Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии
.pdf
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 71
как агрегации, так и фрагментации. Процессы агрегации белков при этом связывают с образованием между ними битирозиновых сшивок, что препятствует регистрации карбонильных групп. Показано, что окисленные белки зна чительно быстрее подвергаются протеолизу, чем в результате чего образуются низкомолекулярные олигопептиды. По-видимому, ускорение процессов агрегации, фрагментации и протеолиза окислительно-модифицированных белков и является причиной снижения регистрируемого количества карбонильных групп в белках при гипотермии 20 °С.
Таблица 16 Содержание карбонильных групп (нмоль/мг белка) в белках плазмы крови
крыс при гипотермии и введении даларгина (М±m; n=6–8)
Группа |
Исходный уровень |
Прирост карбонильных групп |
|
карбонильных групп |
за 15 мин при окислении |
||
|
спонтанном |
Fe-зависимом |
|
Нормотермический контроль |
1,50±10,06 |
3,56±0,10 |
57,24±1,48 |
+даларгин |
1,44±0,12 |
2,85±0,12*+ |
52,63±1,28* |
Гипотермия 30 °С |
3,91±0,10* |
3,72±0,13 |
58,82±1,42 |
+даларгин |
3,07±0,19*+ |
3,03±0,13*+ |
53,56±1,67+ |
Гипотермия 30 °С, пролонгированная 3 ч |
4,47±0,14*+ |
6,43±0,18*+ |
94,19±3,91*+ |
+даларгин |
4,47±0,19* |
6,42±0,12* |
90,13±4,76 * |
Гипотермия 20 °С |
1,97±0,22*+ |
3,03±0,14*+ |
49,38±2,06*+ |
+даларгин |
1,64±0,13 |
3,28±0,08* |
49,64±1,46* |
Примечание. р<0,05: * – по сравнению с контролем,+ – по сравнению с гипотермией 30 °С.
Введение даларгина контрольным животным не влияет на исходное содержание карбонильных групп в белках, однако незначительно, но достоверно снижает их накопление в модельной системе. Даларгин оказывает слабое за щитное воздействие при умеренной гипотермии, однако при пролонгированной умеренной и глубокой гипотермии введение даларгина оказывается совершенно неэффективным.
Низкий антиоксидантный защитный эффект даларгина в отношении белков плазмы крови при умеренной гипотермии и его полное отсутствие при удлинении ее сроков, по-видимому, связаны с тем, что он быстро (за
7–13 мин) расщепляется в плазме крови протеолитическими ферментами. Кроме того, в использованной нами концентрации этот пептид не оказывает непосредственного антиоксидантного действия. Основным эффектом даларгина считается предотвращение им стрессорной активации катаболических процессов и связанной с этим генерации АФК. Свое действие даларгин реализует
через взаимодействие со специфическими рецепторами на мембране клеток
72 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
различных тканей, в том числе клеток крови. На степень окислительной модификации белков плазмы при гипотермии даларгин, по-видимому, может ока зать лишь опосредованное влияние путем предотвращения накопления АФК и устранения утечки окисленных белков и прооксидантов из клеток и тканей в плазму крови.
Таким образом, умеренная гипотермия, в особенности пролонгированная, существенно ускоряет окислительную модификацию белков, а введение даларгина при этом не дает существенного защитного эффекта.
3.12. ВЛИЯНИЕ ДАЛАРГИНА НА СОДЕРЖАНИЕ БЕЛКОВЫХ И ЛИПИДНЫХ КОМПОНЕНТОВ ПРИ ГИПОТЕРМИИ
Падение температуры тела для строгих гомойотермов является чрезвычайной ситуацией. Развивающийся при этом холодовой стресс активирует гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковую систему, в результате чего резко усиливаются синтез и секреция катехоламинов и глюкокортикоидов. Под действием этих гормонов ускоряются процессы мобилизации депонированных липидов и гликогена, их утилизация в тканях. Об активации катаболических процессов в тканях на начальных этапах свидетельствуют результаты, полученные при исследовании содержания липидных, углеводных и белковых компонентов в крови и тканях.
Впоследние годы получены убедительные данные, свидетельствующие
оспособности опиоидных пептидов, в частности аналога лей-энкафалина гексапептида даларгина, препятствовать развитию стресса и стрессорной активации метаболических процессов. Даларгин уменьшает избыточный синтез и секрецию ряда гормонов, участвующих в реализации стресса, а также стабилизирует биохимический состав крови. Можно ожидать, что стабилизирующее влияние на биохимический состав крови даларгин окажет и в условиях гипотермического стресса.
