Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии
.pdf
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 61
температуре 30 °С содержание глутамина в ткани их мозга почти такое же, как
уадаптированных нормотермических животных, но при дальнейшем охлаж-
дении до 25 и 20 °С его концентрация увеличивается соответственно на 27,3 и 36 % (табл. 13). Видимо, при охлаждении адаптированных к холоду крыс глутамин мозга не может быть источником освобождения аммиака. При принудительном охлаждении адаптированных к холоду крыс динамика содержания глутаминовой, аспарагиновой и гамма-аминомасляной кислот в мозге почти не претерпевает изменений.
Таким образом, система аммиак – глутаминовая кислота – глутамин мозга
уадаптированных к холоду крыс при гипотермии приобретает большую лабильность и высокую активность, о чем свидетельствуют увеличение содержания глутамина и сохранение стабильной концентрации глутаминовой кислоты.
Изменения метаболизма мозга, возникшие под влиянием гипотермии
уадаптированных к холоду животных, сходны с нарушениями азотистого обмена.
Таблица 13 Содержание азотистых метаболитов в тканях головного мозга крыс,
адаптированных к холоду и подвергнутых гипотермии
|
Ректаль |
|
Содержание, мг % |
|
|||
Подопытные |
ная |
|
амидного |
аспара |
глутами |
гамма- |
|
азота |
амино |
||||||
животные |
темпера- |
азота |
гиновой |
новой |
|||
аммиака |
масляной |
||||||
|
тура, °С |
глутамина |
кислоты |
кислоты |
|||
|
|
|
|
|
|
кислоты |
|
Интактные (контроль) |
37 |
0,43±0,05 |
6,31±0,306 |
32,1±1,68 |
130,01±6,67 |
17,9±0,99 |
|
Нормотермические, |
|
|
|
|
|
|
|
адаптированные |
37 |
1,06±0,06 |
7,66±0,33 |
30,4±2,80 |
126,50±8,12 |
16,7±0,76 |
|
к холоду |
|
Р<0,001 |
Р<0,005 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||
Гипотермические, |
30 |
2,09±0,07 |
7,12±0,60 |
31,9±6,30 |
119,7±8,61 |
16,7±0,93 |
|
адаптированные |
|
|
|
|
|
|
|
к холоду |
|
|
|
|
|
|
|
|
25 |
3,20±0,15 |
9,25±0,23 |
33,8±1,89 |
121,12±7,26 |
16,5±0,78 |
|
|
|
Р<0,001 |
Р<0,002 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
P1<0,001 |
Р1<0,001 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
20 |
4,15±0,12 |
9,96±0,64 |
34,23±6,28 |
118,9±8,31 |
16,4±0,76 |
|
|
|
Р<0,001 |
Р<0,001 |
|
|
|
|
|
|
Р1<0,001 |
|
|
|
|
|
Примечание. Р – достоверность отличия по отношению к контролю, P1 – по отношению к предыдущему этапу охлаждения.
62 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
Литература
1.Векслер Я. И., Гершенович З. С. Система аммиак – глутаминовая кислота –
глутамин мозга крыс при разных фазах гипотермии // Укр. биохим. журн. 1962. Т. 34. № 3.
2.Гаевская М. С. Биохимия мозга при умирании и оживлении организма. М., 1963.
3.Гершенович З. С., Эмирбеков Э. З. Азотистый метаболизм головного мозга сусликов при гипотермии и совместном действии гипотермии и гипероксии // Укр. биохим. журн. 1968. T. 40. № 3.
4.Силакова А. И., Труш Г. П., Явилякова Д. Микрометод определения аммиака
иглутамина в тканевых трихлоруксусных экстрактах // Вопр. мед. химии. 1962. T. 8. вып. 8.
5.Шугалей В. С., Готлобер И. В., Кричевская А. А., Гершенович З. С. Чувстви тельность адаптированных к холоду и зимоспящих животных к действию повышенного давления кислорода // Теоретические проблемы действия низких температур на организм. Л., 1969.
