-3000,
3%-ным раствором Амоцида, 0,5%-ным раствором Бионола
из расчета 200 мл/м2 обрабатываемой поверхности. При применении растворов перекиси водорода и хлорамина возможно
использование для орошения поверхностей распыливающей
аппаратуры
Время дезинфекционной выдержки 60 мин. После экспозиции поверхность протирают стерильной ветошью. После
дезинфекции помещение облучают ультрафиолетовым светом
(прямым или отраженным), включая настенные и потолочные
бактерицидные облучатели ОБН-200 или ОБН-350 один облучатель на 30 м3 помещения, ОБН-150 или ОБН-300 на 60 м3 на
2 ч с последующим проветриванием. Персонал при проведении генеральной уборки использует чистый халат, обувь, ватно-марлевую маску, клеенчатый фартук, перчатки.
Генеральная уборка проводится по графику, утвержденному завотделением. Ответственным лицом за проведение
генеральной уборки является старшая медицинская сестра
отделения.
Контроль качества предстерилизационной очистки изделий
медицинского назначения
1. Качество предстерилизационной очистки (ПСО) проверяют путем постановки азопирамовой или амидопириновой
проб на наличие остаточных количеств крови и путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. Контроль
качества ПСО проводят ЦГСЭН и дезинфекционные станции — ежеквартально.
Самоконтроль в ЛПУ проводят:
1) в центральных стерилизационных отделениях (ЦСО) —
ежедневно;
2) в отделениях — не реже 1 раза в неделю (организует и конт-
ролирует его старшая медсестра, акушерка).
483
2. Контролю подлежат: в ЦСО — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но
не менее 3—5 единиц.
3. В случае положительной пробы на кровь или остаточные количества щелочных компонентов моющих средств всю
партию контролируемых изделий, из которых отбирали на
контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов. Результаты контроля отмечаются
в журнале учета качества ПСО изделий медицинского назначения по форме № 366/у.
Технология постановки амидопириновой пробы
Смешивают равные количества спиртового раствора амидопирина, 30%-ной уксусной кислоты и 3%-ного раствора перекиси водорода (по 2—3 мл).
На нестерильную вату наносят вышеуказанный реактив.
Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на
вате этой ватой протирают поршень шприца, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю внутри. Затем заливают реактивы
в цилиндр шприца, пропускают их через шприц на другую ватку (проверяется цилиндр шприца).
После чего на шприце закрепляют иглу, вновь наливают
в цилиндр реактив и пропускают через шприц и иглу (проверяется игла):
1) при наличии кровяных загрязнений на вате появляется
сине-зеленое окрашивание. Окрашивание может наблю-
даться при наличии на шприце остатков лекарственных
средств, тройного раствора и хлорамина;
2) при положительных пробах повторный контроль инстру-
ментов проводят ежедневно до получения 3-кратного отри-
цательного результата.
Технология постановки азопирамовой пробы
Готовят 1,0—1,5%-ный раствор солянокислого анилина
в 95%-ном этиловом спирте.
Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4 °С (в холодильнике) 2 месяца; в комнате
при комнатной температуре от +18 до +23 °С не долее месяца.
Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.
484
Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3%-ной перекиси водорода. Рабочий раствор может быть
использован в течение 1—2 ч. При более длительном хранении
может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25 °С рабочий раствор розовеет
быст рее, поэтому его рекомендуется использовать в течение
30—40 мин.
Нельзя подвергать проверке горячие инструменты; а также
держать раствор на ярком свете или вблизи нагревательных
приборов.
Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют
в случае необходимости: 2—3 капли наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, — реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 мин не
появляется, реактивом пользоваться нельзя.
Технология постановки фенолфталеиновой пробы
Готовят 1%-ный спиртовой раствор фенолфталеина. Наносят на вымытое изделие 1—2 капли раствора. При наличии
остаточных количеств моющего средства появляется розовое
окра шивание. Изделия, дающие положительную пробу на
кровь или моющее средство, обрабатывают повторно до получения отрицательного результата.
МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
ПО КОНТРОЛЮ СТЕРИЛИЗАЦИИ
С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ИНДИКАТОРОВ
СТЕРИЛИЗАЦИИ ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ ФИРМЫ «ВИНАР»
1. Общие положения
1.1. Настоящие методические рекомендации предназначены
для всех медицинских работников здравоохранения, выполняющих работу, связанную с обеззараживанием и стерилизацией медицинского инструментария и изделий медицинского
назначения.
485
1.2. Индикаторы стерилизации производства НПФ «Винар» являются средством контроля режимов стерилизации,
исключающих возможности использования при обследовании и лечении больных инструментов и материалов, простерилизованных в неисправных или неправильно эксплуатируемых аппаратах. Индикаторы позволяют определять
не только температуру, которая достигалась в процессе стерилизации, но и время ее воздействия на стерилизуемые
объекты.
