Практическое занятие №8

Тема: Итоговое занятие по дисциплине «Функциональная анатомия» (раздел спланхнология, ЦНС: лимбико-ретикулярный комплекс, проводящие пути).

Цель и содержание занятия:

С учетом знаний по базисной анатомии составить целостное представление о морфофункциональных связях между строением и функцией органа, отразить изменчивость органов в процессе развития, показать влияние экологических факторов, вредных привычек, условий труда и прочее на процесс изменения структуры органа с последующим нарушением их функций. Иметь использовать полученные знания для рекомендации ведения здорового образа жизни, что способствует углублению, закреплению приобретенных знаний. Вырабатывает у студентов умения анализировать и синтезировать материал практических занятий и лекционного курса, что важно при изучении клинических дисциплин.

Оснащение занятия: органный комплекс, вскрытый труп, муляжи, схемы таблицы, череп, рабочие тетради, препараты мозга )целый мозг, фронтальные, сагиттальные срезы).

План проведения занятия:

1. Организационная часть -5 мин.

2. Проверка практических навыков по препаратам -15-20 мин.

3. Тестирование -15-20 мин.

4. собеседование по вопросам итогового занятия -40-45 мин.

После сдачи итогового занятия студенты должны знать:

1. Строение, топографию органов

2. Связи между изучаемой структурой т функцией органа

3. Возможные варианты и аномалии развития органов с последующим нарушением их функций.

4. Влияние факторов внешней сре6ды, вредных привычек и прочее на развитие структуры органов с последующим нарушением функций.

Уметь:

1. Находить и показывать на препаратах органы, структуры органов

2.Определять функции каждого органа

3. Объяснять влияние вредных привычек, различных факторов внешней среды на изменения функции органа

4. Давать рекомендации для ведения здорового образа жизни.

Владеть:

1. Методами препарирования

2. Навыками анализа и синтеза информации для углубления полученных знаний при изучении клинических наук

Блог судебно-медицинских гистологов Северо-Западного Федерального округа

• Проводка в изопропаноле » »

• « « Система единой нумерации экспертных документов в судебно-медицинском учреждении

Удаление формалинового осадка

Формалиновый осадок может присутствовать в тканях после фиксации в простом формалине (с кислой pH). Он коричневый, обычно внеклеточный, однако может присутствовать на макрофагах. Это коричневый, гранулярный, устойчивый депозит, отмечаемый внутри и внеклеточно в тканях, которые были фиксированы простым раствором формалина.Формалиновый осадок известен как кислый гематин формальдегида, так как образуется из гемоглобина под действием формальдегида в кислой среде. В связи с тем, что он образуется из гемоглобина, он часто наблюдается в кусочках с большим количеством крови, где простой формалин может привести в его образованию за довольно короткий период. Также имеется тенденция у образованию формалинового пигмента в тканях при длительном хранении в формалине, если раствор формалина регулярно не заменяется на свежий.

Образование данного артефакта может быть устранено в большинстве случаев использованием в качестве фиксатора нейтрального забуференного формалина. Нейтральный или слабо щелочной формалин может эффективно остановить его образование.

В малых количествах пигмент не мешает исследованию, но в большом - затрудняет.

Формалиновый осадок может быть удален из срезов:

А) с помощью спиртового раствора аммония:

Состав реагента:

1. 95% этанол - 50 мл;

2. Концентрированный гидроксид аммония (28%) - 15 мл.

Реактивы смешиваются перед использованием.

Методика:

1. Депарафинировать срезы;

2. Поместить в спиртовой раствор аммония (до 1 часа);

3. Тщательно промыть водой (желательно проточной);

4. Окрашивать по обычным методикам (в том числе гематоксилином и эозином).

Литература:

1. Cook H C, Manual of Histological Demonstration Techniques. P. 243. Bancroft JD & Stevens, Theory and Practice of Histological Techniques, 2nd Edition. p. 69.

Б) с помощью сатурированного спиртового раствора пикриновой кислоты

Состав реагента:

1. Абсолютный этанол;

2. Пикриновая кислота.

Методика:

1. Депарафинировать срезы ксилолом, провести их через спирты до воды.

2. Поместить срезы в сатурированный раствор пикриновой кислоты на несколько минут (до 1 часа);

3. Для обесцвечивания срезов от окраски пикриновой кислотой использовать сатурированный водный раствор крабоната лития;

4. Хорошо промыть водой;

5. Окрашивать обычными методами.

Литература:

1. Drury, R.A.B. and Wallington, E.A., (1980) Carleton’s histological technique Ed. 5. Oxford University Press, Oxford, UK.

2. Kiernan. J.A., (1999) Histological and histochemical methods: Theory and practice, d.3 Butterworth Heinemann, Oxford, UK.

В) с помощью 1% содового раствора на абсолютном этаноле. Однако этот метод приводит к отслоению срезов от предметного стекла. Поэтому он на практике не используется.

31