6.Эмирбеков Э. З. Азотистый метаболизм при гипотермии и зимней спячке. Махачкала, 1969.
7.Эмирбеков Э. З., Гершенович А. З. Азотистый метаболизм мозга при гипотермии адаптированных к холоду крыс // Вопр. мед. химии 1966. вып. 4.
8.Dose K. Anwendung der Hochspannung sphoreographie bei der qi’antitativen totalanahse von proteinhydrolvsaten // Biochem. Journ. 1957. Vol. 329. № 4.
9.Seligson D., Seligson H. A microdiff usion method the determination of nitrogen liberated as ammonia // Journ. Lab. chim. Med. 1951. Vol. 32. P. 324.
3.9. Азотистый метаболизм головного мозга сусликов при гипотермии и совместном действии гипотермии
игипероксии
Изучение процессов освобождения и связывания аммиака в головном мозгу при экстремальных состояниях организма позволяет выяснить, в некоторой степени, специфическую роль этих процессов в деятельности нервной
системы.
Одним из таких состояний мы избрали искусственную гипотермию зимоспящего животного и комбинированное действие гипотермии и повышенного давления кислорода.
Опыты проводили в мае – июне на 60 сусликах (Citellus pygmaeus Pallas), отловленных на Кизлярскнх пастбищах (Дагестан).
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 63
Животных одинакового веса (200–250 г) охлаждали в холодовых одеялах до ректальной температуры 30, 20–19 и 11–10 °С. Температуру тела снижали до
11–10 °С постепенно, в течение 60–65 мин. За 15–20 мин до начала охлаждения сусликов фиксировали в специальном станке. Для контроля брали бодрствующих сусликов. В одной из серий опытов охлажденных до 20–19 °С животных помещали на 30 мин в барокамеру, в которой с помощью медицинского кислорода создавали давление в 4 ат. Для дополнительного контроля бодрствующих сусликов подвергали 30-минутной гипероксии (4 ат.). По окончании экспозиции животному быстро отсекали голову, которая падала в сосуд с жидким воздухом. Мозг (большие полушария и отдельно мозжечок) извлекали в замороженном виде и в жидком воздухе растирали в порошок, который затем экстрагировали
втечение 20 мин 5 %-ной ТХУ на холоде; экстракт центрифугировали. В надосадочной жидкости определили свободный аммиак, глутамин; глутаминовую и γ-аминомасляную кислоты. Белковый осадок экстрагировали органическими растворителями и высушивали, чтобы освободить его от воды и липидов.
Высушенные навески ткани гидролизовали в 1-й. H2SO4 в течение 10 мин для определения лабильных амидных групп к 2 ч – для определения прочно связанных амидных групп. В гидролизате определяли освободившийся аммиак. Результаты статистически обработаны и приведены в таблицах в виде средних величин из десяти опытов.
Как видно из таблицы 14, концентрация глутамина, глутаминовой и γ-ами номасляной кислот в мозжечке контрольных животных намного меньше, чем
вбольших полушариях мозга.
Содержание аммиака в больших полушариях суслика при снижении температуры тела до 30 °С увеличивается почти в 7,1 раза, по сравнению с контролем. При охлаждении до температуры 20–19 °С содержание аммиака в больших полушариях снижается па 12,3 %, по сравнению с предыдущим этапом охлаждения.
Следует отметить, что, в отличие от крыс, у сусликов при температуре тела 20–19 °С не наблюдается состояния холодового наркоза. Холодовой наркоз у них наступает при температуре тела 11–10 °С. При этом содержание аммиака в больших полушариях мозга, по сравнению с охлаждением до 20–19 °С, снижается на 26,3 %, но остается в 3,4 раза выше, чем в контроле. Следовательно, высокое содержание освободившегося при гипотермии аммиака в больших полушариях мозга сусликов с дальнейшим углублением гипотермии несколько
снижается.
