Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

книги из ГПНТБ / Современное состояние жидкостной хроматографии

..pdf
Скачиваний:
15
Добавлен:
25.10.2023
Размер:
17.16 Mб
Скачать

230

Глава 8

В большинстве аналитических ионообменных хроматографических систем небольшие количества смеси образца помещаются не­ посредственно в колонку или в поток элюента. Простой и недоро­ гой способ предусматривает временную остановку потока элюента, удаление небольшого его количества из верхней части колонки, ввод образца в верхнюю часть колонки и перемещение его по ко­ лонке самотеком или под давлением воздуха. После этого свобод­ ное пространство в колонке замещается элюентом, и опыт начи­

нается. Однако такой способ требует значительных затрат времени, кроме того, возможны ошибки оператора.

Более эффективным методом является введение образца в элюент, подаваемый на колонку. Образец вводят с помощью шприца через преграду вверху колонки. Такая шприцевая методика прием­ лема для систем низкого давления, но ее нельзя использовать при давлениях, больших 70 атм. В таких случаях образец следует вво­ дить с помощью крана (рис. 8.7). Такой кран обычно конструи­ руется с шестью каналами, каждая пара каналов имеет внутрен­ нее соединение. В исходном положении крана образец можно за­ грузить в петлю; после того как каналы будут переориентированы поворотом ручки крана, петля станет частью линии подачи раство­ рителя. В настоящее время разработаны краны, позволяющие ав­ томатизировать ввод образца при давлениях до 35 атм, не пре­

рывая потока [12],

Ионообменная

хроматография

231

Е. Применение ионообменной хроматографии

Так как ионообменная хроматография развивалась в основном как эмпирический метод, удобнее всего, пожалуй, рассмотреть вы­ бор смолы, системы оборудования, методов работы и т. д. на при­ мере некоторых удачных исследований.

/. Разделение неорганических веществ

Пригодность жидкостной хроматографии как метода была впервые продемонстрирована на примере разделения продуктов

расщепления элементов. Успешные работы Томпкинса

[2], Кетеля

и Бойда [3], занимавшихся разделением редких земель

с помощью

ионообменной хроматографии, заставили обратить внимание ис­ следователей на этот метод.

Анионообменная хроматография используется, в частности, для скоростного анализа фосфатов в детергентах. С помощью этого метода орто- и пирофосфаты и другие их производные могут быть разделены и определены количественно на смоле дауэкс 1-Х8 [13]. Катионообменная хроматография широко используется для разде­ ления щелочных металлов элюированием их водными смесями Н О и этанола [14].

Переходные элементы от марганца до цинка могут быть раз­ делены на смоле дауэкс 1-Х10 превращением ионов металла в их анионные хлоридные комплексы в концентрированных растворах НС1 [15]. В этом случае наблюдается значительное изменение ко­ эффициентов распределения, вызванное изменением свойств элюента (т. е. переход сорбированного вещества из катионной в анионную форму).

В настоящее время ионообменная хроматография высокого дав­ ления используется как промышленный метод разделения транс­ плутониевых элементов, полученных искусственным путем. Для этого разделения используется такая же методика, как и при раз­ делении лантанидов и актинидов. Трехвалентные элементы группы лантанидов и актинидов вводят в виде катионов в слабокислых растворах внутрь катионообменной колонки и последовательно элюируют анионным комплексообразующим реагентом [16].

При разделении элементов с высокой радиоактивностью (на­ пример, америция, кюрия, берклия, калифорния, эйнштейния) воз­ можна радиационная деструкция смол и радиолитическое образо­ вание газа. Обе эти проблемы, существенно нарушающие разре­

шающую

способность хроматографической

колонки,

могут быть

решены

использованием

смол с частицами

маленького размера

(диаметр

10—20 мкм).

На такой смоле разделение

происходит

быстрее и, следовательно, уменьшается экспозиция смолы с радио­

активным

веществом. Благодаря высокому давлению (вплоть до

140 атм)

растворимость газов увеличивается и, таким образом,

232

Глава

8

предупреждается

влияние вредных

эффектов от пузырьков га­

за [17].

