![](/user_photo/2706_HbeT2.jpg)
Биохимия растений
.pdfНа усвоение мочевины в результате обращения реакций орни˝- тинового цикла затрачивается метаболическая энергия, ко˝торая генерируется через усиление дыхания, наблюдаемое при так˝их процессах.
Понимание механизмов усвоения растениями мочевины имее˝т важное значение в связи с ее широким использованием в кач˝естве
азотного удобрения, которое применяется как для корневог˝о питания растений, так и в виде некорневых подкормок.
Некорневые подкормки чаще всего проводятся при возделыв˝а-
нии пшеницы и кукурузы. Растения опрыскивают раствором мо˝-
чевины с помощью самолетов или при наличии технологическ˝ой
колеи наземными агрегатами в фазах формирования — нача˝ла молочной спелости зерна. Нанесенная на листья мочевина быст˝ро
проникает в их ткани и включается в синтез аминокислот и б˝ел-
ков, увеличивая таким образом накопление в зерне запасных˝ бел-
êîâ íà 1—3 %.
В наших опытах с использованием мочевины, меченной 15N, показано, что азот некорневой подкормки, проведенной в фа˝зу
начала формирования зерна пшеницы, в зрелых зерновках обы˝чно
составляет около 10 % общего белкового азота зерна. Из этого˝ сле-
дует, что в результате поздней некорневой подкормки в зер˝новках
пшеницы дополнительно может синтезироваться до 10 % общей˝ массы белков, накапливающихся в зерне. Кроме того, мочевин˝а
при поздней некорневой подкормке оказывает физиологиче˝ски
активное действие на растения, усиливая отток азотистых в˝еществ
из листьев в созревающие зерновки. Под действием подкормк˝и
мочевиной в зерне пшеницы существенно снижается активно˝сть α-амилаз и других гидролитических ферментов, что способств˝ует улучшению технологических свойств зерна. Благодаря прим˝ене-
нию некорневых подкормок мочевиной в поздние фазы развит˝ия растений можно значительно увеличить выход зерна пшениц˝ы с высоким содержанием клейковины.
11.5. СИНТЕЗ АМИНОКИСЛОТ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ НИТРАТНОЙ ФОРМЫ АЗОТА
В большинстве почв, особенно окультуренных, довольно активно происходит процесс нитрификации, в ходе которого ам˝монийная форма азота, образующаяся в почве при распаде орга˝ни- ческих остатков, а также внесенная в виде удобрений, превр˝аща-
ется в нитраты. Поэтому бó льшая часть азота, поступающая в рас-
тения при корневом питании, представлена нитратами, котор˝ые
очень легко усваиваются растениями, включаясь в синтез ам˝ино-
кислот. Поскольку в составе аминокислот азот находится в ˝амин-
451
![](/html/2706/286/html_PF_Uu9xU7E.wH7e/htmlconvd-CmWawX452x1.jpg)
ной форме, нитратный азот в растениях, прежде чем включить˝ся в состав аминокислот, подвергается восстановлению в аммон˝ийную форму с помощью специальных ферментных систем.
Восстановление нитратного азота в аммонийный в клетках рас-
тений, водорослей, грибов и бактерий осуществляется в два˝ этапа. На первом этапе под действием фермента нитратредуктазы ïðî-
исходит превращение нитратов в нитриты, а затем нитриты с˝ уча- стием фермента нитритредуктазы восстанавливаются с образова-
нием аммонийной формы азота, которая используется для син˝теза
аминокислот и амидов. Схематически эти процессы можно пре˝д-
ставить следующим образом:
+5 |
2 |
|
+3 |
6 |
|
–3 |
e |
e |
NO–3 ¾¾® NO–2 ¾¾® NH+4
Нитратредуктазы высших растений, зеленых водорослей и гри-
бов (1.6.6.1; 1.6.6.2; 1.6.6.3) представляют собой металлофлавопротеиды с молекулярными массами 200—330 тыс., включающие два
типа субъединиц. В составе фермента содержатся флавиновы˝е группировки (ФАД, ФМН) и молибденовый кофермент. Донором
электронов для восстановления нитратного азота у растен˝ий слу-
жит НАД · Н, у грибов — НАДФ · Н. От восстановленных пири˝- диндинуклеотидов электроны и протоны перемещаются на фл˝а- виновую группировку нитратредуктазы. Затем электроны переда-
ются на цитохром b557, служащий в составе фермента промежуточ-
ным переносчиком электронов от флавинового кофермента н˝а молибденовый, а протоны высвобождаются и могут взаимодей˝-
ствовать с анионами кислорода, которые образуются при вос˝становлении нитратного азота.
