Повышение биологического потенциала водоплавающей птицы при использовании пробиотических препаратов. Монография

масса превосходила таковую в контроле на 7,8 %. Улучшилось и качество получаемой продукции.

Егоров И.А., Тараканов Б.В. (1999) отмечают, лактоамиловорин обладает амилолитической активностью, при сбраживании углеводов корма продуцирует молочную и уксусную кислоту, этанол, комплекс бактериоцинов, ингибирующих бактерии родов Staphylococcus, Micrococcus, Streptococcus, Bacillus, Escherichia, Pseudomonas, Salmonella и некоторых видов Lactobacillus. Отличительной особенностью указанного штамма являются: способность к ферментации крахмала; устойчивость к хлорамфениколу, тетрациклину, стрептомицину, канамицину, рифампицину.

Федеральной службой по ветеринарному и фитосанитарному надзору в 2013

году была произведена перерегистрация пробиотика и выдано регистрационное удостоверение № 001364 на порошок для орального применения лактоамиловорин-СП и РУ № 001363 на суспензию для орального применения лактоамиловорин-КЖ (РУ № 001364; РУ № 001363).

Изучая научные работы (Тараканов Б.В., Егоров И.А., Пеньков П., Куренева В., Герасименко В.В., Никулин В.Н., Гаврилова Е.А., Назарова Е.А., Корнилова Е.А., Клычкова М.В.) мы можем с уверенностью сказать, что лактоамиловорин не вызывает у животных побочного действия. Противопоказаний для его применения не имеется. Пробиотик одобрен Советом по ветеринарным препаратом департамента ветеринарии Минсельхозприроды РФ и рекомендован для широкого производственного испытания.

Скармливание цыплятам – бройлерам жидкого пробиотика лактоамиловорина первые 7 дней выращивания обеспечило к 42-му дню повышение живой массы на 2,7 % и снижение затрат корма на прирост на 1,5 %, против контрольных данных. При использовании жидкой и сухой форм пробиотика, в течение 4 недель откорма бройлеров в 42-дневном возрасте, масса тела у них была выше в среднем на 5,6 %, сохранность на 2,5 %, а затраты корма на прирост ниже на 2,6 % по сравнению с контролем. Это компенсировало увеличение стоимости комбикорма, обогащенного лактоамиловорином. Для стимуляции роста мясных цыплят пробиотик рекомендо-

21

вано вводить в рацион в количестве 2 л жидкого или 50 г сухого на 1 т корма в тече-

ние 28 дней (Егоров И., Пеньков П., Куренева В и др., 1995, 2004).

Шендеров Б.А., (2001), Олива Т.В., (2012) отмечают, что лактобактерии, явля-

ясь представителями индигенной микрофлоры кишечника, незаменимы во взаимо-

действии между макроорганизмом, микроорганизмами и окружающей средой. Они способны продуцировать антибиотики, органические кислоты, снижать величину рН содержимого кишечника, изменять окислительно-восстановительный потенциал и оказывать благоприятное действие на организм посредством конкурентного антаго-

низма с различными условно-патогенными бактериями.

По данным ряда авторов Тараканов Б.В., Никулин В.Н., Герасименко В.В.,

(2005) установлено, что в процессе выращивания гусят оценка продуктивного эф-

фекта пробиотика показала его четко выраженное стимулирующее действие на рост птицы. В 6-месячном возрасте масса тела контрольных гусей составляла 4828 г, у

подопытных она достигала 5433 и превосходила контроль на 12,5 %. Масса потро-

шеной тушки гусей опытной группы была выше, чем в контроле, на 13,07 %, съе-

добных частей – на 11,7 %, мышц – на 13,3 % и костей - на 14 %. Увеличился выход пухового сырья на 7 %. Химический состав мяса показал, что у птицы, получавшей лактоамиловорин, уменьшилось содержание влаги и жира соответственно на 3,35 и 3 %, тогда как уровень белка возрастал на 5,72 %, увеличивался белково-

качественный показатель мяса, а концентрация холестерина в нем снижалась на 33,2 %. Препарат стимулировал концентрацию гемоглобина в крови гусят. В группе птицы, которой назначали пробиотик, этот показатель составил 100,3 г/л, против

88,1 г/л в контроле. Автором установлено, что включение в состав рациона пробио-

тика лактоамиловорина в дозе 7-8 г на 100 кг комбикорма при выращивании гусей,

способствует повышению сохранности и продуктивности птицы, активации белко-

вого, углеводного и минерального обмена, а также снижению концентрации липи-

дов в крови, что дает возможность получать высококачественное диетическое мясо,

с высоким содержанием белка и низким – жира и холестерина.