 

 

На рис. 8.8 показана типичная хроматограмма, полученная с помощью этой системы. В настоящее время такое разделение ис-

I

1

1

I

I

I

1

I

1

4

12

20

28

36

44

52

60

68

 

 

 

Объем колонии, мл

 

 

 

Р и с . 8.8.

Разделение трансплутониевых

элементов, обогащенных тяжелыми

 

 

 

актинидами

[17].

 

 

 

Колонка: 66

с м Х 0 , 1 7 с м ! ,

неподвижная

фаза: катионообменная

смола д а у э к о

50-XI2,

подвиж­

 

ная ф а з а : водный

раствор а-оксиизомасляной кислоты.

 

 

пользуется в промышленности на одной из стадий получения этих

элементов, и вся процедура занимает

около двух часов.

2. Биохимические

разделения

 

Ионообменная хроматография была впервые применена в био­

химии Кохом и его

сотр. [4], которые

использовали ее для разде­

ления производных нуклеиновых кислот, а также Муром и Штей­ ном [5], разделявшим таким методом аминокислоты.

В настоящее время исследователи пытаются, во-первых, умень­ шить длительность разделения простых биохимических систем [1] и, во-вторых, разработать системы, позволяющие проводить ана­ лизы очень сложных биохимических смесей, в основном физиоло­ гических жидкостей.

Например, длительность хроматографического разделения 18 аминокислот, обычно присутствующих в протеинах, при использо­

вании

дьухколоночной

системы с катионообменной смолой

дау-

экс 50

и градиентного

элюирования с цитратным буфером

была

Ионообменная

хроматография

233

снижена до 22 ч [18]. При применении смол значительно

меньшего

диаметра длительность анализа

уменьшилась до 2 ч.

 

Одновременно разрабатывалась методика анализа аминокислот и других чувствительных к нингидрину соединений в физиологиче­ ских жидкостях. Гамильтон [8] разработал систему высокого раз­ решения для таких жидкостей и получил более 175 хроматографических пиков чувствительных к нингидрину компонентов в од­ ном образце мочи; хроматографирование длилось около двух дней.

Ионообменное разделение основных пуриновых и пиримидиновых оснований, присутствующих в смесях нуклеиновых кислот, было впервые проведено Кохом [4], использовавшим сродство к

катиону этих соединений в растворах кислот. Колонка

заполня­

лась смолой дауэкс 50, а элюентом служила 2 н. соляная

кислота.

Длительность разделения составила 16 ч. Кох также

разделял

методом катионообменной хроматографии соответствующие нуклеозиды. Дальнейшие исследования [20] позволили сократить дли­

тельность анализа обычных рибонуклеозидов до 1 ч.

3. Ионообменная

хроматография высокого давления

Потребность в системах высокого разрешения, в которых ис­

пользовались бы

длинные колонки

с тонкоизмельченной ионооб­

менной смолой, привела к развитию

ионообменной хроматографии

высокого давления. В этом разделе мы рассмотрим две такие си­

стемы, применяемые для анализа физиологических

жидкостей,

чтобы показать, что методом ионообменной хроматографии

можно

проводить разделение очень сложных смесей. На рис.

8.9 показан

анализатор для веществ, поглощающих в ультрафиолетовой

обла­

сти, а на рис.

8.10 анализатор углеводов, содержащихся

в фи­

зиологических

жидкостях. Анализаторы такого типа

разработаны

и тщательно проверены в клинических и исследовательских меди­ цинских лабораториях [7].

Характерные признаки обоих

анализаторов:

 

1) нагреваемые

анионообменные колонки высокого давления

(до 350 атм), заполненные смолой с четвертичными

аммонийными

группами, номинальный диаметр

частиц

10 мкм (Bio-Rad Amenix

А-27);

 

 

 

 

2) градиентное

элюирование

водными

буферными

растворами;

3) для детектирования и количественного определения разде­ ляемых компонентов применяются записывающий фотометр или колориметр.

Измеренный объем образца вводится с помощью шестиходового крана в поток элюента, находящийся под высоким давлением непосредственно перед поступлением его в ионообменную колонку.

Результаты анализа даются в виде хроматограммы,

показываю­

щей изменение поглощения протекающего элюата

во времени.

