- •1. Клиническая диагностика остеодистрофии у крупного рогатого скота
- •Практика (как провести диагностику) Диагностика комплексная, включает анамнез, клинический осмотр и лабораторные методы. Проводите в следующей последовательности:
- •2. Техника введения лекарственных веществ в книжку корове. Показания к проведению
- •Практика (техника выполнения)
- •3. Техника прокола рубца у крупного рогатого скота. Показания к проведению
- •Практика (техника выполнения)
- •4. Техника введения лекарственных веществ подкожно корове
- •Практика (техника выполнения)
- •Практика (техника выполнения)
- •6. Проведите клиническое исследование рубца у крупного рогатого скота
- •5. Техника получения мочи у крупного рогатого скота
- •Практика (как провести исследование)
- •Билет 7: Проведение клинического исследования лимфоузлов у крупного рогатого скота.
- •Билет 8: Проведение клинического исследования пульса у крупного рогатого скота.
- •Билет 9: Проведение диагностики травматического ретикулита у крупного рогатого скота клиническими и инструментальными методами исследования.
- •Билет 10: Диагностика заболеваний печени у крупного рогатого скота клиническими методами исследования.
- •Билет 11: Диагностика заболеваний сердца у крупного рогатого скота клиническими методами исследования.
- •Билет 12: Диагностика заболеваний легких у крупного рогатого скота клиническими методами исследования.
- •Билет 13: Диагностика заболеваний верхних отделов дыхательной системы у крупного рогатого скота клиническими методами исследования.
- •Билет 14: Техника введения лекарственных веществ внутримышечно корове.
- •Билет 15: Подготовка искусственной вагины для получения спермы у быка-производителя.
- •Билет 16: Диагностика субклинического мастита у коров.
- •Билет 17: Диагностика и схема лечения гнойно-катарального эндометрита.
- •Билет 18: Оценка качества свежеполученной спермы барана.
- •Билет 19: Характеристика набора инструментов для родовспоможения.
- •Билет 20: Осуществление клинического исследования молочной железы у коровы.
- •Билет 21: Выполнение массажа вымени при серозном и катаральном мастите у коровы.
- •Билет 22: Описание правил приема новорожденного теленка.
- •Билет 23: Осуществление туалета наружных половых органов и вагинальное исследование у коровы.
- •Билет 24: Ректальный метод диагностики стельности коров.
- •Билет 25: Методика вправления и фиксации матки при ее вывороте и выпадении.
- •I. Подготовка и оценка состояния.
- •II. Методика вправления.
- •III. Фиксация матки после вправления.
- •IV. Послеоперационное лечение.
- •Билет 26: Получить сперму у барана-производителя.
- •Билет 27: Подготовка инструментов для искусственного осеменения коровы цервикальным способом с ректальной фиксацией шейки матки (ректоцервикальный способ).
- •Билет 28: Методика использования календаря техника по искусственному осеменению.
- •Билет 29: Методика вдувания воздуха в вымя корове при послеродовом парезе.
- •Билет 30: Методика внутриматочных введений жидких лекарственных форм препаратов и маточных свечей, палочек.
- •Билет 31: Блокада нервов вымени у коров (по д.Д. Логвинову).
- •Билет 32: Методика внутрицистернальных введений лекарственных препаратов у коров.
- •Билет 33: Определение видовой принадлежности возбудителя ларвальных цестодозов и обоснование по каким критериям сделан вывод.
- •Билет 34: Определение рода иксодового клеща – переносчика пироплазмоза крупного рогатого скота.
- •Билет 35: Определение видовой принадлежности возбудителя гиподерматоза крупного рогатого скота.
- •Билет 36: Определение вида постоянного эктопаразита, обнаруженного у коров дойного стада.
- •Билет 37: Определение вида чесоточного клеща.
- •Билет 38: Методика взятия глубокого соскоба кожи на саркоптоидозы.
- •Билет 42: Техника проведения исследования фекалий на трематодозы жвачных животных (метод последовательных смывов).
- •Билет 43: Техника проведения исследования фекалий на цестодозы и нематодозы животных (метод флотации Фюллеборна).
- •Билет 44: Техника проведения исследования фекалий на легочные стронгилятозы (метод Бермана-Орлова).
- •Билет 45: Определить вид пироплазмид в мазке крови.
- •Билет 46: Проведите отбор проб на кампилобактериоз от быка и составьте сопроводительную на пробу в лабораторию.
- •Билет 47: Отбор проб на инфекционный мастит и составление сопроводительной на пробу в лабораторию.