Таракановым Б.В. и др., (2005) было доказано, что лактоамиловорин стимули-

рует эритропоэз, повышает неспецифическую резистентность, благоприятствует

22

развитию лимфоидных органов иммунной системы, обеспечивает повышение со-

хранности, прирост массы тела птицы и улучшает качество мяса.

Комплексное воздействие лактоамиловорина и селенита натрия на физиолого-

биохимический статус и продуктивные качества цыплят-бройлеров изучала Назаро-

ва Е.А.(2012). Ею был сделан вывод, что введение в рацион цыплят-бройлеров селе-

на, лактоамиловорина и их комплекса показало, что наибольший биологический и экономический эффекты отмечены при комплексном применении пробиотика и микронутриента. Так, их совместное применение способствовало повышению усво-

ения основных питательных веществ: протеина на 5,5 %, клетчатки на 1,2 %, безазо-

тистых экстрактивные веществ на 3,9 %, минеральных веществ на 5,1 % при этом наблюдалось снижение усвоения липидов на 16,0 %.

В своей работе впервые Корнилова В.А. (2006, 2007, 2008, 2009), выявила и обосновала рациональные дозировки включения препаратов нового поколения в комбикорма, с целью повышения обменных процессов в организме и продуктивно-

сти птицы; определила эффективность использования ферментных препаратов

(Авизим 1300, Кемзайм, Ровабио, Оллзайм Вегпро), селеносодержащего (Сел-

Плекс), пробиотических (СГОЛ-1, Лактоамиловорин, Споронормин, Бифитрилак),

антистрессового (Сантохин), витамина С в комбикормах кур и гусей при традици-

онных и нетрадиционных способах выращивания их на мясо.

Корнилова В.А., (2009) установила, что использование указанных выше био-

логически активных веществ в качестве компонентов комбикормов для молодняка птицы при оптимальной дозировке позволило повысить энергию роста на 5,0-10,0 %

и снизить затраты кормов на единицу прироста живой массы на 10,0-15,0 %. При выращивание птицы с использованием в кормлении БАВ позволяет повысить ее со-

хранность на 3,0-5,0 %, выход потрошеной тушки - 1,5-2,0 %, использование кон-

версии протеина и энергии корма в тело, качество его и рентабельность производ-

ства мяса до 6-12 %.

Клычковой М.В. (2006) были проведены исследования по разработке эффек-

тивных способов скармливания, рациональных доз и сроков введения пробиотика лактоамиловорина утятам-бройлерам кросса «Благоварский» и его влияние на про-

23

дуктивность, показатели безопасности и качества мяса. Автор в своих исследовани-

ях установил, что лучшими оказались опытные группы, где им назначали препарат в виде выпойки из расчета 0,6 г на 10 л водопроводной воды и с католитом с φ- (550±

50) мВ. Так, в ходе эксперимента наблюдалось увеличение живой массы утят на 6,03

и 10,22 %, повышение сохранности поголовья на 3,0 % и снижение расхода корма на

1 кг прироста живой массы утят на 9,5 и 10,2 %.

Клычкова М.В., Богатова О.В. (2013) изучавшие действие пробиотика лакто-

амиловорина в виде выпойки из расчета 0,6 г на 10 л водопроводной воды и с като-

литом φ- (550± 50) мВ на переваримость питательных веществ корма установили,

что утята опытных групп лучше усваивали протеин корма - на 4,3 и 4,5 %, кальция -

на 6,65 и 9,07 %, фосфора - на 14,19 и 17,55 % соответственно относительно кон-

троля. Авторами установлено, что у утят опытных групп показатель чистой энергии прироста был выше - на 1,6 и 2,2.

При изучении гематологических показателей Клычковой М.В., Богатова О.В.

(2012) установлено, что выпойка лактоамиловорина из расчета 0,6 г на 10 л водо-

проводной воды и с католитом φ- (550± 50) мВ утятам – бройлерам кросса «Благо-

варский» способствует повышению неспецифической резистентности организма по БАС на 3,4 и 3,5 %; по содержанию гемоглобина в крови – на 4,9 и 5,0 %; эритроци-

тов – на 20,0 и 23,3 % и снижению лейкоцитов - на 8,6 и 4,8 % по сравнению с кон-

тролем. По содержанию солей тяжелых металлов следует отметить, снижение их в опытных группах по сравнению с контролем. Так, наблюдается снижение содержа-

ния цинка в мышечной ткани на 4,90; 5,40 и 5,9 мг/кг, по сравнению с контролем.

