Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru t.me/Prokururor I Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Ординатура / Хирургия / @xirurgi_2025 / @xirurgi_2025 - 977 - файл

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
29.08.2026
Размер:
7 Мб
Скачать
точной водой. Этапы и режимы очистки инструментария пред ставлены в табл. 1.
Таблица 1
Этапы и режимы предстерилизационной очистки инстру
ментария, совмещенной с дезинфекцией инкрасептом 10 А
Качество предстерилизационной обработки проверяется пу тем постановки азопирамовой, фенолфталеиновой и бензиди новой проб на наличие остаточных компонентов моющего сред ства, крови и жира. Контролю подлежит не менее 1% от партии инструментов, одновременно подвергшихся обработке. Наибо лее удобен промышленный индикатор — запаянные трубочки, внутри которых находится порошок — смесь сахарозы и вин ной кислоты, при 180°C порошок становится жидкостью.
Кроме того, контроль качества предстерилизационной об работки проводится центром Эпидсаннадзора раз в квартал. При положительной пробе вся партия инструментов подвер гается повторной предстерилизационной обработке.
Следующий этап — высушивание инструментов в сухожа ровом шкафу при температуре 80°C в течение 20 мин.
Выбор метода стерилизации зависит от вида хирургичес ких инструментов, подлежащих стерилизации.
Все общехирургические инструменты условно разделяют на четыре группы:
1) металлические — режущие (скальпели, ножницы, иглы шовные и др. );
2) нережущие: шприцы, инъекционные иглы, зажимы и т. д.;
3) резиновые и пластмассовые: катетеры, зонды, дренажи и т. д.;
4) оптические: лапароскопы, гастроскопы, цистоскопы и т. д.
Стерилизация хирургических металлических инструментов
и изделий из стекла производится следующими способами:
21
Стерилизация сухим горячим воздухом — аэростерилиза
ция, осуществляется в сухожаровых шкафах. Инструменты и шприцы в разобранном виде помещают в специальные метал лические сетки или упаковывают в крафтбумагу и стерили зуют при температуре 180–200°C в течение 1 ч. Изделия, про стерилизованные в крафтбумаге, сохраняются стерильными 3суток, а в открытых сетках должны использоваться непо средственно после стерилизации. Для проверки стерилизации наиболее удобен промышленный индикатор — запаянные тру бочки, внутри которых находится порошок — смесь сахарозы и винной кислоты, при 180°C порошок становится жидкостью.
Для стерилизации паром инструменты помещают в коробку
(рис. 1) Шиммельбуша. Емкость плотно закрывается крышкой, которая прикреплена к корпусу коробки петлей, и закрывается замком. По периметру коробки имеются отверстия, которые от крываются и закрываются с помощью подвижного металличес кого пояса, укрепляющегося с помощью специального замка. Биксы загружают в автоклавы и стерилизуют при давлении 1,1 атм — 60 мин, 1,5 атм — 45 мин, 2 атм — 30 мин. Сроки хранения в биксах с фильтром — 3 сут. , без фильтра — 24 ч. Стерилизуемый материал укладывают в коробки нетуго с тем, чтобы пар свободно проникал ко всему содержимому.
Рис. 1. Коробка Шиммельбуша
Стерилизация инструментов одноразового пользования
проводится в герметичных пакетах ионизирующим излу чением (γлучи), ультрафиолетовыми лучами и ультразвуком. В настоящее время предпочтение отдают стерилизации γлу чами. Для этих целей применяют изотопы
Со и
С. Стерили
60
137
зация должна производиться с соблюдением мер безо пасности в заводских условиях. При сохранении герметично сти упаковок, в которых призводилась стерилизация γлуча ми, стерильность сохраняется в течение 5 лет.
22
Получают распространение стерилизационные коробки, снабженные антибактериальными фильтрами (КСПФ), у которых срок хранения стерильного материала может быть увеличен до 1 мес. Если коробку открывали, находящийся в ней стерильный материал может использоваться только в течение этого дня.
