Научные стремления 2011-1

этилового спирта и просматривали в ультрафиолетовом свете при длине волны

365 нм [2].

Количественный анализ флавоноидов. Определение содержания флавоноидов в надземной части Potentilla alba L. в пересчете на рутин проводили спектрофотометрическим методом, используя реакцию комплексообразования с раствором хлорида алюминия (III) [2].

HPLC-анализ. Высокоэффективную жидкостную хроматографию проводили на хроматографе Agilent Technologies 1100 (США) с массспектрометрическим детектором LCMS-QP8000 (Япония). Идентификация индивидуальных компонентов велась путем сравнивания их времени удерживания и данных UV-спектра со стандартами. В качестве неподвижной фазы была использована металлическая колонка размером 4,6×250 мм, размер частиц 5 микрон. В качестве подвижной фазы метанол – вода – фосфорная кислота, в соотношении 40:60:5. Анализ проводили при комнатной температуре. Скорость подачи элюента 0,7 мл/мин. Продолжительность анализа 110 мин.

Статистическая обработка экспериментальных данных. Все анализы проводили в четырехкратной повторности, полученные результаты обрабатывали с использованием компьютерной программы «Statistica» (данные считали достоверными при Р<0,05).

Результаты и обсуждение результатов исследования. В надземной части Potentilla alba L. с помощью TCL-хроматографии обнаружены флавоноиды: на всех TCL-хроматограммах испытуемых образцов наблюдали полосу, значение Rf которой аналогично значению Rf для рутина, что подтверждено совпадением спектра флуоресценции для рутина и опытного образца. В обоих случаях флуоресцирующая зона имела желто-зеленое окрашивание.

Результаты количественного анализа общей суммы флавоноидов в надземной части Potentilla alba L. в пересчете на гликозид кверцетина – рутин показали, что содержание флавоноидов составило 3,2% в пересчете на сухое растительное сырье.

HPLC-анализ компонентного состава полифенольного комплекса листьев Potentilla alba L. показал следующее: из кислот цинамовой природы идентифицированы такие соединения, как п-кумаровая кислота, хлорогеновая и неохлорогеновая кислоты (табл. 2). Наибольшее содержание установлено для неохлорогеновой кислоты – 284,95 мг/100 г. Индивидуально выделены кверцетин-3-рутинозид, кверцетин-3-глюкозид, кверцетин-3-арабинозид, и эпикатехин.

Таким образом, всего идентифицировано 7 индивидуальных компонентов полифенольного комплекса Potentilla alba L., среди которых максимальное содержание установлено для кверцетин-3-рутинозида.

141

Таблица 2 - Результаты HPLC анализа надземной части Potentilla alba L.

Выводы. HPLC - идентифицировано 7 индивидуальных компонентов полифенольного комплекса Potentilla alba L., среди которых максимальное содержание установлено для кверцетин-3-рутинозида.

Работа выполнена при финансовой поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (№ ГР 11-04-90900-моб_снг_ст) и Белорусского республиканского фонда фундаментальных исследований (№ ГР Б10В-002).

Литературные источники

1.Ботанические коллекции Беларуси // Министерство природных ресурсов и охраны окружающей среды Республики Беларусь [Электронный ресурс]. – 2008. – Режим доступа: http://hbc.bas-net.by/bcb/basesearch.php – Дата доступа: 06.07.2008.

2.Шимко О.М., Хишова О. М. // Вестн. фармации. 2010. № 1 (47). С. 17 – 23.

A.V. Bashylau

TCL И HPLC-СHROMATOGRAPHY POTENTILLA ALBA L.

Central Botanical Garden of NAS of Belarus, Minsk

Summary

HPLC - identified 7 substances of polyphenolic complex Potentilla alba L., among which the maximum content corresponds to quercetin-3-Rut.

142

УДК 601.2:602.3

А.А. Барейко, А.В. Сидоренко, Г.И. Новик

ПРОМЫШЛЕННО ЦЕННЫЕ СВОЙСТВА ЛАКТОКОККОВ ИЗ САМОКВАСНЫХ МОЛОЧНЫХ ПРОДУКТОВ

Институт микробиологии НАН Беларуси, Минск

Актуальность. Лактококки, обладая рядом полезных свойств, широко используются в молочной и мясной промышленности, для получения антимикробных метаболитов, витаминов, белков, для разработки пробиотиков и технологии адресной доставки лекарств. В качестве производственных культур наиболее часто применяют штаммы L. lactis subsp. сremoris и L. lactis subsp. lactis [1, 2].