Каждое детектируемое вещество фиксируется в виде хроматографи-

234

Глава 8

ческого пика. На типичной хроматограмме мочи при 40-часовом хроматографировании с УФ-детектором наблюдается 100—120 пи­ ков (рис. 8.11): максимальное число пиков равно 150. Единичный

Р и с . 8.9. Автоматический хроматограф высокого давления для анализов фи­ зиологических жидкостей, поглощающих в УФ-области.

К о л о н ка

из н е р ж а в е ю щ е й

стали

150X0,62

см

заполнена

аннонообменной

смолой

амилене

А-27, д и а м е т р

частиц

10

мкм,

о с у щ е с т в л я е т с я

градиентная

подача

водного

буферного

рас­

твора

а ц е т а т а .

/ — насос

высокого

давления;

2—манометр;

3 — предохранительный

клапан;

4 — спектрофотометр;

5 камера смешения; 6

— концентрированный б у ф е р - 7 разбавленный

буфер; g записывающий

потенциометр;

9—хроматограмма;

10—отвод

в коллектор

фракций

или

на

слив;

/ / хроматографическая

колонка

высокого

давления; 12 — петля

для

ввода

Образца;

13 — ввод; 14 — вывод; 15 — шестиканальный кран для ввода

о б р а з ц а ;

16—термостат

 

 

 

 

 

 

с принудительной

циркуляцией .

 

 

 

 

образец мочи дает 48 хроматографических пиков, соответствующих содержащимся в моче углеводам (рис. 8.12).

Ж. Заключение

По мере совершенствования технологии производства ионооб­ менных смол воспроизводимость их характеристик, несомненно, улучшится. Разрабатываются новые типы ионообменных смол с различными функциональными группами. Появление поверхностно-

Ионообменная

хроматография

235

пленочных и других новых форм смол, несомненно, стимулирует развитие высокоскоростной жидкостной хроматографии [21]. При­ меры использования ряда таких материалов даны в третьей части книги.

18

Р и с . 8.10. Автоматический хроматограф высокого давления для анализов уг­ леводов в физиологических жидкостях [17].

Колонка

из н е р ж а в е ю щ е й

стали

150X0,62 см

заполнена

анионообменной смолой аминекс

А-27,

диаметр

10 мкм, о с у щ е с т в л я е т с я

градиентная

подача

водного

буферного раствора — бората;

/ — насос

высокого

давления;

2 — м а н о м е т р ;

3 — предохранительный

клапан;

4— камера

сме­

шения; 5 — концентрированный

 

буфер;

6—разбавленный

буфер;

7 — п о д а ч а

5%-ного

фенола;

8 — подача

в о з д у х а

при

атмосферном или пониженном

давлении;

9—хроматограмма;

 

ГО—за­

писывающий потенциометр; / / — подача

серной

кислоты; 12 — реакционная

колонка;

13 — ре­

акционная

камера;

14 — петля

д л я о б р а з ц а ;

15 — ввод;

16 — вывод;

17

— шестиканальный

кран

для ввода

о б р а з ц а ;

18 — слив;

19 — колориметр; 20—хроматографическая

колонка

высокого

 

 

давления; 21 — термостат

с принудительной

циркуляцией.

 

 

 

Анионообменная колонка в сочетании с катионообменной в принципе могут обеспечить разделение чрезвычайно сложных сме­ сей; после начальной стадии ввода образца каждая колонка мо­ жет элюироваться отдельно и одновременно, что позволит сокра­ тить длительность анализа.

Ионообменная хроматография, несомненно, будет применяться для разделения с высоким разрешением сложных смесей, так как

9 10 II 12 13

14 15 16 I? 18

часы 21 22 23

24 25 26

27 28 29

30

31 32 33 34

35 36 37 38

39 40

*;

500

600

700

800

900

1000

1100

1200

1300

1400

1500

мл

0 1 2 3 4 5 6 7

9 10 II

12 13

14 15

16 17 18

часы

21 22 23 24 25 26

27 28 29

30 31

32 33 34

35 36 37 38 39

40

 

400

500

600

700

800

900

1000

1100

1200

1300

1400

1500 М Л

2,0

1|0

0,6

0,4

0,3

0,2

0,1

0 1 :