Также позволило повысить убойный выход тушек на 4,2 и 4,8 %, выход грудных мышц на 4,01 и 4,94 %, выход ножных мышц на 2,07 и 2,53 % и выход съе-

добных частей тушки на 0,18 и 0,46 % по сравнению с контролем, а также увеличить содержание протеина в мышцах утят на 6,9 и 7,9 % и энергетическую ценность мяса на 2,6 и 2,8 %.

Изучая научные работы многих авторов мы можем с уверенностью сказать,

что лактоамиловорин не вызывает у животных побочного действия.

24

промышленном птицеводстве

Вода является важнейшим компонентом живой материи, но в химически чи-

стом виде в организме не встречается. Она либо содержит растворенные кристалло-

иды, либо связана с коллоидами. Входя в состав белковых коллоидов, она непосред-

ственно участвует в построении структур живых клеток и тканей.

Физиологическая роль воды в организме птицы велика и разнообразна. Вода обеспечивает не только поступление питательных веществ в организм, их всасыва-

ние и распространение, но и участвует в выведении конечных продуктов обмена

(Леонов Б.И., 2003).

Водой из организма выносятся продукты распада питательных и биологически активных веществ. Кроме того с поступлением и выделением воды связаны распре-

деление и отдача тепла в организме. Водный баланс и обмен связаны с подержани-

ем динамического равновесия в организме. Обмен воды регулируется центральной нервной системой, вегетативными нервами, гипофизом, щитовидной и паращито-

видными железами, надпочечниками.

От специальных рецепторов, улавливающих изменение осмотического давле-

ния и состояние клеток, импульсы идут в гипоталамус промежуточного мозга. Рас-

положенный там центр возбуждения, заставляет птиц искать и принимать воду.

Кроме этого, гипоталамус, с одной стороны, через вегетативную нервную систему уменьшает отдачу воды из организма, особенно через почки, а с другой возбуждает гипофиз, который выделяет антидиуретический гормон (уменьшающий мочеотде-

ление) и тропные гормоны, стимулирующие деятельность других желез внутренней секреции, регулирующих солевой обмен. Все это приводит к выравниванию осмо-

тического давления.

Известно, что роль воды в биологических структурах не исчерпывается ее функциями прекрасного полярного растворителя с высокой диэлектрической посто-

янной и амфотерными свойствами среды для прохождения биологических реакций,

25

термостатирующего фактора, источника водорода и кислорода для процессов био-

синтеза и дыхания. Для биологических систем принципиальное значение имеет еще одна сторона роли воды – ее непосредственное участие в формировании и стабили-

зации биологически активной конформации важнейших биополимеров – белков и нуклеиновых кислот, а также различных надмолекулярных образований. В послед-

ние годы оформилось в виде самостоятельного научнотехнического направления и представляет собой отдельную область прикладной электрохимии – электрохимиче-

ская активация (ЭХА) водных растворов. Электрохимическая активация практиче-

ски не используется как самостоятельный технологический процесс. Ее целью явля-

ется уменьшение или полное исключение расхода химических реагентов, снижение загрязненности растворов, повышение качества целевых продуктов, сокращение времени, повышение эффективности и упрощение различных технологических про-

цессов.

В связи с тем, что электрохимическая активация позволяет без использования химических реагентов регулировать кислотно-основные и окислительно-

восстановительные свойства растворов в пределах, в ряде случаев, более широких,

чем традиционными методами и управлять реакционной способностью растворов без изменения концентрации составляющих их химических элементов, эту техноло-

гию можно смело считать технологией бедующего в плане решения технологиче-

ских и экологических проблем.

Исследования последних лет по использованию электрохимической активации в промышленном птицеводстве свидетельствуют о возросшем интересе связанным с изучением уникальных свойств воды полученных при электрохимической актива-

ции (Джурабаев М., 1984; Бахир М.В., 1994; Богатова О.В. 2003; Салеева И.П., 1998, 2008; Абрамовым К.М., 2008).

