- •Міністерство освіти і науки україни національний університет харчових технологій
- •Методи контролю біотехнологічних, фармацевтичних і харчових виробництв лабораторний практикум
- •Київ нухт 2014
- •Інструкція з охорони праці при проведенні робіт у навчальних лабораторіях кафедри
- •1. Загальні вимоги до техніки безпеки
- •2. Правила техніки безпеки
- •3. Вимоги безпеки у аварійних ситуаціях
- •4. Надання першої допомоги
- •5. Вимоги до оформлення лабораторних робіт
- •Лабораторна робота 1 розділення амінокислот методом тшх на силуфолових пластинках
- •Реактиви
- •Матеріали та обладнання
- •Загальні відомості
- •Хід роботи
- •Завдання для виконання
- •Контрольні запитання
- •Матеріали та обладнання
- •Загальні відомості
- •Хід роботи
- •Завдання для виконання
- •Контрольні запитання
- •Хід роботи
- •Завдання для виконання
- •Контрольні запитання
- •Розчинність речовин у воді при різних температурах (г/100 г h2o)
- •Залежність густини і концентрації розчинів NaCl від температури
- •Густина речовин
- •Залежність густини розчинів h2so4 від її масової долі у водному розчині при 25 °c
- •Хід роботи
- •Густина розчинів NaCl та kCl в г/см3, що відповідає різним концентраціям у %
- •Завдання на виконання
- •Контрольні запитання
- •Рекомендована література
- •Хід роботи
- •Завдання на виконання:
- •Контрольні запитання
- •Матеріали та обладнання
- •Загальні відомості
- •Закон Бугера – Ламберта – Бера. При прохожденні випромінення через розчин світлопоглинаючої речовини світловий потік слабшає.
- •Фотометричні методи аналізу
- •Залежність кольору речовини від довжини хвилі поглинутого світла
- •Приготування робочих розчинів для побудови калібрувальної кривої
- •Хід роботи
- •Завдання для виконання
- •Контрольні запитання
- •Рекомендована література
- •Матеріали та обладнання
- •Загальні відомості
- •Методом Лоурі
- •Хід роботи
- •Завдання для виконання
- •Контрольні запитання
- •Рекомендована література
- •Лабораторна робота 8
- •Коефіцієнт молярної екстинкції деяких цитохромів
- •Хід роботи
- •Завдання для виконання
- •Контрольні запитання
- •3. Методи генної інженерії.
- •Рекомендована література
Хід роботи
Студенти розділяють на бригади по 4 особи, проводять попереднє тренування в нанесенні води на звичайний папір за допомогою шприца.
Кожна бригада одержує:
- листок хроматографічного паперу;
- 2 пробірки з розчином амінокислоти відомої концентрації (1-ша пробірка) та розчином амінокислоти невідомої концентрації (2-га пробірка);
- 5 пробірок з 5 мл 0,005%-го розчину сульфату міді в 75%-му етиловому спирті;
- шприци, ножиці.
На листку хроматографічного паперу олівцем відмічають лінію старту та 4 точки для нанесення розчинів амінокислот. На 1, 2, 3 точки наносять розчини амінокислоти відомої концентрації на 4-ту точку наносять розчин амінокислоти невідомої концентрації (рис. 2.4.).
Шприцем наносять на 1-шу точку 1 краплину (5 мкл) розчину, на 2-гу точку 2 краплини (10 мкл), на 3-тю – 4 краплини (20 мкл) 0,01 М розчину амінокислоти або 0,05; 0,1; 0,2 мкмоль амінокислоти. На 4-ту точку наносять 2 або 3 краплини амінокислоти невідомої концентрації.
-
___х__ __х__ __х ___х_____
1 2 3 4
Рис. 2.4.Нанесення точок на хроматографічний папір
Розчини на кожну точку наносять після повного висушування попе-редньо нанесеного об'єму амінокислоти. Після нанесення амінокислоти на всі точки хроматографічний папір висушують на повітрі, а потім занурюють на кілька секунд у кювету з 0,5 %-м р-ном нінгідрину в ацетоні, просушують у витяжній шафі при кімнатній температурі і 15 хв прогрівають у термостаті при 60°С для проявлення забарвлення.
Зони хроматограми з яскраво-ліловими плямами амінокислот вирізають.
Збоку хроматографічного листка паперу на чистому місці вирізають кружок паперу (контрольна зона для порівняння), що дорівнює за площею дослідним.
Вирізані зони паперу (зони 4-рьох точок та контрольна зона вирізана на чистому полі), подрібнюють ножицями і вміщують в 5 окремих пробірок, які підписують згідно з номером точки та контрольної зони.
В кожну пробірку додають 5 мл 0,005%-го розчину сульфату міді в 75%-му етиловому спирті. Лілове забарвлення амінокислот переходить в оранжево-червоне внаслідок утворення Cu-похідного ДІДА і відбувається екстракція комплексної сполуки амінок-ти з паперу в розчин.
Для повної екстракції пробірки на 30 хвилин ставлять у темне місце при кімнатній температурі. Потім проби фотометрують проти контролю (пробірка з розчином контрольної зони) на ФЕК при довжині хвилі 540 нм (зелений світлофільтр), кювета 5 мм.
На основі знайденої оптичної густини для точок 1, 2, 3 та концентрацій амінокислоти, що відповідають цій оптичній густині будують в зошиті калібрувальний графік, де на осі абсцис відкладають концентрацію амінокислоти в мкмоль/мл, а на осі ординат – оптичну густину (показання ФЕК (рис. 2.5.).
За знайденою оптичною густиною амінокислоти невідомої концентрації (пробірка 4) визначають її концентрацію по калібрувальному графіку.
Рис.2.5. Калібрувальний графік для визначення концентрації розчину амінокислоти