- •Билет 48: Отбор крови у коровы для серологического исследования на лейкоз крс и составление сопроводительной на пробу в лабораторию.
- •Билет 49: Отбор крови у коровы для гематологического исследования на лейкоз крс и составление сопроводительной на пробу в лабораторию.
- •Билет 50: Вакцинация мрс от клостридиозов и составление акта на проведённое мероприятие.
- •Билет 51: Проведение туберкулинизации внутрикожным методом у крс и составление акта.
- •Билет 52: Проведение туберкулинизации офтальмопробой у крс и составление акта.
- •Билет 53: Проведение туберкулинизации внутривенной пробой у крс и составление акта.
- •Билет 54: Проведение клинического осмотра и заключение на наличие признаков некробактериоза у крс.
- •Билет 55: Проведение вакцинации крс от ирт и составление акта на проведённое мероприятие.
- •Билет 56: Проведение расчистки и обрезки здоровых копытец.
- •Билет 57: Проведение исследования животного на ламинит.
- •Билет 58: Проведение исследования животного на смещение сычуга.
- •Билет 59: Наркоз крс и подготовка к нему.
- •Билет 60: Проведение исследования и лечение животного при межпальцевом дерматите.
- •Билет 61: Флегмона венчика, диагностика и лечение.
- •Билет 62: Абсцессы у крс, этиопатогенез, диагностика и лечение.
- •Билет 63: Флегмона у крс, этиопатогенез, диагностика и лечение.
- •Билет 64: Проведение исследования мякиша пальца на патологии.
- •Билет 65: Исследование копытец пробными щипцами, на какие патологии проводится.
- •Билет 66: Проба клином, патологии для исследования.
Билет 37: Определение вида чесоточного клеща.
Чесотка (акароз) у крупного рогатого скота вызывается тремя основными видами клещей: Sarcoptes scabiei var. bovis (саркоптоз), Psoroptes ovis (псороптоз) и Chorioptes bovis (хориоптоз). Определение вида основано на микроскопическом исследовании морфологии клеща, извлеченного из глубокого соскоба кожи или с поверхности кожи в очагах поражения, с использованием микроскопа при увеличениях (х40, х100, х400).
Диагностика начинается с макроскопической оценки клинической картины. Для саркоптоза характерны поражения на голове, шее, с последующим распространением; сильнейший зуд, образование корок и утолщение кожи. Псороптоз чаще начинается с мест с длинной шерстью (холка, спина, крестец); образуются мокнущие папулы, корки; зуд выраженный. Хориоптоз поражает дистальные части конечностей (пясть, плюсну, кожу вымени); зуд слабый или умеренный, наблюдаются корочки и шелушение.
Лабораторная диагностика: Отбирают поверхностные соскобы на границе здоровой и пораженной кожи (саркоптез - глубокие). Соскобы помещают на предметное стекло. 2 Группы методов исследования соскобов: Витальные - клещи в соскоке живые - К со скобу добавляют 2-3 капли керосина (обесцвечивание и размягчение кожных чешуек; метод Приселковой)/вазелинового масла/глицерина. Мортальные - клещи мертвые - К соскобу добавляют несколько капель 10% щелочи NaOH/KOH, соскоб подогревают, перемешивают, оставляют на 30-40 минут и исследуют под малым увеличением микроскопа.
Дифференциальная диагностика видов основана на ключевых морфологических признаках взрослых особей. Первый критерий — длина тела и форма: Sarcoptes scabiei имеет округлое тело длиной 0.2-0.5 мм, сероватого цвета; Psoroptes ovis — овальное тело длиной 0.5-0.8 мм; Chorioptes bovis — овальное тело длиной 0.3-0.5 мм. Второй критически важный критерий — строение конечностей. У всех видов четыре пары ног. У самок Sarcoptes две пары ног (передние) выходят за контур тела и оканчиваются длинными нечленистыми стерженьками с присосками на концах, а две задние пары ног короткие и оканчиваются длинными щетинками. У Psoroptes все четыре пары длинных ног выходят за контур тела, причем первые три пары у самок и все четыре у самцов оканчиваются трехчленистыми присосками (амбулакрами) на длинных членистых стерженьках. У Chorioptes ноги короткие, не выступают или слабо выступают за контур тела; присоски у самок имеются только на первой и второй парах ног, стерженьки присосков нечленистые.