Молибденовый кофермент содержит катионы молибдена, лабильно связанного с ароматической группировкой, которая˝ неко-
валентно присоединяется к белковой части фермента. Катио˝ны молибдена, обратимо изменяя степень окисления, способны а˝к- цептировать электроны от цитохрома b557 и передавать их на азот нитрата, который связывается с активным центром фермента˝. В результате восстановления азота нитрат превращается в н˝итрит, а высвобождающийся анион кислорода О2– соединяется с протона-
ми, образуя молекулу воды. Механизм восстановления нитрат˝ов
до нитритов под действием нитратредуктазы может быть пре˝д-
ставлен в виде следующей схемы:
452
Суммарно процесс восстановления нитратов в растениях по˝д действием фермента нитратредуктазы может быть выражен с˝ледующим уравнением:
NÎ3– + ÍÀÄ · Í + Í+ → NO–2 + ÍÀÄ+ + Í2Î
Óбактерий нитратредуктазы представлены относительно н˝изкомолекулярными белками (70—180 тыс.), не содержащими фла-
виновых группировок. Донором электронов у них служат восс˝та-
новленный ферредоксин или его аналоги. Нитратредуктазы б˝акте-
рий тесно связаны с клеточными мембранами, тогда как у выс˝ших
растений, зеленых водорослей и грибов эти ферменты локали˝зованы в цитоплазме.
Óрастений наиболее высокая нитратредуктазная активнос˝ть
обнаруживается в меристематических тканях. У большинств˝а рас-
тений при активном фотосинтезе и достаточном количестве˝ угле-
водов, являющихся источниками образования НАД · Н, проце˝сс восстановления нитратов практически полностью происход˝ит в
корнях. Однако при недостатке света и низких температурах˝, ос-
лабляющих синтез углеводов, а также избыточном азотном пи˝та-
нии значительная часть нитратов поступает в вегетативну˝ю часть
растений и подвергается восстановлению в листьях. Вместе˝ с тем известны растения, у которых практически не обнаруживает˝ся
нитратредуктазной активности в корнях. У них превращение˝ нит-
ратного азота в аммонийный осуществляется в основном в ли˝сть-
ях. К таким растениям относятся свекла, хлопчатник, марь, ду˝р-
нишник и др.
Нитратредуктаза — типичный индуцибельный фермент. Его активность резко возрастает при поступлении в растения н˝итратов
вследствие того, что происходит индукция синтеза фермент˝а. Когда же концентрация нитратов в клетках растений уменьшает˝ся, синтез ферментного белка прекращается и нитратредуктаз˝ная активность снова понижается до исходного уровня. Кроме нитр˝атов
индукторами синтеза нитратредуктазы могут быть цитокин˝ины и
органические нитросоединения, т. е. возможна индукция си˝нтеза этого фермента под воздействием химических регуляторов. В то же время катионы аммония подавляют в растениях синтез нит˝ратредуктазы. В опытах показано, что индукция синтеза нитрат˝ре-
дуктазы в присутствии нитратов происходит на свету, а в те˝мноте
усиливается деградация этого фермента.
Активность фермента нитратредуктазы в значительной сте˝пени определяется присутствием в физиологической среде окис˝лителей
èвосстановителей. В восстановительных условиях бó льшая часть
активного фермента, находящегося в окисленной форме, пере˝во-
дится в неактивное (восстановленное) состояние, в результ˝ате
453
![](/html/2706/286/html_PF_Uu9xU7E.wH7e/htmlconvd-CmWawX454x1.jpg)
нитратредуктазная активность в тканях растений понижае˝тся. Такое явление, например, наблюдается при переносе растений ˝в темноту. Однако при освещении растений очень быстро осуще˝-
ствляется фотореактивация фермента, т. е. перевод его из ˝восста-
новленной в окисленную форму, вследствие чего процесс восстановления нитратов снова активируется.
Восстановление нитритов в аммонийную форму азота катали˝-
зируют ферменты нитритредуктазы (1.6.6.4; 1.7.99.3). У растений и
фотосинтезирующих водорослей эти ферменты представляют˝ со-
бой сравнительно низкомолекулярные белки (60—70 тыс.), кото-
рые содержат в качестве активных группировок железосерный центр (4Fe4S) и сирогем (железотетрагидропорфирин). Донором
электронов служит восстановленный ферредоксин, поэтому˝
нитритредуктазы у указанных организмов локализованы в хло-
ропластах.
