- •Министерство здравоохранения рф
- •Оглавление
- •Тема 1. Морфология микроорганизмов. Микроскопический метод исследования микроорганизмов. Простые и сложные методы окраски бактерий Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Этапы развития микробиологии
- •Предмет и задачи медицинской микробиологии.
- •Организация работы и оборудование микробиологической лаборатории, правила работы в ней.
- •Аппаратура, используемая в микробиологической лаборатории:
- •Устройство светового микроскопа. Сущность и техника иммерсионной микроскопии. Правила работы с микроскопом.
- •Морфология бактерий
- •Самостоятельная работа студентов
- •Правила работы в микробиологических лабораториях.
- •3. Освоение техники микроскопии с иммерсионным объективом:
- •Разрешающая способность иммерсионного микроскопа – 0,2-0,4 мкм.
- •5. Освоение техники приготовления мазка из агаровой культуры бактерий и окраски его простым способом.
- •Педиатрические аспекты
- •Тема 2. Морфология микроорганизмов. Структура бактериальной клетки Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 3. Морфология и классификация бактерий, спирохет, риккетсий, хламидий, микоплазм и актиномицетов.
- •Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Методы микроскопического исследования
- •Самостоятельная работа студентов
- •3. Выявление подвижности протея методом «раздавленной капли».
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •2. Знакомство с методами асептики, антисептики, дезинфекции и стерилизации.
- •Тема 5. Физиология бактерий. Дыхание и размножение бактерий. Методы культивирования аэробов и анаэробов Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Рост и размножение микроорганизмов.
- •Дыхание бактерий
- •Самостоятельная работа студентов
- •2. Выделение чистой культуры анаэробных бактерий из почвы (демонстрация):
- •Тема 6.Физиология бактерий. Ферменты бактерий. Выделение чистых культур аэробных и анаэробных бактерий Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Ферменты бактерий и методы их определения
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 7. Ферменты бактерий. Бактериологический метод исследования. Итоговое занятие по теме "морфология и физиология микробов» Самостоятельная работа студентов.
- •Тема 8. Вирусы бактерий (бактериофаги) Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 9. Генетика микроооганизмов. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 10. Экология микроорганизмов. Микр0флора организма человека. Микробиологические основы химиотерапии инфекционных болезней. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 11. Экология микроорганизмов. Микробиология воды, воздуха, почвы, пищевых продуктов Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Распространение микробов в природе
- •Самостоятельная работа студентов
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 12. Учение об инфекции. Факторы патогенности бактерий. Роль макроорганизма, внешней среды и социальных условий в развитии инфекции. Формы инфекции Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •1. Освоение основных способов заражения лабораторных животных:
- •2. Изучение факторов патогенности микробов на примере St.Aureus.
- •Самостоятельная работа студентов.
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 13. Учение об иммунитете. Виды иммунитета. Неспецифическая резистентность. Серологические реакции Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 14. Учение об иммунитете. Серологические реакции. Антигены и их характеристика. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 15. Учение об иммунитете. Клетки иммунной системы. Иммунный статус организма человека и методы его оценки. Современные иммунологические методы Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Методы оценки иммунного статуса организма человека.
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 16. Учение об иммунитете. Специфическая профилактика и лечение инфекционных заболеваний. Диагностические биопрепараты. Аллергены Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Медицинские иммунобиологические препараты для профилактики и лечения инфекционных болезней
- •Иммунные сыворотки и иммуноглобулины
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 17. Учение об инфекции и иммунитете. Практические аспекты иммунологии. Контрольное занятие (тестовый контроль и устное собеседование) Рекомендуемая литература
Самостоятельная работа студентов
1.Опыт по выявлению действия низких концентраций фенола на подвижность бактерий (модификационная изменчивость). Подвижную культуруP.vulgarisзасевают по методу Шукевича на скошенный агар с добавлением 1% фенола. Через сутки инкубации в термостате при 370С выполняют пересев по методу Щукевича на скошенный агар.Демонстрация:среда № 1 - посев исходной культуры протея. Наблюдается ползучий рост по всей скошенной поверхности - культура подвижна. Среда № 2 - с добавлением фенола - рост только в точке нанесения культуры (культура неподвижна). Среда № 3 - пересев со среды с фенолом на среду без фенола - рост по всей скошенной поверхности (культура подвижна). Произошла реверсия признака. Делается вывод о модификационном характере изменчивости протея.
2. Изучение характера роста S (E.coli) иR(B.cereus) форм бактерий на плотной и жидкой питательных средах (демонстрация).
3. Индукция мутаций под действием ультрафиолетового (УФ) облучения (демонстрация).Объект облучают при красном свете бактерицидной лампой ВУФ-15 на расстоянии 60 см от его центра.
Предварительно определяют бактерицидную дозу УФ-облучения, устанавливая оптимальную мутагенную дозу (0,1—1 % от числа выживших бактерий).
Для получения lac-мутантов Е.coli испытуемую культуру, содержащую 2х 108 бактерий в 1 мл среды, выращивают в питательном бульоне в течение 14—18 ч. Бактерии осаждают центрифугированием, ресуспендируют в 40 мл 0,1 моль 1 л раствораMgSО4и охлаждают во льду (для прекращения деления клеток). Затем суспензию в объеме 50 мл помещают в стерильную чашку Петри и облучают в течение 15—150 сек., после чего клетки осаждают центрифугированием, ресуспендируют в таком же объеме питательного бульона и инкубируют при 370С в течение 14—18 часов. Затем из разведения 102—105 по 0,1 мл высевают на плотную селективную питательную среду (среда Эндо) в чашки Петри и растирают шпателем.