Рядом исследователей как отечественных, так и зарубежных получены сведе-

ния о том, что в живом организме такая вода проявляет себя как в качестве биости-

мулятора, так и в качестве раствора обладающего бактерицидными свойствами (Бо-

гатова О.В., 1987, 1994, 1996; Бахир В.М., 1994).

26

Основу электрохимической активации жидких сред составляют также процес-

сы электролиза, однако техника и технология их проведения отличаются; электро-

химическая активация не является законченным технологическим процессом. ЭХА жидкости осуществляется в диафрагменных электролизерах и является разновидно-

стью электромембранной технологии, реализуется путем анодной или катодной об-

работки технологического раствора в электроактиваторе.

Сущность способа получения жидкости с электроактивированными свойства-

ми заключается в том, что после воздействия электрическим током в зоне основного электрода жидкость переходит в возбужденное состояние, характеризуемое повы-

шенной химической активностью. В результате процесса электроактивации изме-

няются физико-химические свойства воды: обработанная вода в зоне положительно-

го электрода - приобретает свойства кислот, а в зоне отрицательного электрода -

свойства щелочных растворов; изменяются значения электропроводности, окисли-

тельно-восстановительный потенциал, рН, диэлектрическая проницаемость (Бахир В.М., 1992; Алехин С.А., 1992).

Католитные растворы, активированные в катодной камере диафрагменного электролизера, обладают свойствами противоположными анолитным растворам.

Параметры их составляют: рН 9..12, ОВП до -900..-1000 мВ, что определяет свой-

ства этих растворов, как биостимулирующие (с выраженным поверхностно актив-

ным действием). Электроактивированный раствор католит сохраняет свои уникаль-

ные свойства в течении 48 часов. Таким образом, уникальность заключается в том,

что без каких-либо химических добавок, только за счет соответствующей электроак-

тивации, вода превращается в высокоэффективный антиоксидант, способствующий нормализации функций клеточных мембран животных и растительных организмов.

Подбор параметров католитных растворов позволяет в принципе нормализовать и даже стимулировать энергетический баланс и метаболизм любого организма. В хи-

мическом плане католит представляет из себя смесь высокоактивных восстановите-

лей. В катодной зоне, в ходе электроактивации, вода обогащается следующими со-

единениями OH-, H3O2-, H2O2-, H2, HO2-, HO. Данный состав католита и обуславлива-

ет вышеперечисленные свойства, кроме того, католит обладает хорошими моющими

27

свойствами. Катодная электроактивация дополнительно обеспечивает нейтрализа-

цию и прямое электролитическое восстановление многозарядных катионов тяжелых металлов, в результате ионы металлов переводятся в инертную форму, становятся безвредными, не накапливаются в организме животных и человека.

Католит обладает биологической активностью, стимулятор роста и развития жизнедеятельности живого организма и растении; обладает повышенной растворя-

ющей способностью; обладает свойствами катализаторных процессов; обладает экс-

трагирующей способностью; обладает повышенной ассорбционно-химической ак-

тивностью; обладает пониженной величиной поверхностного натяжения и повы-

шенной смачиваемостью.

Анолитные растворы, активированные в анодной зоне прибора, имеют сле-

дующие параметры: рН 2-6, окислительно-восстановительный потенциал до +1100

мВ, стандартное содержание активного хлора (Са.х.) составляет 0,05 %. Анолит об-

ладает мощным дезинфицирующим и ингибирующим действием. У поверхности анода происходит окисление воды с выделением кислорода и газообразного хлора, и

насыщение раствора высокоактивными окислителями: Cl+, HOCl, O+, OH+, ClO-, O3, H2O2, HO2, ClO2, Cl2O и др. Биоцидность (обеззараживающий эффект) данных окси-

дных продуктов, превышающий в 150-200 раз биоцидность гипохлоритных раство-

ров, объясняется участием ионов Н+ и ОН- в реакциях взаимодействия с равными по концентрации ионами OCl- и молекулами хлорноватистой кислоты с органическими веществами микробных тел (RH2). Распад промежуточного активного комплекса –

ClO……RH2……HClO сопровождается образованием свободных радикалов ClO+, OH+, O+, H+, на поверхности биополимера RH2, что приводит к его окислению. Ор-

ганические примеси при взаимодействии с соединениями активного хлора подвер-

гаются полной окислительной деструкции и не образуют устойчивых форм органи-

ческих галогенсодержащих соединений. Все это приводит к полному уничтожению микроорганизмов, включая споровые формы и устойчивые вирусы.