Для использования в промышленных целях лактококки отбирают по таким критериям, как активность сквашивания молока, продукция экзополисахаридов, диацетила, устойчивость к антибиотикам [1].

Цель исследования – характеристика практически важных свойств лактококков, выделенных из молочных продуктов домашнего приготовления, и отбор потенциально производственных штаммов.

Материалы и методы исследования. Объектами исследований служили выделенные из молочных продуктов домашнего приготовления и идентифицированные ранее культуры лактококков Lactococcus lactis БИМ В- 690, L. garvieae БИМ В-691, L. lactis БИМ В-692, L. lactis БИМ В-693, L. lactis

БИМ В-694.

Бактерии выращивали в 10 мл жидкой среды Элликера при 370С в течение 16-18 ч. Для проведения экспериментов использовали физиологически активные культуры 3-й генерации. Для определения времени сквашивания молока бактерии засевали в 10 мл стерильного обезжиренного молока и культивировали при 370С до образования сгустка. Продукцию диацетила определяли по креатиновой пробе [2]. Продукцию экзополисахаридов определяли на среде с конго красным (0,08 г/л), как описано в работе [3]. Устойчивость к хлорамфениколу определяли методом двойных разведений [4] в бульоне Элликера. За минимальную ингибирующую концентрацию (МИК) принимали концентрацию антибиотика в среде, приводящую к подавлению видимого роста лактококков при выращивании в стандартных условиях.

Результаты исследования и обсуждение. Из кисломолочных продуктов домашнего приготовления было выделено и отобрано 5 культур лактококков, характеризовавшихся активным ростом и кислотообразованием. 4 культуры выделены из сметаны (Lactococcus lactis БИМ В-690, БИМ В-692, БИМ В-693, БИМ В-694) и 1 культура – из творога (L. garvieae БИМ В-691).

Установлено, что штаммы сквашивают стерильное молоко через 6-8 ч культивирования при активной кислотности 5,07 – 5,61 ед. рН (таблица 1). Согласно литературным данным активные штаммы лактококков в среднем сквашивают молоко за 4-6 часов при активной кислотности 4,5 – 5,0 ед. рН [2].

143

Таким образом, среди исследованных штаммов наиболее активными оказались

L. lactis БИМ В-690 и L. lactis БИМ В-692.

Таблица 1 – Сквашивание молока

Отличительной особенностью лактококков, по сравнению с другими МКБ, является синтез диацетила, который подавляет рост патогенной и условно-патогенной микрофлоры. Наряду с этим, диацетил используется для приготовления ароматизаторов, так как придаѐт вкус молочным продуктам [2]. Ни один из исследованных штаммов не образовывал диацетила.

Ценным свойством штаммов Lactococcus является продукция экзополисахаридов, которые защищают клетки от замораживания, высушивания, воздействия кислой среды и ферментов, способствуют их адгезии на твѐрдых поверхностях. Экзополисахариды, синтезируемые лактококками, используются в пищевой промышленности как естественные загустители и стабилизаторы [2]. Тест на продукцию экзополисахаридов показал, что все исследуемые штаммы лактококков обладают данным свойством, при этом наиболее активно экзополисахариды продуцировал штамм L. lactis БИМ В-690, выделенный нами из сметаны (таблица 2). Следует отметить, что способность к продукции экзополисахаридов зависела от источника углерода в среде культивирования. Согласно литературным данным, лактококки наиболее активно продуцируют экзополисахариды на средах с сахарозой [5], однако, в нашем случае, все штаммы более активно продуцировали эти соединения на среде с лактозой и сахарозой.

Таблица 2 – Способность лактококков к продукции экзополисахаридов

Примечение.+++ - наибольшая способность к продукции по сравнению с другими культурами, + – продуцирует, - – не продуцирует

Согласно нормам Европейского агентства по безопасности продуктов питания производственные штаммы лактококков должны быть чувствительны к

144

хлорамфениколу, минимальная ингибирующая концентрация (МИК) которого не должна превышать значения 8 мкг/мл [6]. Как видно из данных, представленных в таблице 3, культуры L. lactis БИМ В-690, L. lactis БИМ В- 692, L. lactis БИМ В-694 были чувствительны к хлорамфениколу, а штаммы L. garvieae БИМ В-691, L. lactis БИМ В-693 характеризовались устойчивостью к этому препарату.