Для выделения антибиотикорезистентных мутантов используют штамм E.coli В или К12, который высевают после облучения на минимальный агар с определенной концентрацией антибиотика. Например, ампициллин—10 мкг/мл, левомицетин— 5 мкг/мл, пенициллин — 100 мкг/мл.
На среде Эндо lac-мутанты Е. coliобразуют бесцветные колонии. Клетки Е. coli, выросшие на среде с указанной концентрацией антибиотика, являются к нему резистентными. Параллельно делают контрольные посевы.
4. Опыт трансформации (демонстрация). Реципиентом является стрептомициночувствительный штамм кишечной палочки -EscherichiacoliStrs, донором - ДНК, выделенная из штаммаEscherichiacoliStrr , устойчивого к стрептомицину. Селективной средой для отбора рекомбинантов служит питательный агар со стрептомицином (100 ЕД/мл).
К 1 мл бульонной культуры E.coliдобавляют 1 мкг/мл ДНК донора, смесь инкубируют при 370С в течение 30 мин, после чего в пробирку вносят смесь 0,1 мг/мл раствора ДНКазы (для разрушения ДНК, не проникшей в бактериальные клетки реципиентного штамма), и вновь инкубируют в течение 5 мин. Для определения количества образовавшихся стрептомицинустойчивых рекомбинантов 0,1 мл неразведенной смеси высевают на селективную среду в чашку Петри. Для определения количества клеток реципиентной культуры готовят ее десятикратные разведения в изотоническом растворе хлорида натрия до 10–5 – 10-6(для получения сосчитываемого количества колоний), высевают по 0,1 мл на питательный агар без стрептомицина, а для контроля - на агар со стрептомицином. Посев инкубируют при 370С. На следующий день учитывают результаты опыта и определяют частоту трансформации по отношению количества выросших рекомбинантных клеток к числу клеток реципиентного штамма. На среде со стрептомицином реципиентная культура не должна расти, т.к. она чувствительна к стрептомицину. Частота трансформации определяется отношением количества выросших рекомбинантных клеток к числу клеток реципиентного штамма .
Опыт специфической трансдукции (демонстрация). Реципиентом является штамм Е.colilac-, лишенный β-галактозидазного оперона, контролирующего ферментацию лактозы. Трансдуцирующий фаг—фаг λdgal,часть генов которого замещена дефектным β -галактозидазным опероном Е. сoli, неспособным вызывать лизис кишечной палочки. На селективной среде Эндо лактозоотрицательные колонии бактерий реципиентного штамма образуют бесцветные колонии, а лактозоположительные колонии рекомбинантного - красные колонии с металлическим блеском.
К 1 мл 3-часовой бульонной культуры реципиентного штамма добавляют 1 мл трансдуцирующего фага λ dgal(концентрация 106—107бактерий в 1 мл). Смесь инкубируют при 370С в течение 60 мин, затем готовят ряд десятикратных разведении. Из пробирки с разведением 106делают высев по 0,1 мл культуры на три чашки Петри со средой Эндо и равномерно распределяют жидкость шпателем по поверхности среды. Посевы инкубируют в течение суток, после чего отмечают результаты опыта и вычисляют величину трансдукции по отношению количества клеток рекомбинантов (трансдуктантов), обнаруженных на всех чашках, к числу клеток реципиентного штамма. Частота трансдукции определяется отношением числа клеток рекомбинантов к числу клеток реципиентного штамма.
6. Опыт конъюгации с целью передачи фрагмента хромосомы, содержащего ген leu, контролирующего синтез лейцина (демонстрация).Донор — штамм Е.coliK12Hfrleu+Strs. Реципиент—штаммE.coliK12F- leu-Strr. Селективная среда для выделения рекомбинантов — минимальная глюкозосолевая среда со стрептомицином. К 2 мл 3-часовой культуры реципиента добавляют 1 мл бульонной культуры донора. Посевы инкубируют при 370С в течение 30 мин, затем смесь разводят до 10–2 - 10-3и высевают по 0,1 мл на селективную агаровую среду в чашки Петри, на которой вырастут только колонии рекомбинантов. В качестве контроля на ту же среду высевают штаммы донора и реципиента, которые не будут расти на ней, так как первый штамм чувствителен к стрептомицину, а второй ауксотрофен по лейцину. Культуру донорского штамма высевают также на селективную среду без стрептомицина, а культуру реципиентного штамма—на полную среду (питательный агар с антибиотиками) для определения числа жизнеспособных клеток. Посевы инкубируют до следующего дня при 370С. После подсчета числа выросших колоний определяют частоту рекомбинаций по отношению количества рекомбинантных клеток к реципиентным.
7. Учет ПЦР при уреаплазмозе(демонстрация, рис. 31).
5 Клиническая проба |
4 Отрицательная проба |
3 Mycoplasma genitalis
|
2 Ureaplasma urealyticum |
1 Mycoplasma hominis |
0 Длина нуклеотидных пар |
|
|
|
|
|
2205 |
|
|
|
|
|
2027 |
|
|
|
|
977 | |
|
|
|
856 | ||
|
|
|
|
|
810 |
|
|
|
|
501 | |
|
|
|
|
|
458 |
|
|
|
|
|
125 |
Рис. 31. Разделение в агарозном геле продуктов амплификации фрагментов генов микоплазм. 0 –длина нуклеотидных пар, 1 –Mycoplasmahominis– положительный контроль, 2 –Ureaplasmaurealyticum– положительный контроль, 3Mycoplasmagenitalis–– положительный контроль, 4 ––отрицательный контроль, 5 – клиническая проба, положительная наUreaplasmaurealyticum |