
- •Паразитарные болезни человека (протозоозы и гельминтозы)
- •Понятия общей паразитологии
- •Исторический очерк
- •Паразитизм
- •Паразиты
- •Хозяева и жизненные циклы паразитов
- •Происхождение паразитизма
- •Морфофункциональные особенности паразитов
- •Воздействие паразита на организм хозяина
- •Ответные реакции организма хозяина на воздействие паразитов
- •Защитные механизмы паразитов против иммунного ответа хозяина
- •Формы взаимоотношений паразита и хозяина
- •Организм как среда обитания
- •Паразитарная система и паразитоценоз
- •Паразитарные болезни
- •Тропические паразитарные болезни
- •Протозойные болезни. Общая характеристика протозоозов
- •Систематическое положение возбудителей важнейших протозоозов человека
- •Паразитозы, возбудители которых относятся к типу Rhizopoda Амебиаз
- •Условно патогенные Rhizopoda пищеварительного тракта человека и виды, патогенность которых не установлена
- •Ротовая амеба
- •Кишечная амеба
- •Амеба Гартмана
- •Йодамеба Бючли
- •Карликовая амеба
- •Бластоцистис
- •Паразитозы, вызываемые некоторыми видами свободноживущих амеб Акантамебиаз
- •Неглериоз
- •Паразитозы, возбудители которых относятся к типу Kinetoplastida Лейшманиозы
- •Лейшманиозы Старого Света Висцеральный лейшманиоз
- •Индийский висцеральный лейшманиоз (кала-азар)
- •Средиземноморско-среднеазиатский висцеральный лейшманиоз
- •Кожный лейшманиоз
- •Антропонозный кожный лейшманиоз
- •Туберкулоидный кожный лейшманиоз
- •Зоонозный кожный лейшманиоз
- •Диффузный кожный лейшманиоз, вызываемый l.Aethiopica
- •Лейшманиозы Нового Света
- •Американский висцеральный лейшманиоз
- •Американские кожно-слизистые и кожные лейшманиозы
- •Кожный лейшманиоз, вызываемый комплексом l.Mexicana
- •Перуанский лейшманиоз (ута)
- •Гвианский кожный лейшманиоз (лесная фрамбезия)
- •Бразильский кожно-слизистый лейшманиоз (эспундия)
- •Панамский кожный и кожно-слизистый лейшманиоз
- •Трипаносомозы
- •Африканский трипаносомоз
- •Гамбийская форма африканского трипаносомоза
- •Родезийская форма африканского трипаносомоза
- •Американский трипаносомоз (болезнь Шагаса)
- •Паразитозы, возбудители которых относятся к типу Polymastigota Трихомоноз мочеполовой
- •Трихомоноз кишечный
- •Лямблиоз
- •Условнопатогенные Polymastigota пищеварительного тракта человека и виды, патогенность которых не установлена
- •Ротовая трихомонада
- •Хиломастикс
- •Энтеромонада
- •Диентамеба
- •Паразитозы, возбудители которых относятся к типу Sporozoa Криптоспоридиоз
- •Изоспороз
- •Циклоспороз
- •Саркоцистоз
- •Токсоплазмоз
- •Приобретенный токсоплазмоз.
- •Врожденный токсоплазмоз
- •Малярия
- •Бабезиоз
- •Паразитозы, возбудители которых относятся к типу Ciliophora Балантидиаз
- •Паразитозы, возбудители которых относятся к типу Microsporida Микроспоридиозы
- •Пневмоцистоз
- •Гельминтозы Общая характеристика гельминтозов.
- •Нематодозы Общая характеристика нематодозов.
- •Систематическое положение возбудителей важнейших нематодозов человека
- •Аскаридоз
- •Типы очагов аскаридоза на территории Российской Федерации
- •Трихоцефалез
- •Типы очагов трихоцефалезаа на территории Российской Федерации
- •Анкилостомидозы
- •Стронгилоидоз
- •Трихостронгилидоз
- •Энтеробиоз
- •Трихинеллез
- •Бругиоз
- •Мансонеллез
- •Мансонеллез, вызываемый Mansonella ozzardi
- •Мансонеллез, вызываемый Mansonella perstans (Акантохейлонематоз)
- •Мансонеллез, вызываемый Mansonella streptocerca (стрептоцеркоз)
- •Подкожный дирофиляриоз.