3

4

5 6

7 8

9 10 11

12 13 14 15 16

17 18

часы

21 22 23

24 25 26

27 28

29 30 31 32

33 34

35 36 37

38 39 40

 

 

100

 

200

300

400

500

600

700

800

900

1000

1100

1200

1300

1400

1500

мл

1 2 3 4

5 6

8

9 10 И 12

13 14

15

16 17 18

часы 21 22

23 24 2 5 26 27 28

29 30 31

32 33

34 35

36 37 38 39 40

100

200

300

400

500

600

700

800

900

1000

1100

1200

1300

 

 

 

 

 

 

 

Объем

элюента,

мл

 

 

 

 

 

Р и с . 8.11.

Типичные

хроматограммы,

полученные

на УФ-анализаторе

(рис.

8.9).

а

0,5

мл мочи, состав

скомпонован из

восьми

отдельных

проб,

поглощение при 260 нм,

поглощение при 280 нм;

6

— 2,0

мл о б е д н е н н о й

сыворотки крови; в 2,0

мл цереброспинальной жидкости; г — различные

соединения, отобранные

 

 

 

из

ряда хроматограмм

(микрограммовые количества).

 

Ионообменная

хроматография

237

0 1

2

3

4 5

6

7

8

9

ч а с ы

12

13

14

15

16

17

18

19

 

20

21

1.0

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,8

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

о 0,6

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

а

0,4

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,2

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

16

 

 

 

 

 

 

0 1

2

3

4

5

6

7

8

Ч 10

Время,

часы

15

17

18

19

20

21

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Л

«2

13

14

 

Р и с . 8.12. Типичные

хроматограммы,

полученные

на

анализаторе

углеводов

 

 

 

 

 

 

 

 

(рис.

8.10).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

а 0,8 мл сыворотки

крови,

поглощение

при 481 нм;

6—8,0

мл

мочи;

в — идентификация

 

С а х а р о в,

концентрация

к а ж д о г о 1 мкмоль/л, поглощение при 481 нм.

 

 

 

со многими такими смесями приходится иметь дело и в биологии,

ив медицине.

Взаключение можно сказать, что ионообменная хроматогра­ фия вообще, и особенно хроматография высокого разрешения, где требуется высокое давление, станет широко распространенным ме­ тодом после того, как появятся недорогие эффективные автомати­ ческие жидкостные хроматографы.

список Р Е К О М Е Н Д У Е М О Й Л И Т Е Р А Т У Р Ы

Основы ионного обмена

Kunin R., Ion Exchanges Resins, 2nd ed., John Wiley, New York, 1958. Hetfferich F., Ion Exchange, McGraw-Hill, New York, 1962.

Marinsky J, A., Ion Exchange: A Series of Advances, Vol. 1, Marcel Dekker, New York, 1966.

238

Глава

$

 

Ионообменная

хроматография

Miles О,

ed. Laboratory Handbook oi Chromatographic Methods, Van Nostrand,

Princeton, N. J , 1961.

 

Samuelson

O, Ion Exchange Separation in Analytical Chemistry, John Wiley, New

York,

1963.

 

Morris C. J. 0. R., Morris P., Separation

Methods in Biochemistry, -Wiley-Inter-

science, New York, 1964.

 

Hefsmann

E., ed., Chromatography, Reinhold New York, 1964.

Giddings J., Calvin J., Keller Roy A., eds, Advances in Chromatography, Vols. 1—6, Marcel Dekker, New York, 1965.

Inczedy ]., Analytical Applications of Ion Exchangers, Pergamon, London, 1966. Dean J. A., Chemical Separation Methods, Van Nostrand, Princeton, N. J , 1969.

СП И С ОК Л И Т Е Р А Т У Р Ы

1.Adams В. A., Holmes E. L . , J. Soc. Chem. Ind, 54T, 1 (1935).

2.

Tompkins E. R., Khyn J. X., Cohn W. E., J. Am. Chem. Soc, 69, 2769 (1947).

3.

Ketelle В. H., Boyd

G. E., J. Am. Chem. Soc, 69, 2800 (1947).

4.

Cohn W. E., Science, 109, 377 (1949).

 

5.