Вданной работе исследовано содержание общего белка, альбумина, мочевины, холестерина и триглицеридов в сыворотке крови крыс при гипотермии разной глубины и в ближайшем постгипотермическом периоде, а также выяснена возможность регуляции их содержания путем введения даларгина.
Работа выполнена па беспородных крысах-самцах массой 170–200 г. Гипотермию вызывали наружным охлаждением животного, снижая температуру тела до 30 и 20 °С. Животных исследовали через 1 и 7 суток после перенесенной гипотермии 20 °С. Даларгин вводили внутрибрюшинно (доза 100 мкг/кг массы) за 30 мин до холодового воздействия. Данная доза является оптимальной для проявления ряда биологических эффектов. Контрольным животным
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 73
вводили соответствующий объем физиологического раствора. В сыворотке крови определяли общее содержание белка, альбумина, мочевины, холестерина и триглицеридов на биохимическом анализаторе «Ультра-906» фирмы «Коне» (Финляндия) с использованием соответствующих тест-наборов (табл. 17).
Как видно из таблицы 17, при умеренной гипотермии обнаруживается тенденция к снижению содержания общего белка и альбумина (ОБА) в сыворотке крови, что, видимо, связано с усилением их распада, выходом из сосудистого русла в результате увеличения проницаемости стенок сосудов.
При дальнейшем снижении температуры тела (20 °С) ОБА повышается до контрольного уровня.
Таблица 17 Содержание белковых и липидных компонентов в сыворотке крови крыс
при гипотермии и введении даларгина (M±m; n=6–12)
Вариант опыта |
Общий белок, |
Альбумин, |
Мочевина, |
Холестерин, |
Триглицериды, |
|
г/л |
г/л |
моль/л |
ммоль/л |
моль/л |
||
|
||||||
Контроль |
64,8±0,3 |
33,7±0,3 |
5,22±0,21 |
1,44±0,07 |
0,74±0,04 |
|
Контроль+даларгин |
62,3±1,9 |
– |
5,53±0,41 |
1,41±0,06 |
0,56±0,05 |
|
Гипотермия: 30 °С |
59,3±1,5 |
28,8±1,0 |
5,95±0,22* |
1,87±0,34* |
1,23±0,12* |
|
30 °С+даларгин |
65,7±3,1 |
– |
5,54±0,17 |
1,57±0,12* |
0,91±0,04** |
|
20 °С |
63,7±2,1 |
32,2±0,6 |
7,17±0,43* |
3,23±0,43* |
0,94±0,05* |
|
20 °С+даларгин |
64,9±2,7 |
– |
7,50±0,33** |
2,00±0,22** |
0,81±0,11 |
|
После самосогревания: |
|
|
|
|
|
|
через 1 сут. |
53,4±2,1 |
27,8±0,4* |
5,40±0,24 |
1,81±10,20 |
0,94±0,11 |
|
через 7 сут. |
59,4±2,3 |
31,5±1,1 |
5,08±0,30 |
3,50±10,17* |
0,75±0,05 |
Примечание. * – достоверные (Р<0,05) различия относительно контроля, ** – относительно соответствующего уровня гипотермии без введения даларгина.
Через сутки после перенесенной гипотермии 20 °С количество ОБА достоверно снижается, что в основном связано с торможением его синтеза и частично за счет усиления распада. К концу первой недели после самосогревания содержание ОБА в сыворотке полностью нормализуется.
Даларгин, введенный контрольным животным за 30 мин до декапитации, не влияет на содержание ОБА, способствует его стабилизации при низких темпера
турах, что, видимо, связано со способностью даларгина регулировать осмотическое давление крови, улучшать гемо- и лимфоциркуляцию, предотвращать катаболические процессы.
Для состояния гипотермии характерно повышение уровня мочевины в крови и тканях. Нами также обнаружено повышение содержания мочевины в сыворотке крови при гипотермии, причем оно увеличивается с понижением температуры. Это
74 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
связано как с повышенным поступлением из тканей, так и со снижением скорости ее экскреции при низких температурах тела, о чем свидетельствуют ускорение протеолитических процессов и повышение активности аргиназы тканей, в особенности печени, а также существенное снижение клубочковой фильтрации.