- •Дракункулез
- •Редкие нематодозы. Печеночный капилляриоз
- •Кишечный капилляриоз
- •Легочной капилляриоз
- •Диоктофимоз
- •Болезни, вызываемые паразитированием личинок нематод животных
- •Токсокароз
- •Анизакидоз
- •Гнатостомоз
- •Трематодозы Общая характеристика трематод.
- •Систематическое положение возбудителей важнейших трематодозов человека.
- •Описторхоз
- •Клонорхоз
- •Фасциолез
- •Фасциолопсидоз
- •Метагонимоз
- •Нанофиетоз
- •Парагонимоз
- •Гетерофиоз
- •Дикроцелиоз
- •Шистосомозы
- •Мочеполовой шистосомоз
- •Кишечный шистосомоз Мэнсона
- •Шистосомоз кишечный интеркалятный
- •Японский шистосомоз
- •Шистосоматидный дерматит (церкариоз)
- •Цестодозы Общая характеристика цестодозов
- •Систематическое положение возбудителей важнейших цестодозов человека.
- •Дифиллоботриоз
- •Тениаринхоз
- •Цистицеркоз
- •Эхинококкоз цистный
- •Альвеококкоз
- •Гименолепидоз
- •Гименолепидоз крысиный
- •Дипилидиоз
- •Ценуроз
- •Нематодозы Общая характеристика нематодозов.
- •Систематическое положение возбудителей важнейших нематодозов человека
- •Аскаридоз
- •Типы очагов аскаридоза на территории Российской Федерации
- •Трихоцефалез
- •Типы очагов трихоцефалезаа на территории Российской Федерации
- •Анкилостомидозы
- •Стронгилоидоз
- •Трихостронгилидоз
- •Энтеробиоз
- •Трихинеллез
- •Бругиоз
- •Мансонеллез
- •Мансонеллез, вызываемый Mansonella ozzardi
- •Мансонеллез, вызываемый Mansonella perstans (Акантохейлонематоз)
- •Мансонеллез, вызываемый Mansonella streptocerca (стрептоцеркоз)
- •Подкожный дирофиляриоз.
- •Дракункулез
- •Редкие нематодозы. Печеночный капилляриоз
- •Кишечный капилляриоз
- •Легочной капилляриоз
- •Диоктофимоз
- •Болезни, вызываемые паразитированием личинок нематод животных
- •Токсокароз
- •Анизакидоз
- •Гнатостомоз
- •Эпидемиологический надзор за паразитарными болезнями Объекты санитарно-паразитологического надзора
- •Объекты надзора, исследуемый материал и число проб, отбираемых для исследования
- •Санитарно-эпидемиологический надзор за отдельными паразитарными болезнями
- •1.1.1.1.1.1.1Таблица 2
- •Противомалярийные мероприятия в войсках Министерства обороны
- •Распространение малярии в странах мира и химиопрофилактика
- •Виды готовой продукции и объем отбираемых проб для исследования на наличие личинок трихинелл
- •Противоэпидемические мероприятия.
- •В качестве продукта питания человека)
- •Аскаридоз, трихоцефалез.