Кипячение как метод стерилизации в настоящее время не применяется и относится к дезинфекции.
Стерилизация режущих и колющих инструментов осуще ствляется в заводских условиях γлучами, газовым и холод ным химическим способом с применением антисептиков. В перевязочных режущие и колющие инструменты стерили зуются в сухожаровых шкафах.
К химическим методам стерилизации относится стерили зация в стерилизационных камерах воздушного одно или
3
двухкамерного стерилизатора емкостью 80 дм
и более пара
ми формалина.
На дно камеры помещают формалин из расчета 10 г на
3
камеры, время стерилизации —16 ч. Химическим газо
10дм вым способом стерилизуются инструменты, имеющие эбонито вую основу: телескопы, все лапароскопические инструменты, инструменты, имеющие оптику, особо точные и дорогостоящие инструменты. Перед газовой стерилизацией лапароскопические инструменты подвергаются дезинфекции в 3%ном растворе альдезона путем промывания в одной емкости. Затем во вто рой емкости они замачиваются на 1 ч и по истечении време ни ополаскиваются под проточной водой от дезинфицирую щих средств.
Химическая стерилизация проводится с применением жидких антисептиков: тройного раствора 96%ного этилово го спирта, 6%ного раствора водорода пероксида, комбини рованного дезинфектанта, аламинола, бионола, лизацина. Инструмент погружают в один из перечисленных дезинфек тантов согласно инструкции по их использованию.
Резиновые трубки, катетеры, дренажи перед стерилизацией промывают проточной водой, выдерживают в течение часа в 1%ном растворе хлорамина, вновь промывают проточной во дой и высушивают. Затем их заворачивают в марлю и стери лизуют при давлении в 1 атм в течение 45 мин.
Стерилизация перчаток для многоразового применения проводится после их предстерилизационной обработки. Ис пользованные перчатки моют под проточной водой с мылом, дезинфицируют в 1%ном растворе хлорамина или других
23
антисептиках в течение 30 мин, прополаскивают под проточ ной водой, сушат, проверяют на герметичность, пересыпают тальком, заворачивают по одной парами в марлевые салфет ки, закладывают в биксы и стерилизуют в автоклаве при дав лении в 1,1атм в течение 30 мин или 1,5 атм —15 мин.
Для хирургических манипуляций перчатки подвергают де
зинфекции одним из следующих методов:
1) в 4,8%ном растворе первомура — 20 мин;
2) в растворе водорода пероксида при 50°C — 180 мин;
3) в 96%ном растворе спирта — 15 мин;
4) в 10%ном растворе роккала — 30 мин;
5) в 2%ном растворе хлорамина — 2 ч. После дезинфекции перчатки промывают дважды в дис
тиллированной воде.
Стерилизация изделий из резины, пластмассы может осу
ществляться в автоклавах паром под давлением 1,1 атм — 30мин или 1,5 атм —15–20 мин. Резиновые и пластмассовые изделия разового использования стерилизуют в заводских ус ловиях γлучами.
Стерилизация перевязочного материала и операционного белья
Перевязочный материал готовится из марли. Большие сал
фетки связывают по 10 штук для удобства их подсчета во вре мя полостных операций. Операционное белье — это халаты, колпаки, простыни, полотенца, пеленки, изготовленные из хлопчатобумажной ткани. Во многих клиниках применяются комплекты операционного белья одноразового использова ния, прошедшего стерилизацию в заводских условиях gлуча ми. Для многократного применения белье после использова ния подвергается стирке.
Перевязочный материал после использования сжигается. Перед стерилизацией перевязочный материал и операци
онное белье укладывают в биксы. Укладка может осуществ ляться одним из следующих способов:
1. Универсальная укладка — коробку Шиммельбуша услов
но разделяют на секторы, и каждый сектор заполняют определенным видом материала или белья.
2. Целенаправленная укладка — в коробку укладывают все
необходимое для выполнения малых операций и мани пуляций (для трахеотомии и т. д.).
