Природные антиоксиданты (экологический аспект). Монография
.pdf
Антоцианы — природные антиоксиданты растений
тканях, способно защитить их от случайных и кратковременных температурных колебаний. Кроме того, уменьшение уровня насыщенности мембранных липидов, вызывающее повышение чувствительности к действию УФ и увеличение вследствие этого уровня свободных радикалов, имеющих более пролонгированный период жизни в этих условиях (ChalkerScott, 1999), может быть компенсировано увеличением содержания антоцианинов в эпидермальных слоях растительных тканей.
** *
Впоследнее время исследованы различные аспекты действия экологических факторов на накопление антоциановых пигментов в растениях. Наиболее изучен свет, температура, минеральное питание, действие химических веществ и поллютантов, а также периоды интенсивного роста и старения, сопровождающиеся образованием антоциановых пигментов. Известно, что и уровень АФК повышается в этих условиях. Способность антоцианов нейтрализовывать АФК по типу, сходному с α-токоферолом и каротиноидами, позволяет им функционировать как эндогенным антиоксидантам, уменьшающим их токсичность, и наравне конкурировать с супероксиддисмутазой, дополняя или компенсируя недостаток таких эндогенных антиоксидантов, как глютатион, флавонолы или АК, выступаяв качестве донораэлектроновдля пероксидазнойреакции.
Возможно, усиление накопления антоцианов — адаптивная стадия развития растительного организма, включенная в механизм защиты растений от неблагоприятных условий среды и способствующая приобретению неспецифической устойчивости под воздействием стресс-фактора. Почему антоцианины синтезируются взамен бесцветных и более эффективных флавоноидных предшественников — остается не вполне ясным. Возможно, антоциановые пигменты являются более эффективными фотопротективными водорастворимыми соединениями, которые в противоположность другим флавоноидам почти всегда гликозилированы, что, вероятно, и позволяет им
101
Глава 3
быть более эффективными в выполнении своих функций, находясь в вакуолярном резерве.
Так или иначе, антоцианы могут действовать совместно с другими, более эффективными протективными молекулами в растительной клетке, возмещая их дефицит в течение действия ряда стрессовых факторов.
Это, в свою очередь, позволяет рассматривать эндогенный уровень антоцианов в качестве индикатора состояния растений на молекулярно-генетическом, клеточном, организменном и популяционном уровнях и использовать их содержание как тест, диагностирующий воздействие различных поллютантов, нефти, ТМ на состояние растений и растительных сообществ на самых ранних этапах.
Библиографический список
1.Буклет Н. А., Емцев В. Т. Ботаника с основами физиологии растений и микробиологии. М., 1969.
2.Валуйко Г. Г., Датунашвили Е. Н., Огородник С. Т. Методы технохимического и микробиологического контроля в виноделии. М.: Пищевая промышленность, 1980. С. 34—35.
3.Васильев А. Е., Воронин Н. С., Еленовский А. Г. Ботаника: мор-
фология и анатомия растений. М: Просвещение, 1988.
4.Вехов В. Н. Культурные растения СССР. М.: Наука, 1978.
5.Волынец А. А., Прохорчик Р. А. Ароматические оксисоединения — продукты и регуляторы фотосинтеза. Минск: Наука и техни-
ка, 1983.
6.Воскресенская Н. П. Фотосинтез и спектральный состав све-
та. М.: Наука, 1965.
7.Гродзинский Д.М. Биофизика растений. Киев: Изд-во АНУССР,
1972.
8.Гудвин Г., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. М.:
Мир, 1986. Т. 2.
9.Девис М., Остин Дж., Патридж Д. Витамин С: химия и био-
логия / пер. c англ. М.: Мир, 1999.
10.Дубров А. П. Действие ультрафиолетовой радиации на растения. М: Изд-во АНСССР, 1963.
11.Запрометов М. Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993.
102
Антоцианы — природные антиоксиданты растений
12.Коровин Ф. И. Растения и экстремальные температуры. Л: Гидрометеоиздат, 1984.
13.Курсанов Т. А. Развитие представлений о природе иммунитета растений. М.: Наука, 1988.
14.Кабузенко С. Н., Животенко Л. Ф. Влияние засоления и эк-
зогенных фитогармонов на содержание макроэргического фосфора и показателей роста культурных растений // Укр. бот. журнал. 1997. Т. 54,
№4. С. 357—361.
