- •Розділ I
- •Порівняння проникності клітинних мембран для різних речовин. Стійкий і тимчасовий плазмоліз
- •1.1.2 Вплив іонів калію і кальцію на форму плазмолізу
- •1.1.3Спостереження ковпачкового плазмолізу в розчинах нітрату калію і роданіду калію
- •Проникність живої і мертвої цитоплазми
- •1.2 Виявлення життєздатності клітин
- •1.2.1 Визначення життєздатності насіння методом фарбування (за д. Н. Нелюбовим)
- •1.2.2 Прижиттєве фарбування клітин нейтральним червоним
- •Використання солей тетразолію для виявлення живих і мертвих клітин
- •1.3 Рух цитоплазми
- •1.3.1 Спостереження за рухом цитоплазми у різних об'єктів
- •1.3.2 Визначення швидкості руху цитоплазми
- •Контрольні питання.
- •Розділ II хімічний склад рослин Мета заняття.
- •Питання до обговорення.
- •2.1.1 Властивості рослинних білків
- •2.1.1.1 Виділення рослинних білків
- •1. Отримання проламінів і глютелінів з насіння пшениці
- •2. Отримання альбумінів з бульб картоплі
- •3. Отримання глобулінів з насіння гороху
- •2.1.1.2 Визначення амінокислотного складу рослинних білків за допомогою якісних реакцій
- •1.Биуретова реакція
- •2. Реакція на ароматичні амінокислоти (реакція нітрування)
- •3. Реакція на цистеїн (реакція Фоля)
- •Визначення ізоелектричної точки рослинних тканин
- •Вуглеводи
- •2.2.1 Отримання розчинів моно-, ді-, полісахаридів і вивчення їх
- •2.2.1.2 Визначення сахарів за допомогою якісних реакцій
- •1.1 Виявлення глюкози і мальтози
- •1.2 Виявлення сахарози
- •1.3 Виявлення крохмалю
- •2. Реакція з α-нафтолом
- •2.2.2 Кислотний гідроліз крохмалю
- •2.2.3 Ферментативний гідроліз крохмалю
- •2.3 Жири
- •2.3.1 Головні властивості жирів рослин
- •Визначення ліполітичної активності насіння
- •2. Визначення ліполітичної активності
- •Контрольні питання
- •Розділ III
- •3.1.1. Явище осмосу. Переміщення води за градієнтом водного потенціалу в штучній «клітинці» Траубе
- •3.1.2 Визначення осмотичного тиску клітинного соку плазмолітичним методом (за де-Фрізом)
- •3.1.3 Визначення сисної сили клітин за зміною концентрації розчинів
- •Рефрактометричний метод (за н. А. Максимовим і н. З. Петіновим)
- •Метод цівок (за в. С. Шардаковим)
- •3.1.3.3. Визначення водного потенціалу рослинних тканин методом Уршпрунга (за зміною довжини брусків тканини)
- •3.2. Водообмін рослин
- •3.2.1. Визначення різних форм води в рослині
- •3.2.2. Вплив зовнішніх умов на процес гутації
- •3.2.3. Визначення інтенсивності транспірації за зменшенням маси зрізаного листя
- •3.2.4. Порівняння транспірації верхньої і нижньої сторін листа хлоркобальтовим методом
- •3.2.5. Вплив зовнішніх умов на стан продихів (за Молішем)
- •3.2.6. Визначення стану продихів методом відбитків
- •Підняття води в рослині по судинах
- •Контрольні питання
- •Розділ IV
- •Хімічні властивості пігментів
- •Омилення хлорофілу лугом
- •Отримання феофітину і відновлення металоорганічного зв'язку
- •Розділення суміші фотосинтетичних пігментів
- •Метод Крауса
- •Метод Цвета
- •Метод хроматографії на папері
- •Оптичні властивості пігментів зеленого листа
- •Спектри поглинання пігментів
- •Флуоресценція хлорофілу
- •4.1.5 Кількісне визначення пігментів
- •4.1.5.1 Визначення вмісту хлорофілу
- •1.Отримання витяжки хлорофілу
- •2.Визначення концентрації хлорофілу на феКі
- •3.Визначення концентрації хлорофілу на сФі
- •4.1.5.2 Визначення вмісту каротинів
- •4.2 Фізіологія фотосинтезу
- •4.2.1 Фотосенсибілізуюча активність хлорофілу
- •4.2.2. Визначення інтенсивності фотосинтезу і дихання за зміною вмісту вуглецю
- •Контрольні питання.