Таблица 3 – Устойчивость лактококков к хлорамфениколу

Примечание. + – устойчив, - – не устойчив

Выводы. Обобщая полученные данные, все исследованные штаммы лактококков активно сквашивали молоко, не образовывали диацетила, продуцировали экзополисахариды, были чувствительны к хлорамфениколу. Исходя из исследованных свойств, наиболее перспективными для использования в промышленности можно назвать штаммы L. lactis БИМ В-690

и L. lactis БИМ В-692.

Литературные источники

1.The Prokaryotes: A handbook on the biology of bacteria: in 7 v. / edited by M. Dworkin – 3rd ed. – Springer, 2006. – Vol. 4: Bacteria: Firmicutes, Cyanobacteria. – 1140 p.

2.Банникова, Л.А. Микробиологические основы молочного производства / Л.А.Банникова, Н.С.Королева, В.Ф. Семенихина; под ред. Я. И. Костина. – М.: Агропромиздат, 1987. – 400 с

3.Ивашкина, Н.Ю. Оригинальный отечественный пробиотик аципол: молекулярно-биологические и метаболические характеристики / Н.Ю. Ивашкина [и др.] // Рос. журн. гастроэнтерол., гепатол., колопроктол. – 2009. – Т.19, № 2. – С.58-64.

4.Бриан, Л.Е. Бактериальная резистентность и чувствительность к химиопрепаратам / Л.Е. Бриан – М.: Медицина, 1984. – 272 с.

5.Фокина, Н.А. Влияние условий культивирования на продукцию экзополисахаридов лактокков / Н.А. Фокина [и др.] // Соврнаукоемк технол.– 2010. –№4.–С.49-50.

6.Florez, A.B. Antibiotic survey of Lactococcus lactis strains to six antibiotics by Etest, and establishment of new susceptibility-resistance cut-off values / Florez A.B [et al] // J. of D. Res. – 2007. – Vol. 74, № 3. – P. 262-268.

H.A. Bareika, A.V. Sidarenka, G.I. Novik

SOME VALUABLE PROPERTIES FOR MANUFACTURING OF LACTOCOCCI FROM HOMEMADE MILK PRODUCTS

Institute of Microbiology, National Academy of Sciences of Belarus, Minsk

Summary

For 5 strains from homemade milk products were studied useful industrial properties. It was determined, that all of the Lactococcus strains are active in milk, did not produce diacetyl, produce exopolysaccharides, and were sensitive to chloramphenicol. All these facts prove that strains are perspective for making starter cultures.

145

УДК 631.547:581.19:633.521

Д.В. Галиновский1, А.П. Райский2

ГЕНЫ, КОНТРОЛИРУЮЩИЕ БИОСИНТЕЗ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ В РАЗЛИЧНЫХ ЧАСТЯХ РАСТЕНИЙ ЛЬНА-ДОЛГУНЦА (LINUM

USITATISSIMUM L.)

1Институт генетики и цитологии НАН Беларуси, Минск

2Белорусский государственный технологический университет, Минск

Введение. Синтез целлюлозы – один из важнейших биохимических процессов в растительных клетках, тем не менее, его молекулярные механизмы на сегодняшний день изучены слабо. Несмотря на это, определен основной компонент, участвующий в этом процессе – это совокупность 36-ти полипептидов, образующих трансмембранную целлюлозосинтазную розетку. Данные пептиды кодируются генами целлюлозсинтаз (CesA-генами). У высших растений они принадлежат к мультигенному семейству, и при экспрессии разных генов целлюлозосинтаз могут формироваться различные «розетки», продуцирующие клеточные стенки, различающиеся по физико-химическим свойствам [1]. Частично исследования молекулярно-генетических процессов, обеспечивающих биосинтез целлюлозы, выполнялись на популярном модельном растении - резуховитке таля (Arabidopsis thaliana) и различных его мутантах [2]. Было установлено, что гены целлюлозосинтаз можно идентифицировать не только по их полноразмерным последовательностям, но и по последовательностям классоспецифических гипервариабельных областей (HVRII-области), т.е. по фрагментам генов [1].

Особую научную и практическую значимость имеют исследования целлюлозосинтаз льна-долгунца, поскольку основным полимером льноволокна является целлюлоза. Содержание целлюлозы может достигать 70% от массы зрелого волокна [3].