15.Кулаев И. С. Происхождение эукариотических клеток // Соросовский образовательный журнал. 1998. №5. С. 17—22.
16.Масленников П. В. Влияние освещения на накопление анто-
цианинов в листьях Hordeum vulgare, Sinapis alba, Zea mays // Акту-
альные проблемы современной науки: материалы 2-й Международной конференции молодых ученых и студентов. Естественные науки. Самара: Изд-во СамГТУ, 2001. Ч. 5. С. 41.
17.Масленников П. В. Экологические аспекты накопления антоциановых пигментов в растениях: автореф. дис. …канд. биол. наук. Калининград: Изд-во КГУ, 2003.
18.Масленников П. В., Чупахина Г. Н. Влияние света различной интенсивности на биосинтез антоцианов // Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования: материалы IV Международного симпозиума. Пущино, 2001. С. 522—524.
19.Масленников П. В., Чупахина Г. Н. Влияние монохроматиче-
ского света на биосинтез антоцианов // Теоретические и прикладные аспекты экологии и биологии: межвузовский сборник научных трудов. Калининград: Изд-во КГУ, 2001б. С. 48—52.
20.Рузиева Р. Х., Мухин Е. Н., Бородина Ю. С. Антоцианы — эффективные стимуляторы электронного транспорта хлоропластов // V Всесоюзный симпозиум по фенольным соединениям: тез. докл.
Таллин, 1987. С. 128—129.
21.Севдималиев Р. М., Закржевский Д. А., Возняк В. М. Дейст-
вие антоцианов на фотоиндуцированные изменения флуоресценции хлоропластов // Физиология и биохимия культурных растений. 1990.
Т. 22, №4. С. 340—343.
22.Строганов Б. П., Кабанов В. В. Структура и функции клеток растений при засолении. М.: Наука, 1970.
23.Халлоп П., Маргна Л. Эффект экранирования на светоиндуцированное образование флавоноидов в проростках гречихи // Изв.
АНЭССР. Биология. 1971. Т. 20, №4. С. 347—349.
103
Глава 3
24.Ханина Н. П., Леонченко В. Г. Функции флавоноидных соединений. Мичуринск, 1989. Рукопись. Деп. №3315-В89.
25.Шахов А. А. Фотоэнергетика и урожай. М.: Наука, 1993.
26.Чупахина Г. Н., Масленников П. В., Дьяков М. Г. Возможная роль антоцианов в формировании устойчивости кукурузы к неблагоприятным факторам среды // Физиология и биотехнология растений: материалы Всероссийского совещания, посвященного 120-летию ТГУ
и175-летию кафедры физиологии и биотехнологии растений. Томск:
Факел, 1998. С. 77—78.
27.Чупахина Г. Н., Масленников П. В. Биосинтез антоцианинов
ипигментов, участвующих в фотосинтетических процессах у растений при дефиците фосфора // Регуляция роста, развития и продуктивности растений: материалы II Международной научной конфе-
ренции. Минск, 2001. С. 134—135.
28.Ambasht N.K., Agrawal M. Physiological responses of field grown Zea mays L. plants to enhanced UV-B radiation // Biotronics. 1995. Vol. 24. P. 15—23.
29.Arakawa O., Hori Y., Ogata R. Relative effectiveness and interaction of ultraviolet B, red and blue light in anthocyanin synthesis of apple fruit // Physiol. Plant. 1985. Vol. 64. P. 323—327.
30.Beggs C. J., Wellmann E. Analysis of light-controlled anthocyanin formation in coleoptiles of Zea mays L.: the role of UV-B, blue, red and far-red light // Photochem. Pho-tobiol. 1985. Vol. 41. P. 481—486.
31.Brandt K., Giannini A., Lercari B. Photomorphogenic responses to UV radiation III: a comparative study of UVB effects on anthocyanin and flavonoid accumulation in wild-type and aurea mutant of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) // Photochem. Photobiol. 1995. Vol. 62. P. 1081—1087.
32.Brouillard R. The Flavonoids / Advances in research since 1986 / еd. J. B. Harborne. L.: Chapman and Hall, 1993. P. 525—538.
33.Bruce W. B., Folkerts O., Garnaat C. W. et al. Expression profiling of the maize flavonoid pathway genes controlled by estradiol-induc-
ible transcription factors CRC and P // Plant Cell. 2000. Vol. 12, №1.
P.65—79.