24
3. Видовая укладка используется в клиниках, где одновре
менно начинают работу несколько операционных. При этом способе укладки одна коробка заполняется каким то одним видом материала, другая — халатами, третья — простынями и т. д.
В центр коробки помещают тесты для контроля стериль ности. Стерилизация производится в автоклавах паром под давлением. Коробки заполняют перевязочным материалом и операционным бельем, открывают боковые отверстия и за гружают в предварительно подогретую стерилизационную ка меру автоклава. Стерилизация паром под давлением осуще ствляется в специальном аппарате — паровом стерилизаторе, давление пара внутри аппарата определяют по манометру. Паровые стерилизаторы имеют различную форму — вертикаль ную, горизонтальную, могут быть в виде шкафа. В настоящее время выпускаются полностью автоматизированные системы для стерилизации паром под давлением. При этом автомати зированы все процессы: мойка шприцев, игл, перчаток, инст рументов; их высушивание проводится по заданной програм ме, которая строго индивидуальна в зависимости от вида сте рилизуемых материалов.
Автоклав состоит из двух металлических цилиндров раз ного диаметра, входящих один в другой, свободное простран ство между ними через водомерное стекло заполняется водой (рис. 2). Внутренний ци линдр — стерилизацион ная камера — заполняется стерилизуемым материа лом в биксах, в упаковках из хлопчатобумажной тка ни или крафтбумаги. Во допаровая камера обору дована термометром, ма нометром с предохрани тельным автоматическим клапаном, который сраба тывает при нарастании в стерилизационной камере.
Стерилизация перевя зочного материала и опе рационного белья может
Рис. 2. Вертикальный автоклав
25
проводиться в следующих режимах: при давлении 1,5 атм — 45 мин; 2 атм — 30 мин.
После окончания стерилизации биксы остаются некото рое время в горячем автоклаве для просушки их содержимо го при приоткрытой дверце автоклава. Перед выгрузкой бик сов из автоклава закрывают отверстия в стенках бикса, отме чают дату стерилизации на бирке, прикрепленной к ручке бик са. В закрытом биксе перевязочный материал и операцион ное белье сохраняют стерильность 72 ч.
Наиболее достоверным методом контроля за стерильностью при стерилизации паром под давлением яв
ляется бактериологический, который не только может свиде тельствовать об инфицировании стерилизуемых объектов, но и указывать вид микробной флоры и ее особенности. Резуль таты посевов могут быть получены через 48–72 ч.
Такой контроль проводится не реже 1 раза в месяц и ре гистрируется в соответствующем журнале. Для повседневной оценки стерильности обычно используют химические веще ства, которые изменяют физические свойства при 120–132°C. Это порошок серы, бензойная кислота с фуксином, Dманно за, никотинамид. Наиболее часто используют смесь бензой ной кислоты с фуксином, которая при температуре 120°C из меняет цвет на фиолетовый. При отсутствии стандартного ин дикатора его приготовляют самостоятельно. Beщество насы пают в небольшую пробирку, закупоривают кусочком ваты и помещают среди объекта, подлежащего стерилизации. Если индикатор не изменился (не расплавился, не изменил цвет), то стерилизации не произошло и материалом пользоваться нельзя. В последнее время выпускают термоиндикаторную бу магу, изменяющую свой цвет в зависимости от определенной температуры и времени экспозиции.
Газовая стерилизация окисью этилена оказывает бакте рицидное влияние путем физической и химической адсорб ции на стерилизуемые изделия из полимерных материалов (эндоскопы, изделия из пластмасс).
Созданы специальные газовые стерилизаторы, в которых создается определенная концентрация газов и влажность. Вре мя стерилизации в зависимости от вида стерилизуемого ма териала — от 3 до 24 ч.
Применяется смесь оксида этилена с бромидом метила (смесь ОБ, ОКЭМБ) в соотношении 1 : 2,5. Стерилизацию про
26
изводят в упаковке из полиэтиленовой пленки в пергамент ной бумаге, в бумажных пакетах.