В постгипотермическом периоде уровень мочевины в сыворотке полностью нормализуется.
Введение даларгина существенно не изменяет содержание мочевины в сыворотке крови контрольных животных, не влияет на содержание мочевины и при гипотермии 30 °С. Однако при гипотермии 20 °С даларгин не только не предотвращает повышение содержание мочевины в сыворотке, но и способствует дальнейшему росту ее уровня. Возможно, что при глубокой гипотермии даларгин полностью прекращает экскрецию мочевины, поскольку наряду с существенным снижением клубочковой фильтрации проявляется и антидиуретический эффект пептида.
Исследование липидных компонентов показало, что при гипотермии существенно (в 2 и более раз) повышается содержание холестерина в сыворотке. Повышение в той или иной мере уровня общего холестерина в крови и увеличение доли его свободной формы были обнаружены и ранее.
Повышение содержания холестерина в сыворотке крови при гипотермии связано, с одной стороны, с существенным ускорением его синтеза в печени и поступлением в кровь, с другой – замедлением процесса его выведения из крови. Нельзя исключить поступление холестерина в плазму из мембран клеток. При гипотермии обнаружено снижение содержания холестерина в мембранах эритроцитов крыс.
Как видно из таблицы, изменения в обмене холестерина, возникшие в ходе
снижения температуры тела, не исчезают в постгипотермическом периоде. Оказалось, что через сутки после самосогревания содержание холестерина в сыворотке снижается относительно гипотермии, но еще полностью не нормализуется. Однако через 7 суток после гипотермии содержание холестерина в сыворотке вновь увеличивается и в 2,5 раза превышает контрольный уровень.
Инъекция даларгина контрольным животным не оказывает влияния на содержание холестерина в сыворотке крови. В условиях низкой температуры тела даларгин препятствует повышению содержания холестерина в крови. При этом даларгин более эффективен при умеренной гипотермии.
Обнаружено, что однократная инъекция крысам с острой гиперхолестеринемией даларгина эффективно предотвращает возрастание уровня холестерина к крови. Гипохолестеринемическое действие даларгина авторы обнаружили у людей с облитерирующим атеросклерозом, получившим этот препарат. По данным, введение даларгина предотвращало повышение в крови крыс процентное содержание ЛПНП и ЛПОНП, возникшее при предварительной холестериновой нагрузке. Видимо, гипохолестеринемическое действие даларгин оказывает за счет снижения холестерина аэрогенных фракций липопротеидов.
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 75
Наряду с холестерином при гипотермии возрастает содержание и триглицеридов. Так, у животных с температурой тела 30 °С их содержание в сыворотке возрастает на 66 %. При гипотермии 20 °С содержание триглицеридов снижается, но все же на 27 % превышает контрольный уровень. Нормализация уровня триглицеридов в сыворотке крови в постгипотермическом периоде нами обнаружена только на 7-е сутки.
Оказалось, что у контрольных животных даларгин заметно (23 %) снижает
всыворотке крови содержание триглицеридов. В условиях гипотермии даларгин
вопределенной мере препятствует их повышению.
Наиболее выраженное действие оказывает даларгин на содержание липидных компонентов крови, гиполипидемическое действие даларгина при экстремальных состояниях связывают с его способностью предотвращать стрессорное повышение содержали, катехоламинов и глюкокортикоидов в тканях и крови и устранять их периферические эффекты.
Таким образом, полученные нами результаты показывают, что особенно на начальных ее этапах, существенно изменяется содержание белковых и липидных компонентов в сыворотке крови. Нормализация их уровня, за исключением холестерина, происходит на 7-е сутки после самосогревания. Даларгин, введенный до начала снижения температуры тела, в основном предотвращает изменение биохимического состава крови, вызываемое гипотермией.
3.13. ВЛИЯНИЕ ГИПОТЕРМИИ НА ПОГЛОЩЕНИЕ АМИНОКИСЛОТ
СРЕЗАМИ МОЗГА
Исследована интенсивность поглощения меченых С14-глутамата, аспартата, γ-аминомасляной кислоты, валина, гистидина и аминоизомасляной кислоты срезами мозга охлажденных (20 °С) крыс. Инкубация срезов мозга при 37 °С у охлажденных крыс не приводила к выраженным сдвигам по сравнению с нормотермическими животными. Инкубация срезов мозга гипотермических животных при 20 °С снижала интенсивность поглощения аминокислот по сравнению с инкубацией при 37 °С. Результаты показали, что соотношение максимального поглощения аминокислот (за исключением аминоизомасляной кислоты и гистидина) при температуре инкубации срезов 37 °С и 20 °С у гипотермических крыс возрастало по сравнению с таковым у нормотермических животных. У охлажденных до 20 °С крыс поглощение каждой отдельной аминокислоты срезами мозга изменяется в различной степени в зависимости от времени инкубации (5, 10, 15 и 30 мин).