Целью данной статьи является идентификация генов целлюлозосинтаз льна-долгунца по их HVRII-фрагментам.

Материалы и методы. Для идентификации генов целлюлозосинтаз льнадолгунца их HVRII-последовательности сравнивали с HVRII-фрагментами CesA-генов Ar. thaliana. Использовали следующие последовательности генов целлюлозосинтаз из Ar. thaliana депонированные в GenBank: AtCesA1 –

NM_119393, AtCesA2 – NM_120095, AtCesA3 – NM_120599, AtCesA4 – NM_123770, AtCesA5 – NM_121024, AtCesA6 – NM_125870, AtCesA7 – NM_121748, AtCesA8 – NM_117994, AtCesA9 – NM_127746, AtCesA10 –

NM_128111. В работе использовали последовательности HVRII-фрагментов генов целлюлозосинтаз льна-долгунца (сорт Блакіт, стадия развития – быстрый рост), полученные нами экспериментально в предыдущих исследованиях, которые подробно описаны в серии наших публикаций [4-6].

Для доступа к серверам GenBank использовали пакета программ BLAST 2.2.20. Для хранения и анализа нуклеотидных последовательностей использовали пакет программ Vector NTI Suite 7. Выравнивание нуклеотидных

146

последовательностей, расчет их идентичности осуществляли с помощью программы AlignX из указанного пакета.

Результаты и их обсуждение. Анализ данных, полученных нами в предшествовавших исследованиях, позволил идентифицировать четыре уникальных фрагмента генов целлюлозосинтаз, которые были обозначены pBS58, pBS13, pBS19 и pBA12. Причем из листьев выделяли фрагменты HVRIIобласти в высокой степени (более 90%) идентичные фрагменту pBS58 и не обнаруживали фрагменты похожие на pBS13, pBS19 и pBA12. В стебле идентифицировали фрагменты pBS58, pBS13 и pBS19, но не обнаружили фрагменты похожие на pBA12. В апикальной части растений обнаруживали экспрессию целлюлозосинтаз, содержавших HVRII-области похожие на фрагменты pBS58 и pBA12, но не обнаруживали HVRII-области pBS13 и pBS19. Сходство при сопоставлении полученных HVRII-фрагментов генов целлюлозосинтаз между собой приведено в таблице 1.

Таблица 1 - Идентичность (в %) нуклеотидных последовательностей HVRII-фрагментов генов целлюлозосинтаз из растений льна-долгунца

Из данных таблицы 1 видно, что идентичность полученных HVRIIфрагментов колеблется в пределах 54-63%. Сходство при сопоставлении полученных HVRII-фрагментов из льна-долгунца и HVRII-областей генов целлюлозосинтаз из Ar. thaliana вариирует в пределах 48-75% (таблица 2).

Таблица 2 - Идентичность (в %) нуклеотидных последовательностей HVRII-фрагментов генов целлюлозосинтаз из растений льна-долгунца с таковыми фрагментами из Ar. thaliana

Примечание. Цветом выделены наибольшие значения идентичности при попарном выравнивании HVRII-областей льна-долгунца с фрагментами CesA-генов Ar. thaliana.

Фрагмент pBA12 наибольшую идентичность имеет с HVRII-областью гена AtCesA1, поэтому можно утверждать, что он содержит гипервариабельную область гена целлюлозосинтазы первого класса – LusCesA1. Следует отметить,

147

что также высокое совпадение наблюдается у pBA12 с AtCesA10 – 74%, что объяснимо, поскольку совпадение гипервариабельных областей генов AtCesA1 и AtCesA10 между собой составляет 85%, сходства консервативных участков данных генов более значительны. Существенным отличием AtCesA10 от AtCesA1 являются две делеции в начале (295 п.н.) и в конце (109 п.н.) последовательности гена. Значительное сходство в нуклеотидной последовательности данных генов позволяет говорить об общности их происхождения в результате относительно недавней дупликации общего предшественника [7]. Поскольку для идентификации целлюлозосинтаз льнадолгунца в нашей работе использовали HVRII-области данных генов, то мы не можем судить о наличии или отсутствии делеций в начале или конце исследуемого гена целлюлозосинтазы льна-долгунца. В соответствии с использованной нами методологией идентифицировали pBA12 как HVRIIобласть гена LusCesA1.