Искусственное снижение температуры тела суслика приводит к увеличению концентрации аммиака также и в мозжечке. Но закономерности изменения содержания аммиака в мозжечке и в больших полушариях различны. В мозжечке животных, охлажденных до 30 °С, содержится в три раза больше аммиака, чем в контроле. Снижение температуры до 20–19 °С еще больше
64 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
увеличивает его концентрацию. При холодовом наркозе (11–10 °С) содержание аммиака в мозжечке несколько ниже по сравнению с содержанием его при
охлаждении до 20–19 °С, но выше, чем в мозжечке сусликов с температурой тела 30 °С.
При охлаждении до 30 °С содержание глутамина в больших полушариях мозга сусликов остается на уровне контроля (табл. 14), а в мозжечке увеличивается на 26,7 %. При снижении температуры тела до 20–19 °С увеличивается содержание глутамина и в больших полушариях, и в мозжечке соответственно на 42,7 и 79,7 %. В состоянии холодового наркоза (температура тела 11–10 °С) содержание глутамина в больших полушариях мозга остается почти таким же, как и при охлаждении до 20–19 °С, а в мозжечке снижается на 26,8 %.
Таблица 14 Содержание аммиака, глутамина глутаминовой и γ-аминомасляной кислот
больших полушарий мозга и мозжечка суслика при гипотермии, гипероксии и совместном их действии, мг % (М±m)
Объект |
Азот |
Амидный азот |
глутаминовая |
γ-аминомасляная |
исследования |
аммиака |
глутамина |
кислота |
кислота |
|
|
Контроль |
|
|
|
|
|
|
|
Большие полушария |
0,488±0,049 |
6,98±0,343 |
129±4,2 |
26,3±0,9 |
Мозжечок |
0,536±0,050 |
6,73±0,433 |
122±8,1 |
18,9±0,8 |
|
|
|
|
|
|
Охлаждение до 30 °С |
|
|
|
|
|
|
|
|
Большие полушария |
3,440±0,270 |
6,50±0,350 |
104±1,2 |
19,0±1,0 |
Мозжечок |
1,636±0,080 |
9,58±0,096 |
0,33±4,5 |
28,5±1,4 |
|
|
|
|
|
|
Охлаждение до 20–19 °С |
|
|
|
|
|
|
|
|
Большие полушария |
3,007±0,147 |
10,95±0,465 |
146±2,9 |
26,0±1,0 |
Мозжечок |
2,088±0,013 |
12,10±0,082 |
106±5,1 |
13,6±0,6 |
|
|
|
|
|
|
Охлаждение до 11–10 °С |
|
|
|
|
|
|
|
|
Большие полушария |
2,214±0,033 |
10,35±0,333 |
129±2,4 |
22,5±1,2 |
Мозжечок |
1,877±0,032 |
7,86±0,215 |
121±7,4 |
26,9±0,9 |
|
|
|
|
|
|
|
Гипероксия |
|
|
|
|
|
|
|
Большие полушария |
0,98±0,11 |
7,81±0,39 |
180±6,3 |
28,9±1,20 |
Мозжечок |
0,60±0,030 |
7,08±0,474 |
184±5,2 |
28,6±1,22 |
|
|
|
|
|
|
Охлаждение до 20–19 °С – гипероксия |
|
||
Большие полушария |
3,16±0,190 |
10,6±0,403 |
148±6,92 |
39,3±1,16 |
Мозжечок |
2,23±0,037 |
9,34±0,367 |
140±8,00 |
7,1±0,76 |
|
|
|
|
|
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 65
Из табл. 14 видно, что динамика изменения содержания глутамино вой и γ-аминомасляной кислот в больших полушариях и в мозжечке также
различна.
Определение суммы амидных групп белков мозга на различных этапах охлаждения сусликов (табл. 15) показывает, что их содержание в больших полушариях и в мозжечке изменяется неодинаково. Но наблюдается перегруппировка лабильных и прочносвязанных амидных групп.
Вкоре больших полушарий при охлаждении тела сусликов до температуры 30, 20–19 и 11–10 °С отношение лабильных амидных групп к прочносвязанным соответственно равняется 0,43; 0,37 и 0,33 (в контроле – 0,64), а в мозжечке 0,43, 0,41 и 0,39 (в контроле –0,56).