Атолит обладает активными бактерицидными свойствами и является антисеп-

тиком и консервантом; обладает свойствами замедлять жизнедеятельность живого

28

организма и растений; и ингибирующими свойствами в различных технических процессах (Клево Е.И., 2006).

Многочисленные опыты по исследованию электроактивированной воды в птицеводстве свидетельствуют о перспективности ее дальнейшего использования.

Однако исследований по выпаиванию воды прошедшей электохимическую актива-

цию с включением биостимулирующих препаратов, в частности пробиотиков, мы не встретили, поэтому в наших исследованиях мы сочли актуальным изучить влияние выпойки пробиотика с каталитом ремонтным уткам.

По данным исследования Ларивошиной Н.В. (1996) комплексная обработка электроактивированной водой воздушной среды помещений, инкубационный яиц, а

также воздушной среды инкубационного и выводного шкафов в процессе инкуба-

ции не оказала отрицательного влияния на развитие эмбрионов, позволила увели-

чить вывод цыплят на 2,1 и выводимость яиц на 0,9 и не оказала отрицательного влияния на дальнейшую продуктивность птицы.

Использование электроактивированной воды для обработки технологического оборудования и производственных помещений переработки мяса птицы позволяет отказаться от применения традиционных моющих и дезинфицирующих стойких химических веществ, обеспечивает снижение расхода холодной и горячей воды и получение экономического эффекта в размере 1,58 рублей в расчете на 1 м2 поверх-

ности обрабатываемых объектов (Абрамов К.М. 1999).

В развитии птицеводства важное значение имеет изучение и разработка спо-

собов повышения качества получаемой продукции. При этом промышленное птице-

водство требует повышения объема инкубации яиц и увеличения их качественных показателей. Эффективность использования родительского стада во многом зависит от высокой доинкубационной браковки яиц, которая в отдельных птицеводческих хозяйствах достигает 20 % и больше. Следует отметить, что основной причиной браковки биологически полноценных яиц является наличие загрязнений на скорлу-

пе, так как общеизвестна прямая зависимость между санитарным состоянием инку-

бационных яиц, их выводимостью и качеством полученного молодняка.

29

Салеева И.П. (1998) изучая глубинную обработку куриных яиц электроакти-

вированной водой отмечает, что обработка яиц кислым или нейтральным аналитом позволяет повысить выводимость яиц на 2,1 и 2,9 % и получить экономический эф-

фект в размере 45285 и 120480 рублей на каждую тысячу заложенных на инкубацию яиц.

Интересные данные, касающиеся использования электроактивированной во-

ды при переработки мяса птицы, были получены Абрамовым К.М. (2008). В ходе исследований им установлено, что обработка пищевых яиц нейтральным аналитом с параметрами рН 6-7 и ОВП + 800 - + 900 мВ и Со.х. 200 мг/л метом погружения в раствор и выдержкой в нем в течение 6 минут обеспечивает снижение на поверхно-

сти скорлупы яиц ОМЧ в 1025,2 раза и полностью обеззаразить от бактерий E.coli и Salmonella. А использование нейтрального аналита, взамен питьевой воды в приго-

товлении фарша для производства полуфабрикатов из мяса птицы обеспечивает снижение количества мезофильных аэробных и факультативно - анаэробных микро-

организмов в 250 раз без изменения химического состава и пищевой ценности про-

дукта.

Исследования, проведенные во ВНИТИПе (Бахир В.М., 1994; Филоненко В.И.,

1996; Богатова О.В., 1994, 1996, 2003; Клево Е.И., 2006; Салеева И.П. 2008; Абра-

мов К.М., 2008), свидетельствуют о биостимулирующем действии католита при вы-

ращивании птицы. По мнению авторов, вода, прошедшая электрообработку, несет в себе избыток потенциальной энергии, которая играет огромную роль в биохимиче-

ской цепи регулирования процессов жизнедеятельности организма. Поскольку все процессы биосинтеза являются неравновесными, т.е. обязательно сопровождаются активацией веществ в организме, то применение активированных веществ позволяет непосредственно воздействовать на энергетическое состояние компонентов биохи-

мических реакций без изменения химического состава окружающей их среды. Это обуславливается отсутствием иммунитета биологических объектов к активирован-

ным веществам и обеспечивает их постоянную биологическую активность (Фило-

ненко В.И., 1984; Голубева А.А., Богатова О.В. 1987; Кузнецова Н.В. 1992;

Закомырдин А.А., 2002).

30