1.3. Индикаторы ИС-120 и ИС-132 предназначены для
одновременного контроля в паровых стерилизаторах по
ГОСТ 19569-80 температуры и времени стерилизации изделий медицинской техники, а также наличие пара при
стерилизации. Индикатор ИС-120 применяется для режима стерилизации: температура 120+2 °С (давление пара
0,11+0,02 МПа) за время 45+3 мин, индикатор ИС-132 —
температура 132±2 °С (давление пара 0,20+0,02 МПа) за
время 20+2 мин.
1.4. Индикаторы ИС-160 и ИС-180 предназначены для
одновременного контроля в воздушных стерилизаторах по
ГОСТ 22649-83 температуры и времени стерилизации изделий медицинской техники. Индикатор ИС-160 применяется для режима стерилизации, температура 160±3 °С за время
150+5 мин, индикатор ИС-180 — температура 18О±3 °С за
время 60+5 мин.
1.5. Индикатор представляет собой полоску бумаги, на
одной стороне которой нанесен индикаторный слой, изменяющий свой цвет до цвета эталона при соблюдении режима стерилизации. НПФ «Винар» изготавливает также индикаторы стерилизации, на второй стороне которых нанесен
адгезионный слой. Эталон представляет собой полоску
бумаги, одна сторона которой окрашена в цвет, с которым
должен совпадать цвет индикатора при соблюдении режима
стерилизации.
1.6.Индикаторы изготавливаются в соответствии с ТУ 480153-001 (согласовано с Министерством здравоохранения Российской Федерации 10 июня 1993 г.)
2. Применение индикаторов
Для контроля режимов стерилизации с различными температурными параметрами следует применять соответствующий
индикатор стерилизации.
486
Таблица 21
Метод
стерилизации
Воздушный метод
Паровой метод
Параметры режима стерилизации
Температура
стерилизации
160 150 ИС-160
180 60 ИС-180
120 45 ИС-120
132 20 ИС-132
Стерилизацион-
ная выдержка
Тип
индикатора
Стерилизация считается эффективной, если цвет всех индикаторов, заложенных в камеру стерилизатора, соответствует
цвету эталона или темнее эталона.
Цвет индикатора светлее эталона в какой-либо точке стерилизатора указывает на неэффективную стерилизацию. При
этом использование всей партии изделий запрещается.
3. Методика Контроля Работы Стерилизаторов Индикато-
рами Ис-120, Ис-132, Ис-160, Ис-180
Контролю подлежат все паровые и воздушные стерилизаторы, используемые для стерилизации медицинских инструментов и изделий медицинского назначения. При этом контролируется каждый цикл стерилизации. Количество полосок
индикатора, которые закладываются для контроля одного
цикла стерилизации, зависит от размеров камеры стерилизатора.
Таблица 22
Емкость камеры воздушного
стерилизатора а литрах
До 80
80—250
250—500
500—1000
Емкость камеры парового
стерилизатора в литрах
До 100
100—750
свыше 750
Количество зон, в которые
закладываются индикаторы
5
15
15
30
Количество зон, в которые
закладываются индикаторы
5
11
13
За зонами контроля закрепляются номера. В каждую зону по-
мещается не менее одной контрольной упаковки с индикатор-
487
ной полоской. В качестве контрольной упаковки используются
пакеты, свертки, стерилизационные коробки с инструментами,
материалами. Более удобны индикаторы с адгезионным слоем,
которые наклеиваются на поверхность упаковок.
По окончании цикла стерилизации индикаторы из контрольных упаковок извлекаются для сравнения с эталоном.
Если цвет полосок в одной или нескольких контрольных упаковках светлее эталона, вся партия считается нестерильной.
Отработанные индикаторы подклеиваются в журнал учета
стерилизации, в выделенные для этого дополнительные колонки. Документирование индикаторов позволяет предоставить накопленную информацию контролирующим органам и использовать для ретроспективного анализа при неудовлетворительном
бактериологическом контроле. Индикаторы, заложенные в упаковки с инструментами, материалами, проверяет медицинский
персонал перед проведением процедуры. Изделия запрещается
использовать, если цвет индикатора светлее эталона.
Санитарно-гигиенический режим при анаэробной инфекции
Источник инфекции — больные газовой гангреной в любой
форме: эмфизематозной, отечно-токсичной, смешанной, газово-гнойной. Основной путь передачи — контактный.
Обработку помещений, предметов, изделий проводят 6%-ным
раствором перекиси водорода с 0,5%-ным CMC.