Третий критерий — строение ротового аппарата. Sarcoptes имеет грызущий ротовой аппарат в виде подковообразных хелицер. Psoroptes и Chorioptes обладают колюще-сосущим ротовым аппаратом. Четвертый признак — локализация паразита: Sarcoptes обитает в толще эпидермиса, прокладывая ходы; Psoroptes и Chorioptes — на поверхности кожи, питаясь тканевой жидкостью.
Билет 38: Методика взятия глубокого соскоба кожи на саркоптоидозы.
Взятие глубокого соскоба кожи — основной диагностический метод при подозрении на саркоптоз и другие инвазии, вызываемые клещами, обитающими в толще эпидермиса (Sarcoptes, Notoedres).
Первый этап — подготовка. Необходимо выбрать свежий, не покрытый толстыми корками участок поражения, обычно на границе здоровой и поврежденной кожи. Классические места: края ушных раковин, локтевые складки, шея. Подготавливают стерильные инструменты: острый скальпель или лезвие, предметные и покровные стекла, пробирки, пипетку, 10% раствор едкого натра или калия, глицерин, микроскоп.
Второй этап — техника взятия соскоба. Левой рукой плотно сжимают кожную складку на выбранном участке для выдавливания клещей из глубоких ходов ближе к поверхности. Правой рукой берут скальпель, смоченный стерильным вазелиновым или глицериновым маслом (для лучшей адгезии материала), и производят энергичные соскабливающие движения до появления капиллярной крови или серозного экссудата. Соскоб должен быть глубоким и достаточно обширным (площадью около 1-2 см²). Собранный материал (эпидермис, кровь, лимфа) переносят скальпелем на предметное стекло или в пробирку с небольшим количеством физиологического раствора или 10% раствора едкого натра.
Третий этап — подготовка препарата для микроскопии. Материал с предметного стекла помещают в центр нового стекла. Добавляют 1-2 капли 10% раствора едкого натра или калия для мацерации и просветления органических остатков. Препарат осторожно подогревают над пламенем спиртовки 1-2 минуты, не доводя до кипения. Затем накрывают покровным стеклом и слегка придавливают для равномерного распределения материала. Альтернативный метод: материал из пробирки центрифугируют 5 минут, осадок переносят на стекло в капле глицерина и исследуют.
Четвертый этап — микроскопическое исследование. У самок Sarcoptes две пары ног (передние) выходят за контур тела и оканчиваются длинными нечленистыми стерженьками с присосками на концах, а две задние пары ног короткие и оканчиваются длинными щетинками. Sarcoptes имеет грызущий ротовой аппарат в виде подковообразных хелицер.
Билет 39: Методика исследования соскобов кожи на саркоптоидозы.
Билет 40: Методика взятия поверхностного соскоба кожи на саркоптоидозы.
Билет 41: Методика отбора проб фекалий для исследования на легочные гельминтозы жвачных животных.
Диагностика легочных гельминтозов (диктиокаулез, протостронгилез, мюллериоз и др.) основана на обнаружении личинок первой стадии (L1) в фекалиях животных с помощью специальных методов обогащения. Качество исследования напрямую зависит от правильности отбора, хранения и транспортировки пробы. Прижизненная диагностика проводится копроскопическими методами, преимущественно методом Бермана-Орлова. Основа метода — активный выход личинок из фекалий в теплую воду благодаря их положительному термотропизму и способности мигрировать.
Отбор пробы проводится от животных с клиническими признаками бронхопневмонии (кашель, истечения из носа, истощение) или выборочно от 20-30% поголовья для мониторинга. Проба берется индивидуально от каждого животного. У крупного рогатого скота и овец забор фекалий осуществляется непосредственно из прямой кишки ветеринарной перчаткой или с чистого пола, кормушки сразу после дефекации, избегая контакта с подстилкой, землей или водой.
Требования к пробе: объем не менее 10-15 граммов для КРС и 3-5 граммов для МРС. Консистенция должна быть нормальной, без признаков диареи или запора, так как это влияет на выход личинок. Собирают пробу в чистый, сухой, герметично закрывающийся пластиковый контейнер или целлофановый пакет с застежкой.
Условия хранения и транспортировки критичны. Идеально исследовать пробу в течение первых 2-3 часов после сбора. При необходимости хранения более 3 часов пробу помещают в холодильник при температуре +4...+6°C, но не более чем на 24 часа. Замораживание недопустимо, так как приводит к гибели личинок. Транспортировка осуществляется в термоконтейнере со хладагентами, избегая перегрева выше +25°C и прямого солнечного света.
