863

Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования

«Пермская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.Н. Прянишникова»

МОЛОДЕЖНАЯ НАУКА 2013: ТЕХНОЛОГИИ, ИННОВАЦИИ

Материалы LXXIII Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых, аспирантов и студентов

(Пермь, 11-15 марта 2013 года) Часть 3

ПЕРМЬ ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА

2013

УДК 001 ББК 72

М 754

Научная редколлегия: Ю.Н. Зубарев, Э.Д. Акманаев, Л.В. Сычева, Т.Н. Сивкова, А.М. Кашфуллин, Н.П. Шалдунова, Л.А. Кошелева, К.П. Кукликова, П.Ю. Иванов.

Молодежная наука 2013: технологии, инновации, LXXIII М-754 Всероссийская науч.-практическая конф. (2013 ; Пермь). LXXIII

Всероссийская научно-практическая конференция «Молодежная наука 2013: технологии, инновации», 11-15 марта 2013 г. Ч. 3 [Текст]: в 3 ч. / науч. ред. Ю.Н. Зубарев [и др.] – : Пермь : Изд-во ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА, 2013. – 366 с. – В надзаг. : М-во с.-х. РФ, Федеральное гос. бюджет. образов. учреждение высшего проф. образов «Пермская гос. с.-х. акад. им. акад. Д. Н. Прянишникова».

ISBN 978-5-94279-165-0.

В сборнике представлены результаты научных исследований молодых ученых, аспирантов и студентов. В них затронуты проблемы сельского хозяйства по актуальным вопросам ветеринарной медицины, зоотехнии, механизации сельского хозяйства, технического сервиса в АПК, техносферной безопасности, управления земельными ресурсами, прикладной информатики, архитектуры и строительства.

Сборник предназначен для ученых, преподавателей, аспирантов, студентов сельскохозяйственных вузов и специалистов АПК.

УДК 001 ББК 72

Научное издание

МОЛОДЕЖНАЯ НАУКА 2013: ТЕХНОЛОГИИ, ИННОВАЦИИ

Материалы LXXIII Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых, аспирантов и студентов (Пермь, 11-15 марта 2013 года)

Часть 3

Подписано в печать 30.04.2013. Формат 60х84 1/8 Усл. печ. л. 45,75. Тираж 100 экз. Заказ № 91

ИПЦ «ПрокростЪ»

Пермской государственной сельскохозяйственной академии имени академика Д. Н. Прянишникова

614990, Россия, г. Пермь, ул. Петропавловская, 23 Тел.: (342) 210-35-34

Печатается по решению ученого совета Пермской государственной сельскохозяйственной академии имени академика Д.Н. Прянишникова.

ISBN 978-5-94279-165-0

© ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА, 2013

ВЕТЕРИНАРНАЯ МЕДИЦИНА И ЗООТЕХНИЯ

ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ

УДК 619:614+637,5

Е.А. Безматерных – студентка А.Т. Волков – научный руководитель, доцент ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КАЧЕСТВА СУХИХ ПОЛНОРАЦИОННЫХ КОРМОВ ДЛЯ КОШЕК

На сегодняшней день одним из самых популярных товаров среди потребителей является сухой корм для животных. Существуют два основных типа кормов: домашние и промышленные. За рубежом большая часть владельцев животных предпочитает удобные и дешевые готовые промышленные корма. В США более 92% владельцев собак и кошек в качестве основной части рациона используют промышленные корма. Тем не менее, некоторые владельцы предпочитают использовать для кормления животных самостоятельно приготовленные корма. Но, даже при тщательном выполнении всех рекомендаций при приготовлении кормов в домашних условиях, животные чаще подвержены заболеваниям, чем при кормлении промышленными кормами (результаты анамнеза ветеринарных клиник г. Пермь). В настоящее время выпускается три основных вида кормов для животных: сухие (6-10% влаги), полусухие (23-40% влаги), консервированные (68-78% влаги). Использование субпродуктов, имеющих низкую пищевую ценность и не пользующихся спросом у населения (головы бараньи без мозгов и языков, путовые суставы, сычуги, говяжьи селезенки, книжки, конские легкие, калтыки и др.), а также выбракованные конфискаты после ветеринарносанитарной экспертизы - является актуальной темой для производства промышленных полнорационных кормов для животных.