Moore S., Stein W. H., J. Biol. Chem, 192, 663

(1951).

6.

Scott

C. D., Clin. Chem, 14, 521 (1968).

 

(1..Scott

C. D., Jolley

R. L . , Pitt W. W., Johnson

W. F., J. Clin. Pathol, 53, 701

^—• (1970).

 

 

8.

Hamilton P. В., in

«Handbook of Biochemistry: Selected Data for Molecular

 

Biology», The Chemical Rubber Co, Clevelend, 1968, pp. B-43 to B-55.

9.

Freeman D. H., Patel V. C, Smith M. E., J. Polymer Sci, 3, 2893 (1965).

10.Scott C. D., Anal. Biochem, 24, 292 (1968).

11.Scott C. D., Lee N. E., J. Chromatog, 42, 263 (1969).

12. Scott C. D., Johnson W. F., Walker

V. E., Anal.

Biochem, 32, 182

(1969).

13.

Lundgren

D. P., Loeb N. P., Anal. Chem, 33, 366

(1961).

 

14.

Strelow F. W. E., Liebenberg C. J., Anal. Chim.

Acta, 43, 465 (1968).

15.

Kraus K. A., Nelson F., ASTM Spec. Publ. No. 195, 1958, p. 27.

 

16. Campbell

D. O, Buxton S. R., Ind. Eng. Chem. Process Design

Develop, 9,

 

89 (1970).

 

 

 

 

17.

Campbell

D. O, Ind. Eng. Chem. Process Design Develop, 9, 95

(1970).

18.

Moore S.,

Spackman D. H., Stein

W. H., Anal. Chem, 30, 1185

(1958).

19.Price List U: Ion Exchange Resine and Systems, Bio-Rad Laboratories (1969).

20.Uziel M., Koh С. K., Cohn W. £., Anal. Biochem, 25, 77 (1968).

21.Horvath C. G , Preiss B. A., Lipsky S. R., Anal. Chem, 39, 1422 (1967).

Глава 9

ЖИДКОСТНАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ

И.Халаш

А. Введение

 

В классической жидкостной хроматографии, хорошо

известной

и широко применяемой с начала этого века, линейная

скорость

элюента составляет 0,001—0,01 см/с. В высокоскоростной

хромато­

графии, или хроматографии высокого давления, развивающейся в

последние несколько лет, используется линейная

скорость порядка

1 см/с, т. е. такого же порядка, как и в газовой

хроматографии (в

стандартно упакованных колонках). Большинство исследователей, занимавшихся разработкой методик высокоскоростной жидкостной хроматографии, были крупными специалистами в области газовой хроматографии, и поэтому они пытались применить свои теорети­ ческие знания и искусство экспериментаторов в этой новой об­ ласти.

Хотя основные положения теории газовой и жидкостной хрома­ тографии совпадают, следует помнить, что: 1) коэффициенты диф­

фузии жидкостей

по крайней

мере в 104 раз меньше,

чем

у газов,

2) вязкость элюента для жидкостей примерно

в 100

раз

больше,

чем для

газов, и 3) взаимодействия между молекулами неподвиж­

ной фазы и элюента в газовой хроматографии

не учитываются, в

то время

как в

жидкостной

хроматографии

ими

пренебрегать

нельзя. Однако теоретическая трактовка жидкостной хроматогра­ фии проще, так как подвижная фаза не сжимаема. К сожалению, многие хроматографисты плохо знают теорию. Чтобы решить ка­ кую-то определенную проблему, не всегда обязательно знать меха­ низм разделения, однако не следует забывать,- что понимание механизма позволит разработать лучший тип колонки. Поэтому знание простых основ теории длястандартной работы крайне не­ обходимо, так как это обеспечит правильный выбор начальных условий, определяющих оптимальное разделение без чрезмерных затрат времени на экспериментальную работу.

Б. Некоторые экспериментальные факторы,

влияющие на разделение

/. Коэффициент взаимной диффузии

Малые коэффициенты взаимной диффузии приводят к медлен­ ным скоростям массопереноса в подвижной фазе. Поэтому, как следует из уравнения Тейлора [1], Ариса [2] или Голая [3], жидкост-

Соседние файлы в папке книги из ГПНТБ