- •Список рекомендованої літератури Основна література
- •Додаткова література
Вуглеводи
Вуглеводи є групою органічних сполук, надзвичайно важливих для рослинних організмів, тому що є основним проміжним продуктом ряду біохімічних циклів перетворення речовин. На частку вуглеводів доводиться до 90% сухої речовини. За хімічною природою це альдегіди або кетони багатоатомних спиртів або продукти їх конденсації. Вуглеводи є одним з основних джерел енергії, яка утворюється в результаті обміну речовин в рослинах. За розмірами і властивостями молекул їх розділяють на прості (моносахариди) і складні (полісахариди). Моносахариди містять 2-7 атомів вуглецю, сполучених в нерозгалужений ланцюг; є безбарвними кристалічними речовинами, розчинними у воді, солодкі, оптично активні. Найважливішими з них є сполуки з 5 атомами вуглецю – пентози: рибоза і дезоксирибоза, що входять до складу нуклеїнових кислот і ксілоза, що міститься в деревині, соломі і т.п.;
α-D-рібоза α-D-дезоксірібоза α-D-ксілоза
Рисунок 2.1 Найпоширеніші пентози рослин
та гексози: глюкоза і фруктоза, що входять до складу клітинного соку (рис.2.2)
α -D-глюкоза α -D-глюкофураноза α -D-глюкопираноза
α -D-фруктофураноза α -D-фруктопираноза
α -D-фруктоза
Рисунок.2.2 Найпоширеніші гексози рослин
Полісахариди є продуктами конденсації пентоз і гексоз. Під дією кислот, приєднуючи воду (гідроліз), вони розпадаються знову на моносахариди. Залежно від будови молекул вищі сахари діляться на гомо- і гетерополісахариди.
Важливими представниками гомополісахаридів є целюлоза і крохмаль. Це високополімерні сполуки із загальною формулою (С6Н10О5)n, переважно аморфні речовини, без смаку; розчиняються у воді (інулін), створюючи при цьому колоїдні речовини, і нерозчинні (клітковина, крохмаль), у воді лише набухають. Вагома більшість полісахаридів в рослинних організмах знаходиться у вигляді резервних вуглеводів; целюлоза і пектинові речовини грають роль опорних структур.
2.2.1 Отримання розчинів моно-, ді-, полісахаридів і вивчення їх
властивостей
Матеріали і обладнання: 1) коренеплоди моркви, цукрового буряка; 2) терки металеві; 3) колби на 100 мл; 4) стакани; 5) фільтрувальний папір; 6) тканина, марля; 7) водяна лазня; 8) Н2SO4 (конц.); 9) 10% розчин соди; 10) Фелінгова рідина; 11) солод; 12) 1% розчин крохмалю; 13) I2 в KI; 14) 10% розчин α-нафтолу.
2.2.1.1 Екстракція сахарів з рослинних тканин
Сахара виділяють із запасаючих органів рослин (коренеплодів, насіння, бульб), оскільки саме там міститься найбільша їх кількість.
Хід роботи
1 Екстракція глюкози
Для отримання моносахариду глюкози можна використовувати коренеплід моркви. Обчищений і вимитий коренеплід моркви натирають на терці, беруть від 5 до 10 г мезги, поміщують в колбу, заливають 10-15 мл води, кип'ятять і фільтрують. З фільтратом проводять якісні реакції на сахари.
2. Екстракція сахарози
Для отримання дісахариду сахарози можна використовувати коренеплід цукрового буряка, звідки її і одержують технічно. Очищений і вимитий коренеплід цукрового буряка натирають на терці, беруть 20 г мезги, поміщують в колбу, заливають 50 мл води, ретельно перемішують і через 20 хвилин фільтрують. З фільтратом проводять якісні реакції на сахари.
. Екстракція мальтози
Для отримання дісахариду мальтози використовують солод: беруть 20 г солоду, поміщають в колбу, заливають 50 мл води, підігрітої до 300С, і фільтрують. З фільтратом проводять якісні реакції на сахари.
Отримання розчину крохмалю
Беруть 50 мл води, нагрітої до кипіння, і додають 1 г крохмалю, заздалегідь розчиненого в 10 мл холодної води. При додаванні крохмалю до киплячої води слідує киплячу рідину весь час розмішувати скляною паличкою. Після додавання крохмалю рідину кип'ятять до тих пір, поки вона не стане більш менш прозорою. З отриманим розчином проводять якісні реакції на сахари.