34.Burger J., Edwards G. E. Photosynthetic efficiency, and photodamage by UV and visible radiation, in red versus green leaf Coleus varieties // Plant and Cell Physiology. 1996. Vol. 37. P. 395—399.
35.Chalker-Scott L. Environmental Significance of Anthocyanins in Plant Stress Responses // Photochemistry and Photobiology. 1999. Vol. 70. P. 1—9.
104
Антоцианы — природные антиоксиданты растений
36. Creasy L. L. Sequence of development of autumn coloration in Euonymus // Phytochemistry. 1974. Vol. 13, №8. P. 1391—1394.
37. Da Cunha Filho L. A., Nascimento L. S. Inheritance of leaf sheath anthocyanin coloration in rice (Oryza sativa) // Rev. Univ. Rur., Sér. Ciênc. Vida. 2000. Vol. 17, №1. P. 25—30.
38.Day T. A., Howells B. W., Rice W. J. Ultraviolet absorption and epidermal-transmittance spectra in foliage // Physiologia Plantarum. 1994. Vol. 92. P. 207—218.
39.Delgado I. C., Sanchez-Raua A. J. Physiological response of sunflower seedlings to salinity and potassium supply // Commun. Soil. Sci. And Plant Anal. 1999. Vol. 30, №5. P. 773—783.
40.Delucia E. H., Day T. A., Vogelman T. C. Ultraviolet-B and visible light penetration into needles of two species of subalpine conifers during foliar development // Plant, Cell and Environment. 1992. Vol. 15. P. 921—929.
41.De Vetten N., Van Schaik H.-P., Mol J. et al. A cytochrome b 5 is required for full activity of flavonoid 3’,5’-hydroxylase, a cytochrome P450 involved in the formation of blue flower colors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. Vol. 96, №2. P. 778—783.
42.Dhawale N. M., Ahtar M., Sharma V. Hill reaction of chloroplasts from Amaryllis vittata flowers and its enhancement by anthocyanin supplementation // Photosynthetic. — 1983. Vol. 17, №2. P. 264—266.
43.Dougall D. K., Baker D. C., Gakh E. et al. Biosynthesis and Stability of Monoacylated Anthocyanins // Food Technology. 1997. Vol. 51. P. 69—71.
44.Ebert G., Gasierra F., Ludders P. Influence of NaCl salinity on growth and mineral uptake of lulo (S. quitoense L.) // Appl. Bot. 1999. Vol. 73, №1. P. 31—33.
45.Ehlenfeldt M. K, Prior R. L. Oxygen radical absorbance capacity (ORAC) and phenolic and anthocyanin concentrations in fruit and leaf tissues of highbush blueberry // J. Agric Food Chem. 2001. Vol. 49, №5. P. 2222—2227.
46.Esechie H. A., Rodriguez V. Does salinity inhibit alfalfa leaf growth by reducing tissue concentration of essential mineral nutrients // Agron. and Grope Sci. 1999. Vol. 182, №4. P. 273—278.
47.Es’kin B. I. Anthocyanin and plant frost resistance // Bot. Sci. 1960.Vol. 130. P. 58—60.
48.Fambrini M., Pugliesi C., Vernieri P. et al. Characterization of a sunflower (Helianthus annuus L.) mutant, deficient in carotenoid synthesis and abscisicacid content, induced by in-vitro tissue culture // Theor. Appl. Genet. 1993.Vol. 87. P. 65—69.
105
Глава 3
49.Fernandes-Ballester G., Martinez V., Gerda A. Changes in inorganic and organic solutes in citrus growing under saline stress // Plant Nutr. 1998. Vol. 21, №12. P. 2497—2514.
50.Foot J. P., Caporn S. J.M., Lee J. A. et al. The effect of long-term ozone fumigation on the growth, physiology and frost sensitivity of Calluna vulgaris // New Phytol. 1996. Vol. 133. P. 503—511.
51.Garry W. C., Christopher J. Membrane permeability changes: a component of phytochrome-mediated anthocyanin synthesis in Sinapis alba // Phytochemistry. 1981. Vol. 20, №1. P. 9—11.
52.Gitz D. D., Liu L., McClure J. W. Phenolic metabolism, growth, and UV-B tolerance in phenylalanine am-monia-lyase-inhibited red cabbage seedlings // Phytochemistry. 1998. Vol. 49. P. 377—386.