Цели и задачи исследования. Цель нашей работы – изучение качества сухих полнорационных кормов для взрослых кошек. Исходя из указанной цели, перед нами были поставлены следующие задачи:

1.Изучить органолептические показатели кормов разных производителей: внешний вид, цвет гранул, запах, форма гранул.

2.Провести лабораторные исследования: определение pH, содержания влаги в кормах, наличия металлических примесей в корме, определение токсичности корма на простейших (инфузориях).

На основании комплексных исследований – предложить научнообоснованную ветеринарно-санитарную оценку кормов разных производителей.

Материалы и методы. Работа проводилась в период с октября 2012 года по март 2013 года на кафедре инфекционных болезней в лаборатории ветери- нарно-санитарной экспертизы и лаборатории кафедры кормления факультета ветеринарной медицины и зоотехнии Пермской ГСХА.

3

Материалом для исследования послужили сухие полнорационные корма в упаковке для кошек разных производителей, купленные в зоомагазинах города Перми и на центральном продовольственном рынке. Образцы для исследования брались массой по 2 кг, каждый из которых подвергался трехкратному исследованию и выводили среднее значение каждого показателя. Для удобства в работе пробы кормов были нами распределены по номерам: 1 - Bosh sanabel (Германия), 2 – Eucanuba (Голландия), 3 – Hill’s (Голландия), 4 - Cat chow (Франция), 5 - Pro plan (Франция), 6 - Royal canin (Франция), 7 – One (Франция), 8 – Wiskas (Россия), 9 – Kitеcat (Россия).

Исследования проводили по общепринятым методам, а результаты исследований выражались в установленных методах единиц измерения.

Результаты исследований. В результате проведенных исследований (внешний вид, запах, форма гранул) полнорационных сухих кормов для кошек в количестве 9 проб выявили, что по степени свежести - свежим кормам соответствовали пробы № 1, 2, 4, 7; а пробы 3, 5, 6, 8 – сомнительной свежести; и несвежей была проба № 9 (таблица №1).

Для подтверждения качества кормов, установленного по органолептическим показателям, мы проводили лабораторные исследования (определение веса 1 гранулы, рН, влажности, содержание металлических примесей, песка, протеина и токсичности).

В результате лабораторных исследований полнорационных сухих кормов для кошек в количестве 9 проб нами выявлено, что пробы № 1, 2, 4 – соответствовали свежим кормам, а пробы № 3, 5, 6 - сомнительной свежести и не свежими пробами являлись - № 7, 8, 9 (таблица № 2).

Заключение. На основании проведенных комплексных органолептических и лабораторных исследований доброкачественным (свежим) кормам соответствовали пробы № 2, 3, 4 - потребитель может скармливать их своим питомцам на общих основаниях; сомнительной свежести пробы - № 1, 5, 6 - должны быть использованы после термической обработки, а пробы № 7, 8, 9 – относились к несвежим кормам, они не пригодны для употребления в пищу животным, их рекомендуется утилизировать.

4

Окончание таблицы № 1

5

Литература

1.Волков Г.К., Смирнова И.Р., Карелина Е.А. Гигиенические требования к кормам, технологиям кормления и обеззараживания кормов: Методические указания. – М.: МГУПБ,

2006. – 35с.

2.Донченко Л.В., Надыкта В.Д. Безопасность пищевой продукции. – М.: ДеЛипринт,

2007. – 593 с.

3.Мотовилов М.Я. идр. Экспертиза кормов и кормовых добавок: учеб.-справ.пособие. – Новосибирск: Сиб. Универ. Изд-во, 2009. – 336 с.

4.Серегин и др. Ветеринарно-санитарная экспертиза кормов. – М.: Книжный дом «ЛИБ-

РИКОМ», 2013. – 456с.

УДК 619.616

В.Д. Крылова – студент Т.Н. Сивкова – научный руководитель, доцент

ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА

ИЗОСПОРОЗ ТИГРОВ

Паразитарные заболевания цирковых животных наносят значительный ущерб, ухудшая самочувствие и внешний вид больных особей, а в некоторых случаях являются антропозоонозами. В литературе имеется незначительное количество информации, касающейстя распространения простейших у экзотических животных [2,3]. В настоящее время известно более 10 тыс. видов паразитических простейших [1]. У каждого вида животных паразитируют эймерии и изоспоры специфических видов, которые развиваются с участием одного хозяина. У ряда представителей (Isospora felis, I.rivolta) способна передача через резервуарных хозяев – грызунов.