После газовой стерилизации предметы могут быть ис пользованы только после выхода проникшего в их глубину газа. Для этого все стерилизованные объекты должны нахо диться в вентилируемом помещении в течение 1 сут. — для изделий из металла и стекла, 5 сут. — для изделий из резины и полимеров, 14 сут. — для изделий, предназначенных для дли тельного контакта с раневой поверхностью (свыше 30 мин), 21 сут. — для изделий, используемых в педиатрии.
Лучевая стерилизация — ионизирующее излучение, ульт рафиолетовое облучение.
Воздействие γлучами применяется для стерилизации шов ного материала, эндопротезов, медицинских изделий однора зового пользования (шприцы, катетеры, лекарственные ра створы и др. ). Стерилизация надежна, а так как предметы сте рилизуют в герметичной упаковке, стерильность их сохраня ется многие месяцы.
Подготовка рук хирурга к операции
Обработка рук медицинского персонала, участвующего в операции (хирургов, операционных медсестер), обязательна. На здоровой коже кистей рук обнаруживается 10% патоген ных и 90% сапрофитных непатогенных микроорганизмов.
В настоящее время выделяют три категории обработки рук:
Гигиеническое мытье рук — перед осмотром больного и после этого.
Гигиеническая асептика рук — до и после диагности ческих, терапевтических манипуляций, а также после контак та с инфекционным больным.
Хирургическая асептика — предупреждение заноса с рук хирурга и других медицинских работников в операционную рану микробов и развития в связи с этим послеоперационных инфекционных осложнений.
При более длительных операциях проводится повторная обработка рук антисептиком.
Антисептик кожи септоцид Р плюс соответствует евро пейскому стандарту антисептических препаратов, предназ начен для проведения хирургической антисептики рук перед любым хирургическим вмешательством. Препарат обладает
27
бактерицидным, вирулоцидным, фунгицидным и противоту беркулезным действием в течение 3 ч после обработки.
Хирургическая антисептика рук и способы ее проведения
К современным нестандартным методам относятся после довательно проводимая механическая и химическая обработ ка рук, воздействие антисептических средств и дубление.
Механическая обработка состоит в мытье рук под проточ ной водой с мылом в течение 1 мин. Руки тщательно моют до верхней трети предплечий.
После механической обработки руки просушивают стериль ной салфеткой или полотенцем и воздействуют антисептика ми. Наиболее часто применяются следующие антисептики.
Обработка рук 2,4%&ным раствором первомура — смесь муравьиной кислоты, водорода пероксида и воды. Готовится по мере надобности. При соединении указанных ингредиен тов образуется муравьиная кислота, которая является эффек тивным антисептиком. Руки моют в тазу с антисептиком в те чение 1 мин.
При обработке рук первомуром на поверхности кожи обра зуется тонкая пленка, закрывающая поры, дубление кожи кис тей при этом не требуется. Антисептический эффект сохраняет ся в течение 2 ч. Недостатком применения первомура является то, что он может вызывать раздражение кожи и дерматиты.
Обработка рук 0,5%&ным спиртовым раствором хлоргек& сидина (хибискраб). Гибитан выпускается в виде 20%ного
водного раствора в стеклянных бутылках емкостью по 500 мл. Для получения 0,5%ного спиртового раствора препарат раз водят в 70%ном этиловом спирте в соотношении 1 : 40. Об рабатывают руки тремя тампонами, смоченными раствором, по 1 мин каждым.
После обработки любым из применяющихся способов для выполнения оперативного вмешательства необходимо наде вать перчатки для одноразового использования, которые сте рилизуются γлучами или окисью этилена в заводских усло виях. После надевания перчаток перед проведением опера ции их обрабатывают салфеткой, смоченной спиртом.
Методы обработки операционного поля. Санитарногиги еническая обработка включает принятие гигиенической ван ны или душа, смену нательного и постельного белья накануне
28
операции. Волосяной покров в области операционного поля сбривают за 5–2 ч до начала операции. На операционном сто ле кожу операционного поля обезжиривают 70%ным раство ром спирта (бензином, эфиром), затем 4 раза обрабатывают 1%ным раствором йодоната, по методу Филончикова—Грос сиха — обработка кожи области операционного поля перед ог раничением стерильным бельем, перед разрезом, после нало жения швов и после ушивания операционной раны.