53.Giusti M. M., Rodriguez-Saona L. E., Griffin D. et al. Electrospray and tandem mass spectroscopy as tools for anthocyanin characterization // J. Agric Food Chem. 1999. Vol. 47, №11. P. 4657—4664.
54.Gould K. S., Kuhn D. N., Lee D. W. et al. Why Leaves Are Sometimes Red // Nature. 1995. Vol. 378. P. 241—242.
55.Gould K. S., Markham K. R., Smith R. H. et al. Functional role of anthocyanins in the leaves of Quintinia serrata A. Cunn // Journal of Experimental Botany. 2000. Vol. 51, №347. P. 1107—1115.
56.Graham T. L. Flavonoid and flavonol glycoside metabolism in Arabidopsis // Plant Physiol. Biochem. 1998. Vol. 36. P. 135—144.
57.Hada M., Tsurumi S., Suzuki M. et al. Involvement and non-in- volvement of pyrimidine dimer formation in UV-B effects on Sorghum bicolor Moench seedling // J. Plant Physiol. 1996. Vol. 148. P. 92—99.
58.Hamy A. Effect of phosphorus deficiency on pigments of barley leaves // Compets Rendus des Seances de l Academie d Agriculture de France. 1983. Vol. 69, №12. P. 935—943.
59.Harborne J. B. The Flavonoids // Advances in research since 1986 / еd. R. J. Grayer. L.: Chapman and Hall, 1993. P. 589—618.
60.Howe G. T., Hackett W. P. et al. Photoperiodic responses of a northern and southern ecotype of black cottonwood // Physiol. Plant. 1995. Vol. 93. P. 695—708.
61.Hughes N. M., Vogelmann Th.C., Smith W. K. Optical effects of abaxial anthocyanin on absorption of red wavelengths by understorey species: revisiting the back-scatter hypothesis // J. Exp. Bot. 2008. Vol. 59,
№12. P. 3435—3442.
62.Ishikura N. Light absorption patterns of anthocyanin — containing cells // Plant and Cell Physiol. 1978. Vol. 19, №5. P. 887—893.
63.Jerry W., McClure J. W. Physiology and function of flavonoid // The flavonoid. N.Y.: Chapman and Hall, 1975. P. 970—1055.
106
Антоцианы — природные антиоксиданты растений
64. Johanson U., Gehrke C., Björn L. O. et al. The effects of UV-B radiation on a subarctic heath ecosystem // Ambio. 1995. Vol. 24.
P.106—111.
65.Kakegawa K., Suda J., Sugiyama M. et al. Regulation of anthocyanin biosynthesis in cell suspension of Vitis in relation to cell division // Physiologia Plantarum. 1995. Vol. 94. P. 661—666.
66.Kaku S., Iwaya-Inoue M., Toki K. Anthocyanin influence on water proton NMR relaxation times and water contents in leaves of evergreen woody plants during the winter // Plant Cell Physiol. 1992. Vol. 33. P. 131—137.
67.Karageorgou P., Manetas Y. The importance of being red when young: anthocyanins and the protection of Quercus coccifera from insect herbivory and excess light// Tree Physiology. 2006. Vol. 26. P. 613—621.
68.Kerepesi I., Galiba G., Banyai E. Osmotic and salt stresses induced differential alteration in water-soluble carbohydrate content in wheat seedlings // Agr. And Food Chem. Vol. 98, №12. P. 5347—5354.
69.Knox G. W. Water use and average growth index of five species of container grown woody landscape plants // J. Environ. Hort. 1989. Vol. 7. P. 136—139.
70.Kondo T., Yoshida K., Nakagawa A. et al. Structural basis of blue-color development in flower petals from Commelina communis // Nature. 1992. Vol. 358. P. 515—518.
71.Krizek D. T., Britz S. J., Mirecki R. M. Inhibitory effects of ambient levels of solar UV-A and UV-B radiation on growth of cv. New Red Fire lettuce // Physiol. Plant. 1998. Vol. 103. P. 1—7.
72.Krol M., Gray G. R., Hurry V. M. Low temperature stress and photoperiod affect an increased tolerance to photoinhibition in Pinus bank-siana seedlings // Can. J. Bot. 1995. Vol. 73. P. 1119—1127.
73.Laouenan P., Michon V., Herve du Penhoat C. et al. NMR structural investigations and conformational analysis of condensed tannins. A Continuing challenge due to restricted rotation about the interflavanoid linkage // Analusis. 1997. Vol. 25. P. 29—32.