Фрагмент pBS13 наибольшую идентичность по нуклеотидному составу демонстрирует с HVRII-областью гена AtCesA9, поэтому его идентифицировали как LusCesA9. Как и в случае с предыдущим фрагментом pBA12, данный фрагмент демонстрирует высокую идентичность и с паралогами данного гена, а именно: AtCesA2, AtCesA5 и AtCesA6. Это обстоятельство согласуется с мнением общего происхождения перечисленных генов в результате двух последовательных дупликаций. Отмечается, что расхождения генов AtCesA2, AtCesA5, AtCesA6 и AtCesA9 было более древним эволюционным событием по сравнению с происхождением AtCesA1 и AtCesA10 [7].

Фрагмент pBS19 имел наибольшую идентичность с той же областью гена AtCesA7, поэтому его идентифицировали как HVRII-область гена LusCesA7. Следует также отметить, что данный фрагмент не имел высокого совпадения с HVRII-фрагментами других CesA-генов Ar. thaliana, как это было в случае двух предыдущих фрагментов. Это можно объяснить тем, что ген AtCesA7 не имеет паралогов.

В случае фрагмента pBS58 наибольшую идентичность обнаружили при сравнении его с последовательностью HVRII-области гена AtCesA4. Совпадение с HVRII-областями других CesA-генов резуховитки были ниже. Мы обозначили здесь данный фрагмент как участок гена LusCesA4, но вынуждены признать, что сделано это на основании достаточно низкой идентичности. Следует особо отметить, что совпадение фрагментов pBS13 и pBS58 между собой также составляет 63%, но для нас это не является основанием отнести их к одному классу целлюлозосинтаз. Возможно, данный ген целлюлозосинтазы является специфичным для льна-долгунца и не имеет ортологов в геноме Ar. thaliana.

Экспериссия гена LusCesA4 обнаруживалась во всех исследованных частях растений льна долгунца, LusCesA1 обнаруживали только в апикальной части растений, что может свидетельствовать о функционировании данного гена в молодых тканях, где идет биосинтез первичной клеточной стенки. HVRII-области генов LusCesA7 и LusCesA9 обнаруживали в стеблях льнадолгунца, что может указывать на участие данных генов в биогенезе льноволокна.

148

Заключение. При сравнении фрагментов HVRII-области льна-долгунца с последовательностями гомологичных генов A. thaliana были индентифицированы четыре гена целлюлозосинтаз – LusCesA1 (pBA12), LusCesA4 (pBS58), LusCesA7 (pBS19) и LusCesA9 (pBS13). Первый из них –

LusCesA1 – имел 75% идентичность с геном AtCesA1, второй – LusCesA4 – 63% идентичность с AtCesA4, третий, LusCesA7, - 72% c AtCesA7 и четвертый, LusCesA9, проявлял 74% идентичность с AtCesA9. Полученные данные позволяют констатировать наличие экспрессии целлюлозосинтаз класса CesA4, CesA7 и CesA9 в стебле, CesA1 и CesA4 в части растений, расположенной выше точки слома, и CesA4 в листьях растений льна-долгунца на стадии быстрого роста. Предположительно экспрессия генов LusCesA7 и LusCesA9 является специфичной для стеблей льна-долгунца и может влиять на качество формируемого льноволокна. Дальнейшее изучение экспрессии генов, кодирующих ферменты биосинтеза целлюлозы в клеточных стенках волокна льна-долгунца, на основе современных молекулярно-генетических методов может повысить эффективность отбора генотипов с высокими технологическими свойствами лубяного волокна.

Литературные источники

1.Ranik M. Six new cellulose synthase genes from Eucalyptus are associated with primary and secondary cell wall biosynthesis // Tree Physiology. — 2006.— Vol.26.—P.545–556.

2.Горшкова, Т.А. Растительная клеточная стенка как динамическая система / Т.А. Горшкова – М.: Наука, 2007. – 429 с.

3.Thermogravimetric analysis of the flax bast fiber bundle / V. Titok [et al.] // Journal of Natural Fibers. – 2006. – Vol. 3, N 1. – P 35-41.

4.Генетический контроль биосинтеза целлюлозы при формировании микрофибрилл у льна-долгунца / Д.В. Галиновский [и др.] // Труды БГТУ. Сер. IV, Химия, технология орган. в-в и биотехнология. – 2010. – Вып. XVIII. – С. 266-268.