Аминокислоты в мозге играют полифункциональную роль. Содержание аминокислотного фонда в ткани мозга зависит от активности их транспорта и метаболизма. Компартментализация аминокислот определяется избирательным
76 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
транспортом и различной способностью клеточных структур поглощать аминокислоты. Установлено, что по транспортному механизму в срезах мозга аминокислоты делятся на 18 различных классов. Такое многообразие обусловлено длиной углеродной цепи, местом расположения и характером функциональных групп в молекуле аминокислот, а также ингибирующим влиянием их самих на поглощение из среды. Важной характеристикой транспорта аминокислот в срезах мозга является установление равновесия их поглощения в динамике времени инкубации. Срезы мозга аккумулируют аминокислоты в зависимости oт присутствия К+, Na+ и содержания АТР. Для транспорта всех аминокислот характерна температурная зависимость. Общее охлаждение теплокровного организма приводит к значительному изменению в мозге энергетического обмена и аминокислотного фонда, что может сказаться на клеточном транспорте аминокислот в тканях мозга. В то же время ранее нами не был обнаружен эффект гипотермии на транспорт аминокислот из циркулирующей крови в мозг.
Целью работы явилось изучение влияния глубокой гипотермии на поглощение аминокислот срезами мозга в зависимости от температуры и времени инкубации.
Эксперименты проведены на крысах линии Вистар массой 250–275 г. До начала опытов животным внутрибрюшинно в течение 30 мин вводили хлоралгидрат (380 мг/кг массы тела). Охлаждали крыс в ледяной воде. Температуру измеряли ректально и в среднем ухе, а после обезглавливания в самой ткани мозга. При пребывании в холодной воде 50–55 мин температура среднего уха и мозга снижалась до 20 °С, а ректальная при этом была на 2–3 °С ниже. Для опытов использовали
только тех животных, у которых температура ткани мозга после декапитации равнялась 20 °С. В отдельной серии экспериментов в кровь охлажденных крыс вводили синюю краску. При температуре мозга, равной 20 °С, выход краски не наблюдался, следовательно, в данных условиях мозг механически не повреждался. Контрольных и подопытных крыс декапитировали, быстро извлекали мозг (без мозжечка), очищали от крови. Из обоих полушарий головного мозга готовили срезы (0,4 мм) при помощи микротома Мак-Ильвейна. Срезы инкубировали в среде, содержащей в мМ: NaCl – 119; KCl – 5,0; CaCl2 – 0,75; MgCl2 – 12; NaH2PO4 – 1,0; глюкозы – 10 и N-2-гидроксиэтилпиперазин-N-2-этансульфаниловой кислоты – 25. Добавлением NaOH рН среды доводили до 7,35.
Инкубацию срезов мозга (140 мг ткани на 5 мл среды) проводили в водяной бане при 37 °С и 20 °С. Через 30 мин в среду добавляли меченые аминокислоты (0,05 мкКu/5 мл) фирмы «New England Nuclear» при конечной концентрации 1 мМ для L-аспартата, L-валина, D-глутамата, γ-аминомасляной кислоты, L-гистидина и 2 мМ для α-аминоизомасляной кислоты. Выбор указанных аминокислот для исследования продиктован тем, что изучены динамическое равновесие, кинетические параметры и энергия активации поглощения этих аминокислот в срезах мозга
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 77
интактных животных. Все выбранные 5 аминокислот и аналог γ-аминомасляной кислоты α-аминоизомасляная кислота относятся к отдельным транспортным классам по длине углеродной цепи, месту расположения, характеру и количеству функциональных групп.
