- •4. 5. 6. Yersinia pestis - возбудитель чумы.
- •7. Факторы патогенности y.Pestis
- •9. Эпидемиология чумы.
- •10. Вакцина чумная живая сухая z препарат представляет собой живые бактерии вакцинного штамма чумного микроба ев линии нии эг, лиофильно высушенные.
- •Задача 2.
- •1. 2. Bacillus anthracis - возбудитель сибирской язвы
- •3. 4. Факторы патогенности b.Anthracis
- •5. Эпидемиология сибирской язвы
- •6. Лабораторная диагностика сибирской язвы
- •Задача 3.
- •1. 2. Лабораторная диагностика бруцеллеза
- •3. 4. Бруцеллы - возбудители бруцеллеза
- •5. Эпидемиология бруцеллеза.
- •6. Факторы патогенности бруцелл
- •Задача 4.
- •1. 2. 3. Treponema pallidum - возбудитель сифилиса
- •Задача 2.
- •Задача 3.
- •Задача 4.
- •5. Chlamydia tracbomatis -возбудитель урогенитального хламидиоза
- •6. Факторы патогенности хламидий.
- •7. Патогенез и формы урогенитального хламидиоза
Задача 3.
1. 2. Лабораторная диагностика бруцеллеза
При диагностике бруцеллеза используют бактериологический, биологический и серологический методы, аллергическую пробу и полимеразную цепную реакцию (ПЦР)
В связи с высокой контагиозностью возбудителей, бактериологическая диагностика, а также другие исследования с живыми бруцеллами, выполняются только в специальных лабораториях с соблюдением правил работы с особо опасными инфекциями.
Исследуемые материалы: кровь, моча, костный мозг, суставная жидкость, ликвор, желчь, испражнения, грудное молоко и др.
Бактериологическое исследование. Посевы осуществляют на жидкие и плотные питательные среды: печеночный бульон и печеночный агар или мясопептонный бульон (МПБ) и мясопептонный агар (МПА) с добавлением 1% раствора глюкозы и 2% раствора глицерина или с асцитической жидкостью и другие среды. Посевы крови для получения гемокультуры проводят, начиная с первой недели болезни, при отрицательном результате делают повторные высевы. Процент высева B.melitensis в остром периоде составляет 60-90%, В.abortus — 5-15%.
Стерильно взятую кровь больного (10 мл) вносят по 5 мл в 2 флакона со 100 мл печеночного бульона (или другой питательной среды). В одном из флаконов создают атмосферу 10% СО2, что способствует выделению B.abortus. Учитывая замедленный рост бруцелл, посевы инкубируют при 37°С в течение 30 дней. Через каждые 4-5 дней из обоих флаконов делают высевы на печеночный агар - для получения колоний возбудителя. Одновременно с жидкими средами исследуемую кровь засевают непосредственно на плотную среду для ускорения исследований.
Хорошие результаты дают посевы костного мозга, которые выполняют аналогично. Миелокультуру удается получить в 2 раза чаще, чем гемокультуру, и не только в острый период, но и в более поздние сроки заболевания.
Исследуемые материалы, содержащие постороннюю микрофлору (мочу и др.) предварительно центрифугируют и затем засевают осадок на плотную среду, в которую добавляют генциан-виолет (1:200000) для задержки роста грамположительных бактерий.
Ускорения и увеличения высеваемости бруцелл удается достичь при посеве исследуемого материала в желток свежих куриных яиц или в желточный мешок куриного эмбриона. Зараженные куриные эмбрионы выдерживают в термостате при 37°С 5 дней, после чего желтки высевают на плотные и жидкие среды с целью выделения чистой культуры возбудителя.
Биологический метод. Его используют для выделения возбудителя при отрицательном результате бактериологического исследования. Метод заключается в заражении исследуемым материалом восприимчивых лабораторных животных - морских свинок или белых мышей - подкожно или внутрибрюшинно. Через 20-25 дней животных забивают и проводят бактериологическое исследование: высевы из крови, печени, селезенки, лимфоузлов на чашки с печеночным агаром для выделения чистой культуры.