Таким образом, при искусственном снижении температуры тела зимоспящего животного азотистый обмен в больших полушариях мозга и мозжечка изменяется по-разному. Общим для изучаемых отделов нервной системы является увеличение содержания аммиака при снижении температуры тела.
Врезультате предыдущих экспериментов установлено, что при гипотермии адаптированных к холоду крыс содержание аммиака в мозге увеличивается на 85,6 % по сравнению с неадаптированными животными при такой же темпера туре тела. Многократная гипотермия (7–13 раз) увеличивает концентрацию аммиака в мозге крыс больше, чем однократное охлаждение, причем последующие охлаждения животные переносят легче. Я. И. Векслером и З. С. Гершеновичем установлено, что в мозге крыс при охлаждении их до температуры 30 °С содержание аммиака составляет 2,11±0,39 мг %. В наших опытах при такой же температуре тела содержание аммиака в мозге суслика равно 3,445±0,270 мг %. Сопоставляя состояние зимоспящих и незимоспящих животных при гипотермии и содержание аммиака в мозге, можно сделать вывод, что освобождение аммиака в мозговой ткани имеет приспособительный характер при охлаждении животного.
Динамика азотистого обмена в мозге сусликов (табл. 14, 15) и крыс при 30-минутной гипероксии аналогична.
Нашими предыдущими опытами установлено, что взаимосвязи аммиакглутаминовой системы мозга крыс, устанавливающиеся при охлаждении до 20–19 °С, не изменяются при последующем действии кислорода под давлением
в4 ат.
Воздействие гипероксии (4 ат.) на охлажденных до 20–19 °С сусликов не сказывается на содержании аммиака, глутамина и глутаминовой кислоты в больших полушариях мозга (табл. 14); концентрация γ-аминомасляной кислоты при этом увеличивается на 51,1 %. В мозжечке количество глутамина снижается на 22,9, а γ-аминомасляной кислоты – на 47,8 %. При совместном действии
66 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
охлаждения до 20–19 °С и гипероксии содержание амидных групп в суммарных белках больших полушарий мозга сусликов остается таким же, как и при воз-
действии одного лишь охлаждения (табл. 15).
Полученные результаты свидетельствуют, что изменения азотистого обмена мозга, вызванные искусственным снижением температуры тела зимоспящего животного, устойчивы и лишь незначительно варьируют при воздействии кислорода под давлением 4 ат.
Таблица 15 Содержание амидных групп суммарных белков больших полушарий мозга
и мозжечка суслике при гипотермии, гипероксии и совместном их действии, в мкг на 1 мг сухого белка
|
Азот лабильных амид- |
Азот прочно |
|
Суммарный азот |
||
|
связанных |
|
||||
|
ных групп |
|
амидных групп |
|||
|
амидных групп |
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
Условия |
Большие |
Мозжечок |
Большие |
Мозжечок |
Большие |
Мозжечок |
опытов |
полушария |
полушария |
полушария |
|||
Контроль |
2,12±0,077 |
1,88±0,102 |
3,31±0,180 |
3,66±0,1б7 |
5,43±0,200 |
5,54±0,176 |
Охлаждение |
1,55±0,040 |
1,56±0,030 |
3,63±0,044 |
3,59±0,056 |
5,18±0,015 |
5,16±0,010 |
до 30 °С |
|
|
|
|
|
|
Охлаждение |
1,55±0,034 |
1,68±0,066 |
4,22±0,200 |
4,0±0,066 |
5,78±0,190 |
5,88±0,062 |
до 20–19 °С |
|
|
|
|
|
|
Охлаждение |
1,17±0,054 |
1,32±0,065 |
3,50±0,090 |
3,42±0,050 |
4,67±0,043 |
4,75±0,065 |
до 11–10 °С |
|
|
|
|
|
|
Гипероксия |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Охлаждение |
1,34±0,027 |
|
5,05±0,044 |
|
7,29±0,059 |
|
до 20–19 °С |
|
|
|
|
|
|
гипероксия |
1,46±0,30 |
|
4,41±0,47 |
|
5,87±0,125 |
|
При снижении температуры тела до 20–19 °С в мозге крыс и сусликов (табл. 14) устанавливается почти одинаковый уровень содержания аммиака (соответственно, 3,16±0,309 и 3,00±0,194 мг %). В то же время крысы находятся при этом в состоянии холодового наркоза, а суслики достаточно бодры. При гипотермии динамика азотистого обмена незимоспящих животных отличается от динамики этого про
цесса у зимоспящих. Гипероксия не изменяет установленного уровня содержания аммиака в мозге охлажденных подопытных животных. По-видимому, это связано не с абсолютной концентрацией аммиака в ткани мозга, а с изменением тех или иных ферментативных систем, участвующих в его обмене.