74. Lee D. W., Brammeier S., Smith A. P. The Selective advantages of anthocyanins in developing leaves of mango and cacao // Biotropica. 1987. Vol. 19. P. 40—49.
75.Leng P., Itamura H., Yamamura H. Freezing tolerance of several Diospyros species and kaki cultivars as related to anthocyanin formation // J. Jpn. Soc. Hort. Sci. 1993. Vol. 61. P. 795—804.
76.Lesnick M. L., Chandler V. L. Activation of the maize anthocyanin gene a 2 is mediated by an element conserved in many anthocyanin promoters // Plant Physiol. 1998. Vol. 117. P. 437—445.
107
Глава 3
77.Liakopoulos G., Nikolopoulos D., Klouvatou A. et al. The photoprotective role of epidermal anthocyanins and surface pubescence in young leaves of grapevine (Vitis vinifera) // Annals of Botany. 2006. Vol. 98. P. 257—265.
78.Li J., Ou-Lee T.-M., Raba R. Arabidopsis flavonoid mutants are hypersensitive to UV-B irradiation // Plant Cell. 1993. Vol. 5. P. 171—179.
79.Lindoo S. J., Caldwell M. M. Ultraviolet-B radiation-induced inhibition of leaf expansion and promotion of anthocyanin production // Plant Physiol. 1978. Vol. 61. P. 278—282.
80.Malien-Aubert C., Dangles O., Amiot M. J. Color stability of commercial anthocyanin-based extracts in relation to the phenolic composition. Protective effects by intraand intermolecular copigmentation // Jan. J Agric Food Chem. 2001. Vol. 49, №1. P. 170—176.
81.Mancinelli A.L. Light-dependent anthocyanin synthesis: a model system for the study of plant photomorphogenesis // Bot. Rev. 1985. Vol. 51, №1. P. 143—154.
82.Markham K. R., Gould K. S., Winefield C. S. et al. Anthocyanic vacuolar inclusions, their nature and significance in flower colouration // Phytochemistry. 2000. Vol. 55, №4. P. 327—336.
83.Markovic J. M., Petranovic N. A., Baranac J. M. A spectrophotometric study of the copigmentation of malvin with caffeic and ferulic acids // J. Agric Food Chem. 2000. Vol. 48, №11. P. 5530—5536.
84.McKown R., Kuroki G., Warren G. Cold responses of Arabidopsis mutants impaired in freezing tolerance // J. Exp. Bot. 1996. Vol. 47. P. 1919—1925.
85.Meiers S., Kemeny M., Weyand U. et al. The anthocyanidins cyanidin and delphinidin are potent inhibitors of the epidermal growthfactor receptor // J. Agric Food Chem. 2001. Vol. 49, №2. P. 958—962.
86.Merzlyak M. N., Chivkunova O. B. Light stress induced pigment changes and evidence for anthocyanin photoprotection in apple fruit // Photochemistry and Photobiology. 2000. Vol. 55. P. 154—162.
87.Monboisse J. Cl. Non-enzymatic degradation of acid-soluble calf-skin collagen by superoxide ion: protective effect of flavonoids // Biochemical Pharmacology. 1983. Vol. 1, №32. P. 53—58.
88.Mueller L. A., Goodman C. D., Silady R. A. AN9, a Petunia glutathione S-transferase required for anthocyanin sequestration, is a flavon- oid-binding protein // Plant Physiol. 2000. Vol. 123. P. 1561—1570.
89.Nakatani N., Kikuzaki H., Hikida J. et al. Acylated anthocyanins from fruits of Sambucus Canadensis // Phytochemistry. 1995. Vol. 38, №3. P. 755—757.
108
Антоцианы — природные антиоксиданты растений
90.Oren-Shamir M., Levi-Nissim A. Temperature effect on the leaf pigmentation of Cotinus coggygria ‘Royal Purple’// J. Hort. Sci. 1997. Vol. 72. P. 425—432.
91.Parker J. Relationships among cold hardiness, watersoluble protein, anthocyanins, and free sugars in Hedera helix L // Plant Physiol. 1962. Vol. 37. P. 809—813.
92.Pliego L., Khadri M., Soussi M. et al. Nitrogen and carbon me-
tabolism in Phaseolus vulgaris root modules under saline conditions: Abstr. 11th congress of the federation of European societies of plant physiology, Yarna, 7—11 sept., 1998 // Plant Physiol. 1998. Spec. Issue. P. 214.