- •Редкие паразитозы
- •Акарозы
- •Паразитологические методы лабораторной диагностики гельминтозов и протозоозов Отбор проб и условия доставки материала в лабораторию для паразитологического исследования
- •Отбор проб и доставка фекалий (кала)
- •Отбор дуоденального содержимого (желчь)
- •Отбор проб мокроты
- •Отбор проб для контроля эффективности лечения кишечных, печеночных
- •Исследование фекалий Макроскопические методы
- •Микроскопические методы
- •Химико-седиментационный метод
- •Методы флотации
- •Метод Бермана в модификации Супряги
- •Исследование перианальных соскобов
- •Метод перианального соскоба липкой лентой по Грэхэм
- •Метод перианального соскоба с применением стеклянных глазных палочек с клеевым слоем по Рабиновичу
- •Метод перианального соскоба по Торгушину
- •Метод влажного мазка из консерванта
- •Метод исследования материала из консерванта формалин-эфирным обогащением
- •Модифицированный метод окрашивания по Цилю-Нильсену мазков из осадка после обогащения консервированного материала
- •Метод Бермана в модификации для исследования на балантидиаз
- •Методы окрашенных мазков на криптоспоридиоз (по Цилю-Нильсену; Романовскому-Гимзе)
- •Метод толстого мазка под целлофаном по Като-Кац (количественная модификация метода Като и Миура)
- •Мокроты и мочи Исследования дуоденального содержимого
- •Исследование нативного мазка мокроты
- •Исследование мокроты с центрифугированием
- •Исследование окрашенных мазков на пневмоцистоз
- •Микроскопические исследования мочи
- •Метод концентрации
- •Метод фильтрации
- •Ларвоскопическое исследование эпидермиса кожи
- •Метод исследования нативного препарата
- •Метод "обогащенного" препарата
- •Ларвоскопическое исследование мышечной ткани для обнаружения личинок трихинелл Метод трихинеллоскопии
- •Микроскопическое исследование костного мозга, содержимого кожных язв и бугорков на лейшмании
- •Метод мазка из кожного инфильтрата
- •Метод мазка костного мозга
- •Особенности техники микроскопирования при исследовании на яйца, личинки гельминтов и цисты простейших
- •Микрометрический метод протозоо- и гельминтоскопии
- •Организация работы паразитологической лаборатории
- •1. Общие положения
- •2. Основные требования к размещению, набору помещений, оборудованию паразитологических лабораторий
- •3. Режим и правила работы с инвазионным материалом
- •Паразитологическая диагностика
- •Малярии
- •Введение
- •Общие положения
- •Характеристика развития малярийного паразита в эритроцитах
- •Принцип метода паразитологической диагностики малярии
- •Необходимые реактивы и оборудование
- •Техника паразитологической диагностики подготовка предметных стекол
- •Во время манипуляций с чистыми предметными стеклами
- •Их следует брать только за боковые поверхности или пинцетом.
- •Растворы реактивов, приготовление, хранение
- •Краска Романовского-Гимза
- •Приготовление буферного раствора
- •Режим и правила работы в лабораториях, выполняющих исследования крови на малярию
- •Личная гигиена лаборанта
- •Правила дезинфекции при работе с препаратами крови
- •Взятие проб крови для исследования на малярию
- •Препарат “толстая капля”
- •Препарат “толстая капля” на предметном стекле без подкладки (рис. 1):
- •Препарат “толстая капля” на подкладке (рис. 2):
- •3. Комбинированные препараты (рис. 3).
- •Высушивание на солнце, огне или любом другом источнике тепла исключается, так как препарат становится непригодным для исследования.
- •Препарат “тонкий мазок” (рис.4)
- •Маркировка препаратов крови
- •Фиксация “тонких мазков”
- •Препарат “толстая капля” не фиксируют !
- •Окраска препаратов крови
- •Приготовление рабочего раствора краски Романовского-Гимза
- •Рабочий раствор для окраски препаратов крови использовать только свежеприготовленный!
- •Раствор не кипятить!
- •Способы окрашивания и промывки “тонкого мазка” и “толстой капли” по Романовскому-Гимза
- •При подозрении на малярию препараты крови помечаются “cito!” Окрашиваются и исследуются немедленно.
- •Микроскопия окрашенных препаратов крови
- •При низкой паразитемии исследование только “тонкого мазка” может привести к гиподиагностике малярии.
- •При обнаружении в препарате малярийных паразитов необходимо продолжение исследования с тем, чтобы:
- •Отрицательный диагноз, поставленный только по “тонкому мазку”, считается недостоверным. Критерии определения вида паразита
- •Классические морфологические признаки малярийных паразитов и пораженных эритроцитов
- •Непостоянство некоторых морфологических признаков
- •Изменения морфологии паразита и пораженных эритроцитов, возникающие в процессе приготовления и окраски препаратов крови
- •Изменения морфологии паразита, связанные с воздействием химиотерапевтических препаратов
- •Источники диагностических ошибок
- •Оценка интенсивности паразитемии
- •Оценка интенсивности паразитемии по “толстой капле”
- •Оценка интенсивности паразитемии по “тонкому мазку” в процентах пораженных эритроцитов
- •Оформление ответа
- •Образец ответа
- •Паразитологический контроль за эффективностью лечения
- •Особенности течения инфекции в зависимости от иммунологического состояния организма
- •Дефекты методики окрашивания препаратов крови по романовскому-гимза и их устранение
- •Plasmodium vivax в “тонком мазке” крови
- •Plasmodium falciparum в “тонком мазке” крови
- •Plasmodium ovale в “тонком мазке” крови
- •Plasmodium malariae в “тонком мазке” крови
- •Основные дифференциально-диагностические признаки возбудителей малярии человека в “толстых каплях”, окрашенных по романовскому
- •Состояние эритроцитов, пораженных малярийными паразитами, в “тонком мазке” крови
Раствор не кипятить!