Загрязненное белье перед стиркой обрабатывают кипячением в 2%-ном растворе питьевой соды в течение 120 мин.
Уборку помещений проводят не реже 2 раз в день 6%-ной
перекисью водорода с 0,5%-ным CMC в защитных средствах
и облучают бактерицидными лампами 1,5—2 ч.
Уборочный инвентарь после использования автоклави руют
при температуре 132 °С в течение 20 мин, хранят отдельно.
Операционная, перевязочная оборудуются бактерицидными
облучателями. Во время операции хирург и операционная медсестра надевают клеенчатые фартуки, которые потом обрабатываются 6%-ной перекисью водорода с 0,5%-ным CMC.
Перевязочный материал используется однократно, после
операции перед уничтожением автоклавируется в специальном биксе 20 мин при температуре 132 °С. Категорически запрещается выбрасывать материал без обеззараживания.
После операции весь инструментарий погружают в 6%-ный
раствор перекиси водорода с 0,5%-ным CMC на 60 мин или
488
кипятят в течение 90 мин. Затем проводят предстерилизационную очистку и стерилизацию по ОСТУ 42-21-2-85.
Кроме этого можно использовать для дезинфекции следующие растворы: Сайдекс, Лизоформин-3000, Бионол, Гигасепт
по режиму стерилизации.
Современные антисептические средства, применяемые для
дез инфекции и стерилизации
Лизоформин-3000
Концентрат для чистки, дезинфекции и стерилизации инструментов (включая гибкие эндоскопы), для чистки и дезинфекции поверхностей и инвентаря.
1. Общие сведения
1.1. Препарат производится в виде жидкого концентрата
голубоватого цвета со специфическим запахом. Срок годности
концентрата 2,5 года. Рабочие растворы готовят путем разведения концентрата водой. Рабочие растворы могут применяться
многократно и сохраняют свою активность в течение 14 дней
от момента приготовления.
1.2. Лизоформин-3000 предназначен для дезинфекции изделий медицинского назначения (включая гибкие эндоскопы),
поверхностей, уборочного материала при инфекциях бактериальной (включая туберкулез) и вирусной (включая гепатит В,
ВИЧ-инфекцию) этиологии, кандидозах, дерматофитиях.
1.3. При обработке инструментов, сильно загрязненных кровью и другими органическими веществами, для предотвращения
фиксирующего действия и совмещения предстерилизационной
очистки с дезинфекцией в одной процедуре рекомендуется использование препаратов: Лизоформин-3000 + Бланизол, в концентрациях 0,25—0,5% в зависимости от степени загрязнения.
2. Приготовление рабочих растворов
2.1. При приготовлении рабочих растворов используют
стеклянные, эмалированные (без повреждений) или полиэтиленовые емкости с крышками.
2.2. Рабочие растворы необходимой концентрации готовят
путем разбавления водой (температура не выше комнатной)
жидкого концентрата препарата.
2.3. При приготовлении рабочих растворов сначала следует
налить в емкость воду, а потом добавить концентрат препарата.
2.4. При приготовлении рабочих растворов пользуются расчетом, приведенным в таблице 23.
489
Таблица 23
Приготовление рабочих растворов препарата
Концентрация
рабочего раствора
по препарату, %
2,0 20,0 980,0
1,5 15,0 985,0
0,75 7,5 992,5
0,5 5,0 995,0
0,25 2,5 997,5
Количество компонентов (мл), необходимое
для приготовления 1 л рабочего раствора
Препарат Вода
3. Применение Лизоформина-3000
3.1. Растворы препарата применяют для дезинфекции:
— изделий медицинского назначения (включая гибкие эндо-
скопы) из стекла, металла, пластмасс, резин на основе силиконового и натурального каучука;
— поверхностей помещений (пол, стены), мебели, санитарно-
технического оборудования;
— уборочного материала (половые тряпки, ветошь).
3.2. Дезинфекцию растворами препарата осуществляют
способом погружения (изделия медицинского назначения,
уборочный инвентарь). При проведении дезинфекции способом погружения емкости плотно закрывают крышками на время дезинфекционной выдержки.
3.3. Режим дезинфекции растворами препарата при инфекционных заболеваниях различной этиологии представлены
в таблице 24.
Объект обеззара-
живания
Изделия ме-
дицинского
назначения,
включая гибкие
эндоскопы
Режимы дезинфекции
Концентрация
раствора, %
2
1,5
0,75
Время дезин-
фекции, мин
490
15
30
60
Таблица 24
Показания
к применению
Инфекции
(включая тубер-
кулез, гепатит В,
ВИЧ-инфекцию,
кандидозы, дерма-
тофитии
Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]