5.Молекулярно-генетический анализ целлюлозосинтаз, экспрессирующихся в различных органах растений льна-долгунца / Д. В. Галиновский [и др.] // Труды БГТУ. Сер.

IV – 2009. – Вып. XVII. – C. 178-182.

6.Идентификация СesА-генов, экспрессирующихся в стеблях растений льна-

Kumar [et al.] // Trends in Plant Science. - 2009. - Vol. 14. – P. 248-254.

D.V. Galinousky 1, A.P. Raiski 2

THE CELLULOSE SYNTHESIS CONTROLLIN G GENES IN DIFFERENT PLANTS’ PARTS OF FIBER FLAX

1Institute of Genetics and Cytology, Minsk

2Belarusian State Technological University, Minsk

Summary

In this work the comparative analysis of the cellulose synthase HVRII‘s of fiber flax with

CesA-genes of Arabidopsis thaliana was made. The high identity grade of the cellulose synthase genes of fiber flax with the homological gene sequences of Ar. thaliana was determined. The cellulose synthase genes of fiber flax, which were named LusCesA1, LusCesA4, LusCesA7 and

LusCesA9, using the sequences of HVRII‘s were identified.

149

УДК 598.252 (476)

К.В. Гомель

ГНЕЗДОВЫЕ ТЕРРИТОРИИ И УСПЕХ РАЗМНОЖЕНИЯ ВОДНОБОЛОТНЫХ ПТИЦ В МИНСКЕ

Беларуский государственный педагогический университет имени Максима Танка, Минск

Актуальность. Интенсивный рост роли водно-болотной орнитофауны в городах Европы отмечается многими исследователями. Не является исключением и Минск [3, 4]. Основными критериями оценки роли той или иной популяции в биоценозе являются ее плотность и успех размножения как характеристики ее устойчивости и конкурентоспособности. Интересным в этой связи является изучение вопросов, связанных с приспособлением тех или иных видов, а также экологических групп птиц к городским условиям [2].

Цель работы – оценка гнездового потенциала водно-болотной орнитофауны города Минска.

Материалы и методы исследования. Работа по учету орнитофауны проводилась с 06.03.2011 по 08.08.2011. Учет населения птиц на реке Свислочь (Св) проходил по маршруту водохранилище Дрозды – Чижовское водохранилище. Длина маршрута составила 26,4 км. Также учеты проводились на стационарных участках – Цнянское водохранилище (Цн) (6,8 км), Чижовское водохранилище (Чж) (3,1 км), водохранилище Дрозды (Др) (5,6 км), заказник Лебяжий (Л) (0,56 км). Повторность учетов на реке в весенний период составила 6 учетов, в летний период – 4 учета. Количество посещений стационаров в весенний период – 3, в летний период – 4. Учет проводился по методике Равкина Ю.С. для водоплавающих и околоводных птиц. Учет птенцов утиных проводился по методике Исакова Ю. А. [1].

Результаты и их обсуждение. Для анализа успеха размножения и гнездовых территорий водно-болотных птиц г. Минска, приведены данные за летний период как наиболее значимого в оценке исследуемой проблемы.

В летний период на территории города отмечены следующие гнездящиеся виды лимнофильной группы: кряква Anas platyrhynchos (L.),

большая поганка Podiceps cristatus (L.), хохлатая чернеть Aythya fuligula (L.), лебедь-шипун Cygnus olor (Gmel.), лысуха Fulica atra (L.), красноголовая чернеть Aythya ferina (L.) и камышница Gallinula chloropus (L.). К птицам,

встречавшимся на всех участка исследования, относятся Anas platyrhynchos и Podiceps cristatus (рисунок 1).

На всех участках кряква доминирует по отношению к большой поганке. Максимальная плотность кряквы приходится на реку – 495,62 ос/км2, минимальная плотность на Л – 25,89 ос/км2 (рисунок 1). Для большой поганки максимальная плотность зарегистрирована на Чж (110 ос/км2), а минимальная – в Др 2,77 (ос/км2). Менее распространены на акваториях города в летний период такие виды как A. fuligula (на всех участках кроме Др с максимальной плотностью на Чж (86,13 ос/км2) и минимальной – на Цн (1,21 ос/км2)), C. olor (встречался на Цн, Л и Св с плотностью 0,37, 33,9 и 1,14 ос/км2 соответственно),

150