Изоспороз - заболевание плотоядных, вызываемое простейшими рода Isospora и характеризующееся развитием диареи, обезвоживанием, истощением и интоксикацией организма. У кошачьих паразитируют представители видов

Isospora felis, I. rivolta.

Кошки являются окончательным хозяином, выделяющим незрелые формы паразита. Во внешней среде при благоприятных условиях происходит их созревание. Развитие происходит в кишечнике.

Наиболее восприимчивы молодые животные. Способствуют заражению антисанитарные условия содержания и кормления, снижение иммунитета.

Симптомы. Развивается диарея. Кал слизеподобный, с прожилками крови. В тяжелых случаях отмечается большое количество крови в кале. Аппетит снижен, возможен отказ от корма. Увеличивается мочеотделение, моча становится темной с резким запахом. Развиваются признаки обезвоживания организма, анемия. Кожа теряет эластичность. При хроническом течении регистрируют непродолжительный понос, животные отстают в росте, у молодняка развивается рахит. При поражении различных органов и систем наблюдают признаки и заболевания. Ранее при обследовании животных, принадлежащих другой цирковой про-

6

грамме, у 2 тигрят в возрасте 5-6 месяцев нашли I. felis (5,56%). Инвазия у тигрят сопровождалась признаками хронического катарального энтерита, снижением аппетита.

Материалы и методы. Фекалии собирали в контейнеры с консервантом Турдыева и исследовали методом Котельникова-Хренова.

Результаты. Нами было обследовано 14 тигров Panthera tigris, принадлежащих номеру «Тигры Суматры» под руководством заслуженного артиста России Павленко Н.К. Все животные на момент исследования клинически были здоровы, кал регулярный, оформленный.

При копрологическом исследовании яиц гельминтов и цист простейших обнаружено не было. В данной цирковой программе дегельминтизации проводятся ежеквартально, препаратами альбендазола, обработки против простейших отсутствуют. Раз в неделю помещения, где содержатся хищники, обрабатываются дезинфицирующими средствами на основе хлора. Уборка клеток и смена подстилки (опил) проводится регулярно. Контакт тигров с представителями других видов семейства Felidae исключен. Таким образом, достигается высокая степень профилактики паразитарных заболеваний.

Выводы. У тигров, принадлежащих обследованной программе, изоспороз отсутствует благодаря хорошо организованной профилактической работе.

Литература

1.Крылов М.В. Возбудители протозойных болезней домашних животных и человека. СПб РАН Зоологический институт. 1994г. 283 с.

2.Непримерова Т.А., Сивкова Т.Н. Паразитарные болезни представителей Felidae

вусловиях цирка // Материалы VIII Ремпубликанской научно-практической конференции с международным участием «Современные аспекты патогенеза, клиники, диагностики, течения и профилактики паразитарных заболеваний». – 27-28 сентября 2012. – С.131-133.

3.Сивкова Т.Н., Непримерова Т.А. Распространение паразитарных болезней хищ-

ных животных в условиях цирка. //Aktualne problemy nowoczesnych nauk. – Materialy VII Miedzynarodowej naukowi-praktycznej konferencji. – Vol.40. – Przemysl. – 2012. – 07-15 czerwca. – P.91-93.

УДК 619.616

О.Г. Кудрицкая, А.В. Ведерникова – студенты Т.Н. Сивкова – научный руководитель, доцент ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА

НЕРВНАЯ СИСТЕМА ЦЕСТОД И НЕМАТОД

Приспособление к факторам внешней среды – одно из важнейших условий выживания любого биологического объекта. Не исключением являются и паразиты. Для своевременной обработки информации и выработки ответной реакции у животных, в том числе и червей, служит нервная система. У разных представителей гельминтов устройство нервной системы изучено неодинаково, однако, данные об изменении ее структуры в различных неблагополучных усло-

7

виях (интоксикация, дегельминтизация) в доступной литературе отсутствуют. Цель нашей работы – изучение строения нервной системы цестод и нематод.