Для определения интенсивности поглощения аминокислот инкубацию срезов продолжали 5, 10, 15 и 30 мин. После инкубации срезы мозга фильтровали, замораживали с помощью сухого льда, взвешивали, гомогенизировали в 2 мл 3 %-ного раствора хлорной кислоты и через 15 мин центрифугировали. 0,5 мл надосадочной жидкости добавляли к 15 мл сцитилляционной жидкости и измеряли радиоактивность на сцинтилляционном счетчике Interlechnique SL 30, Teledyne (США). Величину поглощения аминокислот срезами мозга выражали в мкмоль меченых аминокислот, включенных в ткань мозга. Для вычисления внеклеточного пространства использовали С14-карбоксиинулин. В параллельных опытах с добавлением немеченого инулина определяли содержание воды высушиванием срезов при 95 °С (48–72 ч) до постоянного веса.
Таблица 18 Поглощение меченых аминокислот (мкмоль/мл внутриклеточной жидкости) срезами мозга крыс, охлажденных до 20 °С (n=6; время инкубации 30 мин)
|
|
|
|
|
|
Аминокислоты |
Контроль нормотермия |
Гипотермия (20 °С) |
|||
(36–37 °С) |
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
Температура инкубации |
|
||
|
37 °С |
|
20 °С |
37 °С |
20 °С |
Глутамат |
31,97±0,43 |
|
19,57±0,44 |
32,55±0,65 |
16,28±0,60 |
Аспартат |
31,54±0,99 |
|
20,85±0,04 |
36,01±0,71 |
18,41±0,25 |
ГАМК |
28,72±1,40 |
|
13,01±0,56 |
29,64±0,44 |
7,46±0,31 |
Аминоизомасляная кислота |
18,08±0,28 |
|
1,93±0,02 |
16,69±0,09 |
3,59±0,18 |
Валин |
5,40±0,13 |
|
4,43±0,03 |
8,11±0,43 |
5,72±0,30 |
Гистидин |
11,93±0,21 |
|
4,43±0,21 |
14,71±0,52 |
5,04±0,04 |
Результаты, приведенные в табл. 18, показали, что поглощение аминокислот в срезах мозга контрольных нормотермических крыс значительно снижалось при температуре инкубации 20 °С по сравнению с таковым при 37 °С, что совпадает с литературными данными. Наибольшее снижение поглощения наблюдалось для аминоизомасляной кислоты – 9,3, γ-аминомасляной кислоты – 2,2, гистидина – 2,7 раза.
Представляло интерес изучение поглощения указанных аминокислот срезами мозга крыс, предварительно охлажденных до 20 °С. Проведенные исследования показали, что у охлажденных до 20 °С крыс поглощение аминокислот срезами мозга при инкубации 37 °С не подвергалось выраженным сдвигам по сравнению с нормотермическими животными. Примечательно, что инку-
бация срезов мозга гипотермических животных при 20 °С также приводила
78 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
к снижению интенсивности поглощения по сравнению с инкубацией при 37 °С. Из опытов следует, что интенсивность поглощения аминокислот при 20 °С, за исключением аминоизомасляной кислоты и гистидина, у гипотермических животных снижалась значительно больше, чем у нормотермических животных. Наибольшее снижение поглощения в срезах гипотермических животных при температуре инкубации 20 °С по сравнению с таковым при 37 °С наблюдалось для аминоизомасляной кислоты – в 4,6, γ-аминомасляной кислоты – 4, гистидина – 2,9, глутамата и аспартата – 2 раза.
Мы вычисляли соотношение поглощения аминокислот срезами мозга у нормо- и гипотермических крыс (табл. 19) при температуре инкубации 37 °С и 20 °С. Оказалось, что за исключением аминоизомасляной кислоты и гистидина для всех аминокислот у нормо- и гипотермических крыс при температуре инкубации 20 °С оно было гораздо выше, чем при 37 °С.
