- •Вопросы к экзамену по дисциплине «Биотехника размножения животных»
- •1. Краткая история искусственного осеменения животных
- •2. И. И. Иванов – основоположник искусственного осеменения
- •3. Биологическое значение полового размножения
- •4. Естественное осеменение животных. Ручное и варковое спаривание
- •5. Косячное, вольное и гаремное (классное) спаривание
- •6. Оборудование пункта искусственного осеменения коров
- •7. Организация работы пункта искусственного осеменения. Выявление коров в охоте
- •8. Преимущества искусственного осеменения животных
- •9. Выращивание самцов-производителей для использования в искусственном осеменении. Особенности кормления и содержания
- •10. Искусственная вагина. Особенности устройства вагин для самцов разных видов
- •11. Устройство и подготовка к использованию искусственной вагины
- •12. Особенности взятия спермы у самцов разных видов
- •13. Взятие спермы у быка
- •14. Взятие спермы у жеребца, хряка
- •16. Добавочные половые железы, их значение
- •17. Сперма, ее химический состав, свойства
- •18. Сперма. Строение сперматозоида
- •19. Сперма. Свойства сперматозоидов
- •20. Спермоагглютинация, ее причины и профилактика
- •21. Дыхание и гликолиз сперматозоидов
- •24. Разбавление спермы. Разбавители. Преимущества разбавления спермы
- •25. Виды разбавителей спермы, их химический состав и свойства
- •26. Криоконсервация спермы. Краткая история и значение метода
- •27. Криоконсервация спермы. Методика криоконсервации
- •28. Влияние паратипических факторов на воспроизводительную функцию самок
- •29. Влияние генетических факторов на воспроизводительную функцию самок
- •30. Стимуляция половой функции самок
- •31. Синхронизация половой функции самок
- •32. Оплодотворение яйцеклеток вне организма животного (in vitro)
- •34. Оплодотворение яйцеклеток вне организма животного (in vitro). Капацитация сперматозоидов
- •36. Маноцервикальный метод осеменения коров. Достоинства и недостатки
- •37. Визоцервикальный метод осеменения коров. Достоинства и недостатки
- •39. Сперматогенез
- •40. Искусственное осеменение овец и коз
- •41. Искусственное осеменение свиней
- •42. Биотехнология нативной спермы. Оценка сперматозоидов по морфологическим признакам
- •43. Методика замораживания спермы и хранения ее в жидком азоте
- •44. Искусственное осеменение птиц
- •45. Оборудование лаборатории для искусственного осеменения пчел. Взятие спермы у трутня. Осеменение матки
- •47. Овогенез.
- •48. Ректоцервикальный метод осеменения коров. Достоинства и недостатки
- •49. Искусственное осеменение самок северных оленей (важенок)
- •50. Оттаивание и оценка качества размороженной спермы
- •51. Естественное осеменение у пчел
- •52. Искусственное осеменение пчелиных маток
- •53. Визуальная и микроскопическая оценка спермы. Методика исследований
- •54. Воздействие на сперматозоиды высокой и низкой температур, йода.Методика исследований
- •55. Виды патологических форм сперматозоидов. Соотношение нормальных и патологических форм
- •56. Искусственное осеменение кобыл
- •57. Оценка концентрации и активности (подвижности) сперматозоидов
- •58. Воздействие на сперматозоиды осмотического давления (гипотонический и гипертонический растворы). Методика исследований
- •59. Организация искусственного осеменения
52. Искусственное осеменение пчелиных маток
Искусственное осеменение маток не требует особого умения, но оно должно осуществляться быстро, без колебаний и без ранений матки. Удобнее эту операцию выполнять вдвоем. Инструментально осемененные матки начинают кладку яиц на 3-5 дней позже, чем естественно спаренные. Наилучшие результаты при осеменении маток в весеннее время — на 10-12-й день, а в июне и июле — на 5-6-й день после их вывода.