Нервная система цестод. Нервная система цестод развита слабо. Она состоит из центрального узла, расположенного в сколексе, и отходящих от него продольных стволов. Два из них, наиболее развитые, проходят вдоль всего тела в боковых частях члеников кнаружи от каналов выделительной системы. Продольные каналы соединяются между собой поперечными тяжами. Органы чувств у цестод отсутствуют.

Центральная нервная система нематод. На переднем головном конце имеются 4 головных ганглия (вентральный, дорзальный и парные латеральные), которые соединены нервным кольцом. В состав последнего входят несколько биполярных нейронов и волокна чувствительного, двигательного, соединительного и ассоциативного типов, формирующие общий ствол (комиссуру) и ряд сплетений.

От головных ганглиев в проксимальном направлении (к губам и сенсиллам) направляются 6, а в дистальном направлении – 6…8 продольных нервных стволов. В области ректума их связывает второе нервное кольцо; имеется ряд менее мощных комиссур, проходящих в слое гиподермы. Стволы представляют собой комплекс биполярных нейронов и отходящих от них отростков. Вокруг них расположены ганглии, представляющие собой скопления нейронов и ненейронных клеток. В хвостовом конце тела располагается анальный ганглий.

Ганглии связаны с сенсиллами нервными тяжами. На периферию (к тканям пищевода, мышечным клеткам и т.д.) от нейроцитов идут моторные нейроны. Те из них, в которых высвобождается ацетилхолин, стимулируют сокращение мышц. В других нейротрансмиттером служит 4-аминомаслянная кислота, обеспечивающая противоположный эффект. Нервная система нематод синтезирует так же и другие нейромедиаторы – допамин, серотонин, катехоламины (адреналин, норадреналин и октапомин), глютаматы, а так же ряд нейропептидов, проявляющих гармональный эффект и принимающих участие в регулировании подвижности кишечника, репродукции, созревании и линьке, а некоторые из них подавляют иммунитет хозяина.

Периферическая нервная система нематод. Включает в себя механо- и

хеморецепторные образования (сенсиллы). Их основу составляет чувствительная клетка – биполярный нейрон. Его покрытое ресничками рецепторное окончание выходит на поверхность сенсиллы или заключено в карман, сформированный ненейронными клеточными элементами. С телом нейрона рецепторное окончание соединено дендритом. Полученную информацию нейрон передает по своему аксону в ту часть центральной нервной системы, рядом с которой находится тело нервной клетки. В ряде случаев рецепторное окончание нейрона проходит через муфту, сформированную эпидермальной клеткой, которая образует секрет, обеспечивающий специфичность и чувствительность рецептора, а так же кутикулярную выстилку канала для дендрита.

8

В одной сенсилле могут находиться различные типы рецепторов. Хеморецепторы превалируют в сосочках внутреннего круга и амфидах, а механорецепторы – в остальных сенсиллах.

Наиболее примитивная схема расположения сенсилл на переднем конце нематод включает: 2 амфиды, 12 губных (лабиальных) и 4 головных (цефалических) сосочков. На губах сосочки располагаются медиально и радиально, в равном количестве распределяясь по другим кругам (внутреннему и наружному). Цефалические сосочки и амфиды лежат симметрично (билатерально) позади губ.

Амфиды являются важнейшими сенсиллами, способными распознавать физико-химические раздражения. Внешне они выглядят как углубления кутикулы, расположенные по сторонам ротового отверстия. Чем сложнее их структура, тем большей чувствительностью они обладают. По форме амфиды разнообразны (округлые, спиральные, щелевидные и т.д.). Их устье ведет к рецептору. Внутри амфид имеется карман с рецепторными окончаниями. Основная функция амфид состоит в определении положения паразита в пространстве.

Литература

1.Паразитология и инвазионные болезни животных/М.Ш. Акбаев, А.А. Водянов, Н.Е. Косминков и др., под ред. М.Ш. Акбаева. – М.: КолосС, 2002. – 743 с.: ил. – (Учебники и учеб. пособие для студентов высш. учеб. заведений).

2.Шуляк Б.Ф., Архипов И.А. «Нематодозы собак. Зоонозы и зооантропонозы». – М. Издательство «ОЛИТА», 2008. – 544 с.