Синька Мансона при хранении в темном сухом месте пригодна к использованию в течение многих лет. Количество краски Мансона, добавляемое к рабочему раствору краски Романовского, устанавливают опытным путем: нередко достаточно добавить к 1 л рабочего раствора несколько капель краски.
Способы окрашивания и промывки “тонкого мазка” и “толстой капли” по Романовскому-Гимза
Окрашивание препаратов крови можно проводить двумя способами:
Препараты крови вертикально погружают в рабочий раствор краски, налитый в специальные ванночки или контейнеры, без соприкосновения друг с другом. Данный способ окраски наиболее приемлем, когда есть необходимость окраски большого количества препаратов крови. В стандартном контейнере можно окрасить 20 препаратов при вместимости 90 мл краски. Повторное использование краски может привести к ее истощению, которое не всегда можно предусмотреть, что отрицательно отразится на окрашивании последующих препаратов.
Препараты располагают горизонтально (мазками вверх) на стеклянных рельсах, лежащих на кюветах. Осторожно наносят краску. Этот способ окраски чаще применяют, при окрашивании небольшого количества препаратов крови. Расход краски составляет примерно 4 мл на 1 препарат.
Данный способ окраски требует тщательной фильтрации маточного раствора краски, так как есть вероятность выпадения осадка на препарат крови. что приведет к трудности в диагностике кровепаразитов при микроскопии.
Время окрашивания зависит от температуры окружающей среды. При температуре 20-23 “тонкий мазок” окрашивают - 40-50 минут, “толстую каплю” - 20-25 минут. При более низкой температуре - время окрашивания увеличивают. При очень высокой температуре (около +30) - время окрашивания капель, но не мазков, может быть сокращено до 15 минут. “Толстые капли”, предварительно обработанные забуференным раствором метиленового синего, окрашивают 6-10 минут.
При подозрении на малярию препараты крови помечаются “cito!” Окрашиваются и исследуются немедленно.
Ошибки при окраске препаратов крови и способы их устранения приведены в таблице 1 Приложения I.
Способ промывки “тонких мазков”, фиксированных до окраски - под струей воды или погружением в емкость, не имеет значения, важно только не обесцветить препарат.
При промывке “толстых капель”, особенно свежеприготовленных, необходима осторожность, так как капли могут оторваться от стекла. Препарат медленным движение погружают в емкость с чистой водой 1-2 раза.
Микроскопия окрашенных препаратов крови
Препараты крови исследуют под микроскопом с применением масляной иммерсии: объектив 90 или 100, окуляр 7.
Сначала микроскопируют “толстую каплю”, затем для уточнения вида возбудителя - “тонкий мазок”.
При низкой паразитемии исследование только “тонкого мазка” может привести к гиподиагностике малярии.
В толстой капле паразиты распределены неравномерно. Поэтому проводят перекрестный просмотр 200-300 полей зрения препарата, что занимает примерно 10 мин1. Целесообразно также обратить внимание на краевую зону, более тонкую часть «толстой капли», где эритроциты могут располагаться в 1 слой и может выявляться не только относительно неизмененная морфология паразита, но и пораженного эритроцита. Если вероятность малярии у пациента велика, а паразиты не выявляются, рекомендуется не увеличивать время просмотра той же самой капли, а просмотреть вторую каплю.
Препарат считается отрицательным, если паразиты не обнаружены после просмотра 200-300 полей зрения “толстой капли”.
После первого обнаружения паразитов исследование продолжают, чтобы не пропустить смешанную инфекцию, а также, чтобы убедиться в наличии или отсутствии гаметоцитов, что имеет важное прогностическое значение в случае тропической малярии.