Таблица 19 Соотношение поглощения аминокислот срезами мозга у нормо- и гипо
термических (20 °С) крыс при температуре инкубации 37 и 20 °С (время инкубации 30 мин)
|
|
|
Аминокислоты |
37 °С |
20 °С |
Глутамат |
0,98 |
1,20 |
Аспартат |
0,88 |
1,95 |
ГАМК |
0,97 |
1,74 |
Аминоизомасляная кислота |
1,08 |
0,53 |
Валин |
0,68 |
0,90 |
Гистидин |
0,81 |
0,88 |
При этом из сильнокислых аминокислот в большей степени повышалось соотношение поглощения аспартата. Видимо, охлаждение организма изменяло транспортную систему аминокислот, связанную с длиной углеродной цепи, что приводило к снижению сродства поглощения аминокислоты с короткой углеродной цепью. Значительно увеличилось при температуре инкубации 20 °С соотношение поглощения γ-аминомасляной кислоты у нормо- и гипотермических крыс. В то же время степень повышения этого соотношения для валина была гораздо ниже, чем для γ-аминомасляной кислоты (табл. 19). По-видимому, снижение температуры тела оказывало неодинаковый эффект, а транспортный механизм нейтральных аминокислот (γ-аминомасляной кислоты и валина). В литературе имеются сведения о том, что на транспортную систему аминокислот влияет место расположения аминогруппы в ее молекуле. Соотношение поглощения аминокислоты с гетероциклической цепью – гистидина срезами мозга при температуре инкубации 20 °С у нормо- и гипотермических крыс увеличивалось незначительно
(на 0,07) по сравнению с таковым при температуре инкубации 37 °С.
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 79
Полученные результаты показали, что различная степень влияния гипотермии на поглощение аминокислот срезами мозга, видимо, объясняется не только прямым эффектом низкой температуры тела на различные чувствительные системы клеточного транспорта аминокислот, но и косвенным влиянием ее на метаболизм аминокислот в тканях мозга. Как видно (табл. 18 и 19), поглощение метаболически инертной аминоизомасляной кислоты и срезах мозга охлажденных крыс значительно отличалось от поглощения аминокислот, обладавших высокой метаболической активностью в тканях голодного мозга. Известно, что на транспорт аминокислот in vitro влияют эндогенные превращения аминокислот.
Концентрация поглощенных аминокислот
35 |
а |
|
2 |
б |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
30 |
|
|
1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
25 |
|
|
|
|
|
|
20 |
|
|
3 |
|
|
|
15 |
|
|
4 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
10 |
|
|
|
|
|
|
5 |
|
|
|
|
|
|
|
10 |
20 |
30 |
10 |
20 |
30 |
Время инкубации в мин
Рис. 1. Зависимость поглощения глутамата (а) и аспартата (б) срезами мозга контрольных (нормотермических) и охлажденных до 20 °С (гипотермических) крыс (мкмоль/мл внеклеточной жидкости) от времени и температуры инкубации. Здесь и на рис. 2: 1 – контрольные животные, 2 – гипотермические (инкубация при 37 °С); 3 – контрольные, 4 – гипотермические (инкубация при 20 °С)
В этом отношении интерес представляют результаты по измерению
активности поглощения аминокислот срезами мозга охлажденных крыс
80 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
в динамике инкубации (рис. 1, 2). Динамика транспорта глутамата, аспартата, γ-аминомасляной кислоты и гистидина в срезах мозга в течение 5, 10, 15
и 30 мин у нормотермических и охлажденных (20 °С) крыс при температуре инкубации 37 и 20 °С различалась. Для глутамата поглощение срезами мозга контрольных и охлажденных животных при инкубации 37 °С в течение всего периода инкубации не подвергалось существенным сдвигам (рис. 1). При инкубации срезов в условиях 20 °С гипотермия приводила к снижению интенсивности поглощения глутамата во время всего периода инкубации. Поглощение аспартата в срезах контрольных и охлажденных животных при температуре 37 и 20 °С нарастало в одинаковой степени в течение всего периода инкубации.
|
30 |
|
2 |
|
|
|
|
|
1 |
б |
|
|
|
аминокислот |
а |
|
|
|
||
25 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
поглощенных |
20 |
|
|
|
|
|
15 |
|
3 |
|
|
|
|
Концентрация |
10 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
4 |
|
|
|
|
5 |
|
|
|
|
|
|
10 |
20 |
30 |
10 |
20 |
30 |
|
|
Время инкубации в мин |
|
|
||
Рис. 2. Зависимость поглощения γ-аминомасляной кислоты (а) и гистидина (б) срезами мозга контрольных (нормотермических) н охлажденных до 20 °С (гипо термических) крыс (мкмоль/2 мл внутриклеточной жидкости) от времени
итемпературы инкубации
Уохлажденных крыс срезы мозга при 37 °С поглощали γ-аминомасляную кислоту из среды с той же интенсивностью, что у контрольных животных (рис. 2) через 5, 15 и 30 мин инкубации. К 10-й мин инкубации срезы мозга охлажденных крыс при этом несколько больше поглощали γ-аминомасляную
кислоту, чем срезы интактных животных. При температуре инкубации 20 °С