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 67
3.10. ВЛИЯНИЕ ВСКАРМЛИВАНИЯ АМИНОКИСЛОТАМИ
ИГИПОТЕРМИИ НА СОДЕРЖАНИЕ СВОБОДНЫХ
ИСВЯЗАННЫХ ДИКАРБОНОВЫХ АМИНОКИСЛОТ В МОЗГУ КРЫС
Гипотермия как метод минимализации метаболизма широко используется в биологии и медицине, и при искусственном снижении температуры тела теплокровного животного в результате дискоординации ферментативных реакций развивается ряд патологических процессов в разных органах и тканях, и прежде всего, в головном мозгу. Нарушенный гипотермией метаболизм аминокислот мозга не восстанавливается в течение длительного (45–60 дн.) периода. Благодаря полифункциональным свойствам аминокислоты используются в качестве добавок к пище для улучшения функции мозга, в качестве протекторных веществ при действии экстремальных факторов. Для таких нейроактивных аминокислот, как глутаминовая (глу), аспарагиновая (асп)
игамма-аминомасляная (ГАМК), характерны свободные и связанные с белками мембранными структурами формы.
Для нормального функционирования мозга, очевидно, важен не только абсолютный уровень аминокислот, но и соотношение их свободных и связанных форм.
Внастоящей работе изучаются количественные изменения как свободной, так и связанной форм глу, асп и ГАМК в мозге при вскармливании крыс смесью этих аминокислот и при дальнейшей глубокой гипотермии.
Вопытах использовали лабораторных крыс-самцов массой 150–200 г, экспериментальных животных разделяли на 2 группы: одной группе ежедневно добавляли в пищу смесь аминокислот из расчета: глу – 3 мг, асп – 7 мг
иГАМК – 3 мг на 100 г живой массы, а вторая группа служила контролем. Вскармливание животных аминокислотами продолжалось 60 дн. по раз-
работанной нами методике. Крыс, получавших обычный рацион и вскормленных аминокислотами, подвергали гипотермии в специальных холодовых камерах с циркулирующей водой (4-5°C). Температуру тела снижали так, чтобы они достигала. Температуру тела снижали так, чтобы она достигала 20–10 °С за 55–60 мин. Сеансы гипотермии (20 °С) повторялись 3 paзa в течение 4 дней.
Для изучения постгипотермического состояния животных вынимали из камеры и оставляли в лаборатории до восстановления нормальной температуры. Крыс исследовали сразу после самосогревания через 7 сут. Интактных и экспериментальных крыс быстро обезглавливали, раскрывали черепную коробку и доставали большие полушария мозга. Очищенный от крови мозг опускали в холодный раствор Рингера и гомогенизировали с тефлоновым пестиком.
68 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
Гомогенат в соотношении ткань-раствор Рингера 1:5 центрифугировали,
внадосадочной жидкости определяли содержание свободных аминокислот,
восадке – связанных. Для определения связанных аминокислот к осадку добавляли 1 мл раствора Рингера, затем 3,5 мл 15 %-ной ТХУ и оставляли на 30 мин при 0–2 °С. Центрифугированную надосадочную жидкость отделяли, к осадку добавляли 2,5 мл раствора Рингера и после рассуспендирования центрифугировали.