УДК 614.9.07:664.91/93

М.Н. Лекомцева – студент Т.Н. Сивкова – научный руководитель, доцент ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА

ГЕННЕГВИОЗ ЩУК

Щука (Esox lucius) является одной из ценнейших промысловых рыб Пермского края. Одним из характерных паразитов щук является миксоспоридии рода Henneguya, которые паразитируют в половых органах самок (икринки и яичники), происходит паразитарная кастрация рыбы. Снижается популяция рыбы в водоемах, что наносит экономический вред хозяйствам.

Цели и задачи. Целью нашего исследования было изучение видового состава миксоспоридий щук из рек Пермского края. Исходя из этой цели, нами были сформулированы следующие задачи:

1.Освоить паразитологическое вскрытие рыбы;

2.Научиться приготовлению мазков и окраске их по Романовскому-

Гимза;

3.Определить вид найденных миксоспоридий.

Материалы и методы исследования. Нами были исследованы 5 щук

(длиной от 30 до 60 см) выловленных в осенний период в реках Очер (д. Кулики,

9

Очерского р-на) и Кама (д. Першино, Оханского р-на). Рыбу вскрывали стандартным методом. Из измененных участков икры готовили мазки-отпечатки, которые фиксировали по Май-Грюнвальду, после чего окрашивали по Романов- скому-Гимза. Препараты просматривали на световом микроскопе и фотографировали.

Результаты. В рыбе, выловленной в реке Очер, цист возбудителя найдено не было. Рыба из реки Кама оказалась заражена Henneguya oviperda.

Миксоспоридии характеризуются спорами (миксоспорами), состоящими из нескольких клеток, которые впоследствии трансформируются в 2 створки раковины, 2 полярные капсулы 2 амебоидных клетки или спороплазмы. Полярные нити служат для прикрепления и проникновения споры в кишечник дефинитивного хозяина, представленного, в основном, аннелидами. Размеры спор без отростков 16-22x9-10 мкм. У некоторых видов плазмодий спора может достигать длины 2 см. Это образование в тканях иногда называют псевдоцистами. Они имеют белый или желтоватый цвет. Оболочка псевдицисты образуется за счет разрастания соединительной ткани хозяина, которая располагается концентрическими слоями. Миксоспоридии питаются путем пиноцитоза или активного транспорта, а иногда и поглощают частички тканей хозяина. Внутриклеточный паразитизм для них нехарактерен и имеет место на самых ранних вегетативных стадиях развития. В настоящее время насчитывается около 1100 видов миксоспоридий у рыб. Отличительной особенностью Henneguya oviperda является наличие двух хвостовых отростков, часто слабо различимых. Споры веретеновидные, удлиненные слегка закругленные на переднем конце.

Внедряясь в икринки, амебоиды вызывают их гипертрофию и гибель. При попадании паразита в кровеносные сосуды яичника образуются коричневые узелки, соединенные между собой тяжами. Поселяясь в репродуктивном органе, паразит нарушает его нормальную жизнедеятельность. При сильных заражениях возможна полная паразитарная кастрация рыб.

Цикл развития миксоспоридий сложный. Зрелая спора выходит из тканей рыбы в окружающую воду. В аннелидах происходит половой процесс с образованием актиноспор. Актиноспоры попадают в организм промежуточного хозяина (рыб), открываются в организм рыбы, превращаются в трофозоиты или вегетативные стадии.

Диагноз ставят на основании клинических и патологоанатомических признаков и при обнаружении большого числа цист возбудителя. Паразиты отмечаются у щук в разных водоемах России.

В качестве мер борьбы рекомендуется отлов зараженных щук.

Литература

1.Костарев Г.Ф. Паразиты и болезни рыб бассейна Средней Камы (в условиях загрязнения). - Пермь: Издательство Пермского университета, 2003. - 194с.

2.Dykova I., Lorn J. Histopalhology of Protistan and Myxozoan Infections in Fishes.— lsted. - Praha: Academia, 2007. -220s.: iL

3.Mitchell L.G. (1977): Myxosporida. In: J.F.Kreier (Ed.), Parasitic protozoa, Vol. 4, 115—154. Academic Press.

10