93.Robert L. Action des oligomeres procyanidoliques sur la permeabilite de la paroi vasculaire. Etude par morphologie quantitative // Path Biol. 1990. Vol. 6, №38. P. 608—616.
94.Rohdea A., De Ryckea R., Beeckmana T. ABI3 affects plastid differentiation in dark-grown arabidopsis seedlings // Plant Cell. 2000. Vol. 12. P. 35—52.
95.Saito N., Tatsuzawa F., Nishiyama A. et al. Acylated cyanidin 3-sambubioside-5-glucosides in Matthiola incana // Phytochemistry. 1995. Vol. 38, №4. P. 1027—1032.
96.Schmucker T. Anthocyan im Holz der Rotbuche // Naturwissenschaften. 1947. Vol. 34. P. 91.
97.Selinger D. A., Chandler V. L. A mutation in the pale aleurone color 1 gene identifies a novel regulator of the maize anthocyanin pathway // Plant Cell. 1999. Vol. 11. P. 5—14.
98.Shichijo C., Hamada T., Hiraoka M. et al. Enhancement of red- light-induced anthocyanin synthesis in sorghum first internodes by moderate low temperature given in the pre-irradiation culture period // Planta. 1993. Vol. 191. P. 238—245.
99.Sharma V., Banerji D. Enhancement of Hill activity by anthocyanid under both white incandescent and green irradiation // Photosynthetic. 1981. Vol. 25, №4. P. 540—542.
100.Singh A., Tamil M., Sharma R. Sunlight-induced anthocyanin pigmentation in maize vegetative tissues// Journal of Experimental Botany. 1999. Vol. 50, №339. P. 1619—1625.
101.Stapleton A. E., Walbot V. Flavonoids can protect maize DNA from the induction of ultraviolet radiation damage // Plant Physiology. 1994. Vol. 105. P. 881—889.
102.Steponkus P. L., Lanphear F. O. The relationship of anthocyanin content to cold hardiness of Hedera helix // HortScience. 1969. Vol. 4. P. 55—56.
109
Глава 3
103.Takahashi A., Takeda K., Ohnishi T. Light-induced anthocyanin reduces the extent of damage to DNA in UV-irradiated Centaurea cyanus cells in culture // Plant Cell Physiology. 1991. Vol. 32. P. 541—547.
104.Tignor M. E., Davies F. S., Sherman W. B. et al. Rapid freezing acclimation of Poncirus trifoliata seedlings exposed to 10 degrees C and long days // HortScience. 1997. Vol. 32. P. 854—857.
105.Timberlake C. F. Anthocyanins: occurence, extration and chemistry // Food Chemistry. 1980. №5. P. 69—80.
106.Trull M. C., Guitinan M. J., Lynch J. P. et al. The response of wild type and ABA mutant Arabidiopsis thaliana plants to phosphorus starvation // Plant cell and environment. 1997. Vol. 20, №1. P. 85—92.
107.Wang L., Wessler S. R. Role of mRNA secondary structure in translational repression of the maize transcriptional activator Lc // Plant Physiol. 2001. Vol. 125, №3. P. 1380—1387.
108.Wiebold B. The color purple // Integrated pest and management newsletter. Columbia University of Missouri. 2000. Vol. 10, №4. Art. 3. P. 1.
109.Woodall G. S., Dodd I. C., Stewart G. R. Contrasting leaf development in the genus Syzygium // Journal of Experimental Botany. 1998. Vol. 49, №318. P. 79—87.
110.Woodall G. S., Stewart G. R. Do anthocyanins play a role in UV protection of the red juvenile leaves of Syzygium? // Journal Exp. Bot. 1998. Vol. 49. P. 1447—1450.
111.Yamasaki H. A Function of Colour // Trends in plant Science. 1997. Vol. 2. P. 7—8.
112.Yamasaki H., Sakihama Y., Ikehara N. Flavonoid-peroxidase
reaction as a detoxification mechanism of plant cells against H2O2 // Plant Physiol. 1997. Vol. 115. P. 1405—1412.
113.Yamasaki H., Uefuji H., Sakihama Y. Bleaching of the red anthocyanin induced by superoxide radical //Arch. Biochem. Biophys. 1996. Vol. 332. P. 183—186.
110