Ферредоксин передает электроны на железосерный центр ни˝т- ритредуктазы, который далее восстанавливает сирогем, спо˝соб-
ный передавать электроны на атомы азота нитритов, в резул˝ьтате
происходит присоединение к ним протонов и образование ам˝мо-
нийной формы азота. Высвобождающиеся анионы кислорода О2–,
реагируя с катионами Н+, дают молекулы воды. Перенос электронов от восстановленного ферредоксина на нитриты с участи˝ем
нитритредуктаз можно представить в виде следующей схемы˝:
Суммарное уравнение процесса восстановления нитритов п˝од
действием нитритредуктазы можно записать в следующем ви˝де:
Каталитическая активность нитритредуктаз в 5—20 раз превы˝- шает активность нитратредуктазы, поэтому нитриты, как пра˝вило,
не накапливаются в растениях. В корнях нитритредуктазная˝ ак-
тивность локализована в пропластидах, и донорами электро˝нов для восстановления нитритов здесь служат восстановленн˝ые динуклеотиды НАДФ · Н.
Нитритредуктазы, как и нитратредуктазы, — индуцибельны˝е ферменты. Индукцию их синтеза вызывают нитраты, а репрес-
сию — катионы аммония.
В отличие от нитритредуктаз растений и водорослей аналог˝ич- ные ферменты бактерий и грибов представляют собой более в˝ысо-
комолекулярные формы, содержащие флавиновые коферменты˝.
454
Донорами электронов для них служат восстановленные дину˝клеотиды НАД · Н и НАДФ · Н.
Существующие разновидности растений очень сильно разли˝ча- ются по способности восстанавливать нитраты, которая зав˝исит
главным образом от уровня нитратредуктазной активности˝, тогда как нитритредуктазы — каталитически более активные фер˝менты.
Общий уровень нитратредуктазной активности определяетс˝я, с одной стороны, интенсивностью синтеза ферментного белка˝, а с
другой — каталитической способностью фермента.
Чтобы добиться усиления синтеза нитратредуктазы в расти˝-
тельных тканях, проводятся молекулярно-генетические исследо-
вания, связанные с воздействием на регуляторные гены, оказывающие влияние на скорость синтеза ферментного белка. Одн˝о-
временно с этим ведется поиск химических регуляторов, уси˝ли-
вающих действие генетической системы синтеза фермента
нитратредуктазы. В целях повышения каталитической актив˝ности
нитратредуктазы в растительных тканях на молекулярном у˝ровне разрабатываются способы введения в геном растений генов˝ из
клеток бактерий, кодирующих более активные молекулярные˝
формы нитратредуктазы. Кроме того, в результате применени˝я
методов белковой инженерии предпринимаются попытки опт˝и-
мизации структуры фермента путем замены отдельных нуклеотидных остатков в структурных генах нитратредуктазы, что пре˝допре-
деляет синтез видоизмененного белка с повышенной катали˝тиче-
ской активностью.
Цель таких работ — повысить эффективность использовани˝я
нитратного азота для синтеза азотистых веществ и таким об˝разом увеличить продуктивность растений. Вторая важная задача˝ — понизить накопление нитратов, так как они потенциально опас˝ны
для человека и животных. Нитраты очень легко восстанавлив˝аются в нитриты неферментативным путем, а последние взаимодействуют с гемоглобином, переводя его в окисленную форму — ˝метгемоглобин, не способный осуществлять функцию транспорт˝а
кислорода, в результате чего ухудшается обеспеченность и˝м орга-
низма. Кроме того, нитриты являются химическими предшеств˝енниками нитрозоаминов, обладающих мутагенным и канцероге˝н- ным действием.
Известны группы растений с природно невысоким уровнем
нитратредуктазной активности, вследствие чего они накап˝ливают
высокие концентрации нитратов. К таким видам относятся ра˝стения семейства тыквенных, шпинат, редька и др. Однако у боль-˝ шинства растений повышение содержания нитратов наблюда˝ется
при определенных неблагоприятных условиях выращивания,˝ свя-
занных с недостатком световой энергии; низкой температур˝ой;
недостатком фосфора, калия, ряда микроэлементов; избыточн˝ы-
455
ми дозами азотных удобрений. Поэтому для каждой группы ра˝стительных продуктов установлена предельно допустимая кон˝центрация нитратов.