Идентификация выделенной культуры. Бруцеллы, патогенные для человека, обладают сходной морфологией, культуральными и биохимическими свойствами и способностью агглютинироваться диагностической противобруцеллезной сывороткой.
Для отличия бруцелл от других бактерий используют окраску мазков из испытуемой культура по способу Козловского. Мазки окрашивают раствором сафранина (красного цвета) при подогревании, промывают водой, докрашивают раствором малахитового или бриллиантового зеленого и снова промывают водой. В результате окраски бруцеллы сохраняют красновато-розовый цвет, а остальные бактерии приобретают зеленую окраску.
Испытуемая культура должна агглютинироваться диагностической противобруцеллезной сывороткой в реакции агглютинации на стекле (ориентировочной) и в развернутой реакции агглютинации с возрастающими разведениями сыворотки (до ее титра), причем агглютинация культуры должна достигать не менее 2/3 титра сыворотки. Хорошие результаты дает также прямая иммунофлюоресценция.
Если испытуемая культура обладает вышеперечисленными свойствами, ее относят к бруцеллам и у больного диагностируют бруцеллез. Установление вида и биовара бруцелл необходимо для эпидемиологических целей и в определенной мере помогает прогнозировать течение заболевания. Для окончательной идентификации выделенной культуры проводят ее тестирование по комплексу дифференциальных признаков: потребность в СО2, образование НД бактериостатическое действие анилиновых красителей тионина и фуксина, агглютинация монорецепторными сыворотками А и М, чувствительность к диагностическому фагу Тб, способность к метаболическому окислению некоторых кислот и углеводов контроль антигена (0,03 диагностикума + 0,03 изотонического раствора NaCl). При положительной реакции во всех трех опытных дозах сыворотки или в дозах 0,02 и. 0,04 мл появляются хлопья, окрашенные в синий цвет. Реакцию Хеддльсона используют при массовых обследованиях, например в бруцеллезном очаге. С сыворотками, давшими положительный результат, обязательно ставят реакцию Райта.
Реакция Райта - развернутая реакция агглютинации, которую проводят в пробирках с разведениями сыворотки от 1:50 до 1:800. Для разведения сыворотки используют изотонический раствор NaCl, в который добавлен фенол (0,5%) В качестве антигена берут единый бруцеллезный диагностикум, разведенный 1:10. Диагностический титр реакции Райта 1:200.
Более надежные результаты дает исследование парных сывороток, взятых с интервалом 7-10 дней, что позволяет выявить динамику выработки антител (у вакцинированных титр сыворотки не изменяется).
Используют и другие серологические реакции - РНГА, обладающую большей чувствительностью; РСК, которая становится положительной через 3-4 недели после начала заболевания и длительно сохраняется; Непрямую РИФ, которая сохраняется во все периоды заболевания; ИФА - рекомендован в качестве экспресс-метода при массовых обследованиях на бруцеллез.
Эти же серологические реакции возможно применять для выявления возбудителей и/или их антигенов непосредственно в клиническом материале, но только в условиях специализированной лаборатории.
Внутрикожная аллергическая проба Бюрне. Выявляет аллергизацию организма к бруцеллезу, становится положительной к концу первого месяца болезни и сохраняется в течение жизни, поэтому ее используют для распознавания различных форм бруцеллеза, в том числе и хронических. Пробу ставят на сгибательной поверхности предплечья, куда внутрикожно вводят 0,1 мл бруцеллина (фильтрат 3-х недельной бульонной культуры бруцелл). При положительной реакции через 24 часа на месте введения появляется гиперемия и отечность диаметром 3-6 см, при резко положительной реакции диаметр отека превышает 6 см. Положительный результат пробы Бюрне наблюдают и у вакцинированных людей.
В диагностике бруцеллеза успешно применяется полимеразная цепная реакция (ПЦР).