Полученную надосадочную жидкость сливали с первой порцией, центрифугировали и вываривали осадок (растворяли в 1 мл дистиллированной воды).
Определяли количество аминокислот электpoфoрезом на бумаге по Дозе. В результате 2-месячного вскармливания крыс смесью 8 мг глу, 7 мг асп и 3 мг на 100 г живой массы ГАМК значительно изменился фонд этих аминокислот
вбольших полушариях мозга. При этом снизилось содержание свободной и связанной глу, в 3,3 и 3 раза, свободной асп в 1 раз, увеличилось содержание связанной ГАМК в 2 раза по сравнению с таковым у интактных крыс. Изменение соотношения свободных аминокислот в тканях мозга влияет на метаболизм индивидуальных аминокислот, прежде всего нейроактивных на их транспортные механизмы и активность энергетических субстратов.
Нами установлено, что вследствие изменения соотношения свободных глу, асп и ГАМК сдвигается равновесие, в результате что последние, видимо, подвергаются модуляции.
Если у гипотермированных контрольных крыс соотношение свободной и связанной глу, асп и ГАМК – 4,74, 5,64 и 2,14; то у животных, получивших вместе с пищей смесь аминокислот, оно составляет – 2,54, 2,88 и 6,2.
Влияние вскармиливания смесью глу, асп, ГАМК и гипотермии 20–19 °С на содержание их свободной и связанных форм в больших полушариях мозга крыс, мкмоль/г свежей ткани.
Мы изучили состояние глубокой гипотермической патологии, подвергнув крыс трехкратному сеансу охлаждения. По нашим данным, в мозге у этих животных самые низкие уровни содержания глу, асп и ГАМК, как свободной, так и связанной форм. Количество свободных и связанных исследуемых аминокислот
вмозге при трехкратной гипотермии у вскормленных аминокислотами крыс почти соответствует таковому у гипотермических контрольных животных, в нишу которых аминокислоты не добавлялись. Оказалось, что при самосогревании после перенесенной трехкратной гипотермии (20–19 °С) уронит, абсолютного
содержания свободной и связанной форм глу и асп в мозге как контрольных, так и вскормленных аминокислотами крыс одинаков. Однако через 7 сут. после перенесенной гипотермии содержание связанной формы всех исследуемых аминокислот в мозге значительно повышается по сравнению с таковым у контрольных.
Анализ полученных данных позволяет сделать вывод о том, что изменение содержания свободных асп, глу и ГАМК в мозге при гипотермии объясняется,
Глава 3. Выборочные экспериментальные работы по влиянию гипотермии на метаболизм мозга 69
прежде всего, модификацией различных путей их метаболизма: глутаминазы, глутаматдекарбоксилазы, аминотрансферазы, активности энергетического
обмена. Видимо, в условиях гипотермии уровни содержания отдельных нейромедиаторных аминокислот балансируются и дополнительным выбросом из мест их связывания. Наиболее вероятно, что причиной изменения содержания связанных аминокислот в мозге является модификация субцеллюлярных частиц белков, мембранных структур. Результаты нашей работы вызывают интерес к некоторым сведениям, таким, как блокирование гипотермией 25 °С с синаптической передачи, обнаружение в мозге крыс чувствительных к холоду синаптосом, аккумулирование в синаптосомах мозга нейротрансмиттеров
вусловиях холода, зависимость ассоциации биологически активных веществ
всинаптосомах гипоталамуса от температуры и т.д.
Таким образом, анализ наших собственных и литературных данных показал, что глу, асп и ГАМК при гипотермии активизируют свою модуляторную роль в мозге и можно предположить наличие в тканях мозга температурной регуляции модуляторной функции этих аминокислот. Можно рекомендовать применение глу, асп и ГАМК и качестве протекторных веществ при гипотермии.