При недостатке света ослабляются процессы фотосинтеза и˝ ды-
хания, в результате чего понижается скорость образования˝ восстановленных динуклеотидов и восстановленного ферредоксин˝а,
служащих донорами электронов для восстановления нитратов, поэтому значительная их часть остается невосстановленной˝ и не ис-
пользуется для синтеза азотистых веществ растений. Аналогичное
явление наблюдается в условиях пониженных температур, ко˝гда
замедляются биосинтетические процессы, связанные с реге˝нера-
цией доноров электронов для нитратвосстанавливающей си˝стемы, тогда как поступление нитратов в растения продолжается, в˝след-
ствие чего их концентрация в растительных тканях увеличи˝вается.
Заметное влияние на функционирование нитратвосстанавли˝ва-
ющей системы растений оказывает обеспеченность их микро˝эле-
ментами — молибденом, железом, магнием, марганцем, медью,˝ которые служат активаторами нитратредуктазы, нитритредуктазы
и других ферментов азотного обмена. Особенно важна роль мо-
либдена, входящего в состав молибденового кофермента нит˝рат-
редуктазы. При недостатке молибдена и других микроэлемен˝тов
замедляется процесс восстановления нитратов и происход˝ит их накопление в растительных продуктах. Еще большее накопле˝ние
нитратов в растениях наблюдается при внесении избыточны˝х доз
азотных удобрений, а также при недостаточной обеспеченно˝сти
растений фосфором и калием, когда формируется низкий урож˝ай.
В этих условиях даже умеренные дозы азотных удобрений мог˝ут оказаться избыточными.
Таким образом, для предотвращения накопления в растениях˝
большого количества нитратов необходимо правильно разр˝абатывать технологию выращивания растений, обеспечивая оптим˝альное питание растений макро- и микроэлементами. Особенно в˝ажно контролировать уровень азотного питания при выращива˝нии
овощных и кормовых культур.
11.6. СИНТЕЗ АМИНОКИСЛОТ ПРИ ВОССТАНОВЛЕНИИ МОЛЕКУЛЯРНОГО АЗОТА
Известны группы растений, способные за счет симбиоза с кл˝етками микроорганизмов использовать для синтеза своих азо˝тистых
веществ молекулярный азот, который содержится в большом к˝о-
личестве в земной атмосфере. Этот процесс в биологии называют
симбиотической азотфиксацией. У таких растений в специальных
структурных образованиях на корнях или в листьях осущест˝вля-
456
ют жизнедеятельность микроорганизмы-симбионты: клубеньковые бактерии, актиномицеты, цианобактерии (синезеленые в˝одоросли).
Большинство растений, способных к симбиотической азотфи˝к-
сации, образуют на корнях или листьях утолщенные выросты,˝ называемые клубеньками, в которых находятся видоизмененны˝е
клетки микроорганизмов-симбионтов. Такие микроорганизм˝ы, находящиеся в клубеньках, питаются растительными метабо˝лита-
ми, которые образуются из поступающих в клубеньки фотоасс˝и-
милятов, а продукты их жизнедеятельности, синтезируемые з˝а
счет связывания молекулярного азота атмосферы, использу˝ются
растениями для новообразования азотистых веществ.
На корнях многих древесных и кустарниковых растений (оль˝-
ха, облепиха, восковница и др.) формируются клубеньки, обра˝зуе-
мые актиномицетами. Экспериментально определено, что дре˝вес-
ные насаждения ольхи за счет симбиотической азотфиксаци˝и спо-
собны связывать в течение одной вегетации до 100 кг атмосфе˝рного азота на 1 га. На корнях некоторых австралийских цикадо˝вых
растений в качестве симбионтов развиваются цианобактер˝ии,
фиксирующие молекулярный азот. У некоторых растений се-
мейств Rubiaceae и Haloragaceae цианобактерии образуют клу-
беньки на листьях. На рисовых полях в южных странах развод˝ят водяной папоротник Azolla, в листьях которого осуществляют
жизнедеятельность симбиотические азотфиксирующие циан˝обак-
терии. За счет его культивирования рисовые поля обогащают˝ся
азотом.