Гибель искусственно оплодотворенных маток может обусловливаться травмированием матки в процессе манипуляций, введением слишком большого объема спермы, нападением рабочих пчел и пр.
Инструментальное осеменение позволяет полностью контролировать спаривание маток и трутней, значительно повышает эффективность селекционно-племенной работы. Этот метод является основным при разведении пород и линий пчел в чистоте, выведении новых линий и типов пчел, скрещивании определенных пород и линий для получения гетерозисных пчел.
Нормальному спариванию пчелиных маток в естественных условиях часто препятствуют плохие погодные условия. Использование искусственного осеменения позволяет производить эту работу независимо от дождей и похолоданий. С помощью искусственного осеменения успешно решается вопрос получения плодных маток в ранние сроки, к началу формирования весенних отводков.
53. Визуальная и микроскопическая оценка спермы. Методика исследований
Сперма производителей сельскохозяйственных животных имеет молочно-белый или слегка желтоватый цвет. Но бывает сперма и розово-красного, бурого или зеленого цвета с гнилостным запахом (с примесью крови, мочи, гнойного или гнилостного распада). Поэтому при визуальной оценке спермы сначала проводят внешний просмотр полученного эякулята, обращая внимание на присутствие в эякуляте белковых хлопьев, что указывает на воспаление придаточных половых желез, чаще всего пузырьковидных. По этим показателям делают заключение о состоянии здоровья животного. В патологических случаях при микроскопическом исследовании легко обнаружить эритроциты. лейкоциты, а также довольно крупные трихомонады. Такую сперму нельзя использовать, так как с ней в половые пути самки можно занести инфекцию или в них могут возникнуть различного рода воспалительные процессы. Причиной плохого качества спермы баранов ивляются различные аномалии развития и патологические изменения в половых органах, преимущественно в эпидидимисе. При осмотре окрашенных мазков спермы на первое место выступает в качестве патологического признака наличие большего или меньшего количества разрушенных спеомиев. Азооспермия (отсутствие спермиев) у баранов обусловливается отсутствием законченного спермиогенеза или же является результатом дегенеративных процессов в придатках, вызывающих закупорку протоков или расстройства их эякуляторной способности.
54. Воздействие на сперматозоиды высокой и низкой температур, йода.Методика исследований
Высокая температура может вызвать гибель сперматозоидов, которые не устойчивы к таким воздействиям. низкие температуры прекращают процесс образования сперматозоидов, не убивая при этом уже имеющиеся.
использование йодированной соли в питании подопытных крыс заметно снижает у них индекс фертильности спермы - показатель, отражающий способность спермы к оплодотворению. Полученные данные свидетельствуют также о том, что ограничение содержания йода в пище лабораторных животных приводит к увеличению размера яичек у самцов и заметно усиливает продукцию спермы.
Микроскопический анализ спермы (эякулята) производят после его полного разжижения; изучают нативный препарат, подсчитывают количество сперматозоидов в камере Горяева и анализируют окрашенный мазок. При изучении нативного препарата определяют подвижность сперматозоидов. Сперматозоиды подсчитывают в следующем порядке.
Активно-подвижные: совершающие поступательные движения и пересекающие поле зрения микроскопа менее чем за 1 с; в норме их более 50%. Малоподвижные: с замедленным поступательным движением; в норме их менее 50%, а также с манежным, колебательным или маятникообразным движением (менее 2%). Неподвижные; в норме отсутствуют.
Исследование нативного препарата даёт ориентировочное представление о количестве сперматозоидов. При подсчёте сперматозоидов в камере Горяева определяют их количество в 1 мл эякулята и во всём полученном материале. В норме у здорового мужчины в 1 мл эякулята содержится более 20 миллионов сперматозоидов, а во всём выделенном эякуляте - более 80 миллионов. Уменьшение количества сперматозоидов менее 20 миллионов в 1 мл эякулята расценивают как олигозооспермию (I степень - 10-19 млн в 1 мл, II - менее 10 млн в 1 мл).