3.11. ИНТЕНСИВНОСТЬ ОКИСЛИТЕЛЬНОЙ МОДИФИКАЦИИ БЕЛКОВ ПРИ ГИПОТЕРМИИ НА ФОНЕ ВВЕДЕНИЯ ДАЛАРГИНА
Активные формы кислорода (АФК), помимо стимуляции перекисного окисления липидв (ПОЛ), способствуют окислительной модификации как растворимых, так и мембранносвязанных белков, что приводит к потере их функциональной активности. Начальные этапы гипотермии стимулируют образование АФК; это подтверждает данные об интенсивности процессов ПОЛ крови и различных тканей. Вместе с тем неизвестно, как гипотермия влияет на степень окислительной модификации белков. Ранее показано, что предварительное внутрибрюшинное введение синтетического аналога лейэнкефалина даларгина предотвращает активацию процессов ПОЛ тканей при различных стрессорных состояниях, в том числе при гипотермии. Можно ожидать, что защитный антиоксидантный эффект даларгин окажет и в отношении белков.
В настоящей работе исследована зависимость интенсивности реакций свободнорадикального окисления белков плазмы крови от глубины гипотермии и выяснена возможность коррекции этих процессов путем введения опиоидного пептида даларгина.
Опыты проводили на белых беспородных крысах-самцах массой 170–200 г. Гипотермию вызывали, помещая животное в холодовую камеру до снижения
70 |
Молекулярные процессы в мозге при принудительной гипотермии |
ректальной температуры до 30 и 20 °С (умеренная и глубокая гипотермия, соответственно). В отдельной серии умеренную гипотермию (30 °С) поддерживали в течение 3 ч. Даларгин вводили внутрибрюшинно в дозе 100 мкг/кг за 30 мин до холодового воздействия или декапитации (нормотермический контроль). Контрольным животным вводили соответствующий объем физиологического раствора. О степени окислительной модификации белков плазмы крови судили по количеству карбонильных групп, реагирующих с 2,4-динитрофенилгидрази- ном. При этом определяли исходный уровень карбонильных групп, а также их накопление в модельной системе в течение 15 мин при 37 °С в отсутствие прооксидантов (спонтанное окисление) и в присутствии 10ˉ³ М Fe2+, 10ˉ³ М ЭДТА и 3x10ˉ4 М Н2О2. Уровень карбонильных групп, измеренный при длине волны 370 нм, рассчитывали с использованием коэффициента молярной экстинкции (22 000 л/М на 1 см для алифатических динитрофенилгидразонов) и выражали
внаномолях на 1 мг белка. Содержание белка определяли по Лоури.
Вбелках плазмы крови контрольных крыс выявлено определенное количество карбонильных групп (таблица 16), что свидетельствует о протекании процессов окислительной модификации белков в физиологических условиях.
Инкубирование плазмы крови в условиях, способствующих генерации радикалов кислорода, существенно увеличивает содержание карбонильных
групп в белках. Особенно это заметно в присутствии Fе2(ЭДТА)+Н2О2, т.е. при металл-катализируемом окислении белков.
При умеренной гипотермии исходный уровень карбонильных групп в белках плазмы крови возрастает на 162 %, однако при этом скорость окисления
белков in vitro не изменяется.
При пролонгированной (3 ч) умеренной гипотермии существенно возрастали количество карбонильных групп в белках плазмы, а также скорость их накопления в модельной системе. Поскольку при этом окислительная модифика ция белков усиливается как in vivo, так и in vitro, можно предположить, что это связано не только с повышением уровня АФК, но и с изменением конформации белков, в результате чего увеличивается доступ прооксидантов к ранее скрытым аминокислотным остаткам.
Снижение температуры тела крыс до 20 °С приводит к уменьшению количества карбонильных групп в белках плазмы по отношению к предыдущему этапу гипотермии. При этом снижается и интенсивность окисления белков в условиях модельной системы. Это согласуется с представлениями о том, что глубокая ги потермия тормозит потребление кислорода тканями и дыхательные процессы,
входе которых и образуется основное количество радикалов кислорода. Однако это не в полной мере объясняет, почему количество карбониль-
ных групп в белках уменьшается при дальнейшем снижении температуры тела. Известно, что окислительно-модифицированные белки подвергаются