У бобовых растений в клубеньках живут бактерии рода Rhizobium. С их участием бобовые культуры могут фиксировать в год от 50 до 600 кг молекулярного азота на 1 га, практически по˝л-
ностью обеспечивая свои потребности в азотном питании. Кр˝оме того, в результате минерализации пожнивных остатков этих˝ культур происходит существенное обогащение почвы доступным˝ для усвоения последующими культурами азотом. Особенно много˝ азо-
та могут накапливать за счет симбиотической азотфиксаци˝и лю-
церна (300—500 кг · га–1), клевер (200—300 кг · га–1), люпин (100— 200 кг · га–1).
Восстановление молекулярного азота в аммиачный катализ˝ирует ферментный комплекс нитрогеназы (1.18.2.1), состоящий из
двух белков. Один из них, высокомолекулярный, осуществляе˝т
непосредственно восстановление молекул азота. Он предст˝авляет собой тетрамер, состоящий из двух типов субъединиц, входя˝щих поровну в состав тетрамерного белка (α2β2). В каждой молекуле
тетрамера содержится два атома Мо, с каждым из которых вза˝и-
модействуют три 4Fe4S-кластера, образуя каталитический центр˝.
С ним связываются молекулы азота и подвергаются восстано˝вле-
457
![](/html/2706/286/html_PF_Uu9xU7E.wH7e/htmlconvd-CmWawX458x1.jpg)
нию. Белковый компонент нитрогеназы, катализирующий восс˝тановление молекулярного азота, называют Мо, Fe-белком.
В составе нитрогеназы содержится также низкомолекулярн˝ый белок, состоящий из двух одинаковых полипептидных субъед˝и-
ниц. Он включает в качестве активной группировки 4Fe4S-клас- тер и выполняет функцию восстановления Mo, Fe-белка посред-
ством переноса электронов от восстановленного ферредок˝сина. Поскольку низкомолекулярный компонент нитрогеназы соде˝ржит
железосерную группировку, его называют Fe, S-белком. Следует˝
отметить, что перенос электронов от Fe, S-белка на Mo, Fe-белок
сопряжен с гидролизом АТФ. С помощью молекулярных расчето˝в
определено, что перенос каждой пары электронов в ферментн˝ом комплексе нитрогеназы сопряжен с гидролизом 4—5 молекул А˝ТФ.
Молекулярная масса Fe, S-белка клубеньков бобовых растений
составляет ~65 тыс., Mo, Fe-белка — порядка 200 тыс. По-видимо-
му, восстановление азота происходит в три стадии. Вначале моле-
кула азота, акцептируя два электрона и два протона, превра˝щается в диимид. Затем к атомам азота диимида в составе ферментно˝го
комплекса присоединяются еще два электрона и два протона˝ с
образованием гидразина. На конечной стадии в результате п˝ри-
соединения двух электронов и двух протонов гидразин восс˝та-
навливается в аммиачную форму азота, которая высвобождае˝тся из ферментного комплекса и используется далее для синтез˝а
аминокислот.
Ключевую роль в восстановлении молекул азота в активном
центре нитрогеназы играют атомы молибдена. Последовател˝ь-
ность восстановительных реакций в активном центре нитро˝геназы может быть представлена в виде следующей схемы:
Нитрогеназа, катализирующая симбиотическую азотфикса-
цию, локализована в клетках клубеньков на корнях или лист˝ьях
растения-симбионта.
Наиболее хорошо изучен процесс азотфиксации в клубенька˝х
бобовых растений. Бактерии рода Rhizobium проникают в ткани коры корней бобового растения и инициируют в них интенсив˝ное
458
деление клеток, что приводит к образованию на корнях утол˝щений в виде клубеньков. Возникновение клубеньков — резул˝ьтат довольно сложного взаимодействия растения с клубеньков˝ыми бактериями на генетическом и молекулярном уровнях.
Инициаторами такого взаимодействия являются бобовые ра˝с- тения, которые выделяют в ризосферу корней вещества фенол˝ь-
ной природы — специфические флавоноиды. Под действием ф˝лавоноидов в клетках бактерий инициируется синтез так назы˝вае-
мых Nod-факторов, представляющих собой олигосахариды из 3—6
остатков N-ацетилглюкозамина, соединенные через атом азот˝а с
радикалом ненасыщенной жирной кислоты (специфичной для
каждого вида растений). В свою очередь, бактериальные Nod-фак˝- торы оказывают воздействие на клетки корневых волосков б˝обо-
вого растения, вызывая деформацию клеточной стенки и плаз˝ма-
леммы.