В настоящее время для обработки кожи операционного поля используют йодонат, йодопирон, хлоргексидина биглю конат и др.
Для обработки операционного поля могут применяться также велопосепт, 1%ный раствор дегмицина, 1%ный ра створ роккала, септоцид К1 плюс и септоцид К2 плюс.
Кожу операционного поля протирают стерильной однора зовой салфеткой (ватномарлевым тампоном), смоченной ан тисептиком (5 мл), в течение 5 мин, затем другой салфеткой (тампоном) втирают 5 мл антисептика в течение 5 мин. Анти септик высыхает спустя 1–2 мин после окончания обработки. В конце операции и после наложения швов края раны в тече ние 30 с смазывают антисептиком.
Для обработки слизистых оболочек перед операцией при меняют 1%ный раствор бриллиантового зеленого, 3%ный ра створ водорода пероксида, 1%ный раствор йодоната или йодо пирона, 0,5%ный раствор гибитана.
1.2.3. Профилактика имплантационной
инфекции. Стерилизация шовного материала
Многие материалы, применяемые в процессе операции, длительно или навсегда остаются в организме больного.
Имплантация — внедрение, вживление в организм боль ных чужеродных материалов (шовный материал, протезы, ме таллоконструкции и т. д. ) с лечебной или косметической це лью (шовный материал, имплантируемые металлоконструкции, винты, гвозди и др. ). Имплантационный путь контаминации ран, органов или тканей имеет 100%ную контагиозность. По этому профилактика распространения имплантационной кон таминации состоит в строжайшем соблюдении стерильности всего, что вживляется в организм и остается навсегда или на продолжительный промежуток времени.
29
В организме больного, где существуют благоприятные ус
Рекомендовано к покупке и прочтению разделом по хирургии сайта https://meduniver.com/
ловия, микроорганизмы не погибают, размножаются, вызывая нагноение. Инородное тело в последующем длительно под держивает воспалительный процесс или создает очаг дрем лющей инфекции. Возможные источники имплантационной инфекции: шовный материал; дренажи; катетеры; протезы; сшивающие скобки, шурупы, стержни для металлоостеосин теза и др.
Самым надежным способом стерилизации всех имплан
татов, за исключением органов и живых тканей, является сте рилизация γлучами.
Наиболее часто имплантационным и возможным источни
ком имплантационной инфекции является шовный материал.
Известно, что от качества химического состава, структуры
шовного материала зависит реакция тканей на его имплантацию.
Лучшими считаются нити, впаянные в иглу и являющиеся
как бы ее продолжением.
Классификация шовных материалов
По способности к биодеструкции выделяют:
— рассасывающиеся: кетгут, коллаген, викрил, материалы
на основе целлюлозы;
— нерассасывающиеся: полиэфиры (шелк, капрон, лавсан,
полипропилен, металлические скобки, хлопчатобумаж ные и суровые нити).
В последнее время разработаны новые рассасывающие
ся шовные материалы — полидиаксонон (PDS) и максон, по& лисорб. Капроновые нити обладают высокой прочностью, вы зывают выраженную реакцию со стороны тканей, выпускают ся в виде крученых, плетеных и мононитей. Лавсановые —по лиэфирные нити более инертны, не вызывают тканевой реак ции. Полипропилен имеет большую надежность узла, облада ет высокой инертностью, прочностью, эластичностью.
Стерилизация шовного материала
Основным методом является γлучевая стерилизация шов
ного материала в заводских условиях. В хирургических ста ционарах стерилизуют только шелк, капрон и лавсан.
Нити стирают в теплой воде с мылом, просушивают в сте
рильной простыне, нарезают на лигатуры, наматывают на пред
30
Соседние файлы в папке @xirurgi_2025