Âрезультате взаимодействия мембранных структур растит˝ель-
ной и бактериальной клеток формируется особая структура˝ — инфекционная нить, которая проникает в кортикальные клетки˝ кор-
ня и инициирует там образование мембран, отделяющих бакте˝ри-
альные клетки от цитоплазмы клеток растения, формирующих˝
ткани клубеньков.
Бактериальные клетки в клубеньках увеличиваются в разме˝рах
èпревращаются в особые структуры, предназначенные для аз˝от-
фиксации, — бактероиды. В них синтезируются ферментные систе-
мы нитрогеназы, электронтранспортной цепи синтеза АТФ, фер-
менты, катализирующие реакции цикла Кребса, а также осуще˝-
ствляющие транспорт в бактероид растительных метаболит˝ов и выводящие из него в растительную клетку продукты восстан˝овления молекулярного азота. Общая схема функционирования фе˝р-
ментных систем бактероида в клубеньках бобовых растений˝ представлена на рисунке 11.1.
Âбактероидах основной источник электронов и энергии для˝ восстановления молекулярного азота — реакции цикла Кре˝бса,
субстратами для которых служат главным образом дикарбоновые
кислоты (янтарная и яблочная), поступающие в бактероид из ˝цитоплазмы растительной клетки. Указанные субстраты, питаю˝щие бактероид, образуются в клетках клубеньков из фотоассими˝лятов растения по известным нам механизмам в соответствии со сл˝еду-
ющей схемой:
Сахароза, |
→ Моносахариды → Гликолиз → Фосфоенолпиро- |
поступающая |
виноградная |
по флоэме |
кислота |
Далее фосфоенолпировиноградная кислота под действием фосфоенолпируваткарбоксилазы превращается в щавелевоуксусную
459
![](/html/2706/286/html_PF_Uu9xU7E.wH7e/htmlconvd-CmWawX460x1.jpg)
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
nH + |
|
|
|
|
|
|
|
O 2 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ß блî÷íаÿ и |
|
Цикл |
|
ÍÀÄ · H |
|
|
Ýлекòрîíòраíсïîрòíаÿ |
|
|
|
– |
O 2 |
Ëеãî- |
||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
ne |
||||||||||||||||||
ÿíòарíаÿ |
|
Кребса |
|
|
|
|
|
|
|
|
öеïü |
|
|
|
|
|
|
|
ãлîбиí |
||||||
|
ÔÀÄ · H |
2 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||||||||||
кислîòû |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
– |
|
|
|
|
|
|
|
|
H O |
|
|||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ne |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ÀÒÔ |
|
|
|
|
|
2 |
|
|
ÏÂК |
|
|
|
|
|
|
ÏÂК |
|
|
|
|
Ôä |
|
ÀÄÔ |
|
|
|
|
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
– |
|
H PO |
|
|
|
|
|
|
|
||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
ne |
|
3 |
4 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
Àлаíиí |
|
|
|
|
|
Fe, S-белîк |
ÀÒÔ + H O |
2 |
|
|
|
||||||||
 клеòкó |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
– |
|
ÀÄÔ + H PO |
|
|
|
|||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
3 |
4 |
|
|
||||||||
|
|
|
|
|
|
|
+ |
|
|
|
|
|
|
|
ne |
|
|
|
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
NH |
NH 3 |
|
|
Mo, Fe-белîк |
|
|
|
|
N 2 |
|
|
N 2 |
|||||||
|
|
|
|
|
|
4 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||||||||
расòеíиÿ |
|
|
|
|
|
|
|
+ |
|
|
|
||||||||||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
nH |
|
|
|
|
|
|
Ìеìбраíа бакòерîиäа
Рис. 11.1. Схема биохимических процессов, происходящих в бак˝тероидах клубеньков бобовых растений:
ПВК — пировиноградная кислота; Фд — ферредоксин
кислоту, которая с участием малатдегидрогеназы восстанавливает-
ся затем в яблочную кислоту:
Âмембране, окружающей бактероид, локализованы также ферменты, катализирующие превращение яблочной кислоты в˝
янтарную.
Âходе реакций цикла Кребса, происходящих в бактероиде, си˝н-
тезируются восстановленные динуклеотиды НАД · Н и ФАД ˝· Н,
2
которые служат донорами электронов для электронтранспо˝ртной
цепи системы окислительного фосфорилирования, обеспечи˝ваю-
460