- •Часть 1. История и общая микробиология.
- •Эндогенные:
- •31) Индикация и идентификация вирусов при различных методах культивирования.
- •§ 96 % Спирт (30 мин.).
- •Часть 2. Инфекция и иммунитет.
- •2. Клеточные факторы врожденного иммунитета. Фагоцитоз.
- •3. Иммунная система организма. Основные клетки иммунной системы и их характеристика.
- •4. Гуморальные факторы врождённого иммунитета.
- •Часть 3. Частная микробиология.
- •Микробиологическая диагностика менингококковой инфекции
- •Бактериологический метод
- •1 Этап – вчк.
- •Морфологические и тинкториальные свойств
- •Культуральные свойства
- •Биохимические свойства
- •Антигенная структура
- •Фагочувствительность
- •Резистентность холерного вибриона
- •Эпидемиология
- •Факторы патогенности холерного вибриона
- •Патогенез холеры
- •Клиническая картина холеры
- •Диагностика
- •Иммунитет
- •Лечение холеры
- •Профилактика холеры
- •Пищевые отравления.
- •Пищевые отравления микробной этиологии
- •Лабораторная диагностика пищевых токсикоинфекций (пти).
- •Профилактика отравлений микробной природы Профилактика токсикоинфекций включает:
- •Профилактика стафилококковых токсикозов:
- •Общая вирусология
- •1. Таксономия, классификация
- •2. Морфология, размеры, особенности генома
- •3. Этапы репродукции
- •4. Эпидемиология
- •5. Патогенез и клинические проявления;
- •6. Лабораторная диагностика, характер исследуемого материала;
- •7. Особенности вирусологического метода диагностики (культивирование, индикация, идентификация вируса);
- •8. Противовирусный иммунитет;
- •9. Специфическая профилактика;
- •10. Лечение
- •5. Терминальная стадия.
- •1. Прямые методы диагностики.
- •2. Косвенные методы диагностики.
- •1. Этиотропное лечение
- •1. Вирусологический (культуральный) метод
- •2. Молекулярно-генетические методы
- •4. Методы детекции антител
- •1. Этиотропное лечение
- •2. Патогенетическая терапия
- •3. Симптоматическая терапия часть 4. Санитарная микробиология.
- •Методы косвенной индикации возможного присутствия возбудителя во внешней среде.
- •Часть 5. Микробиология инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (исмп).
- •Лабораторная диагностика гнойно-воспалительных заболеваний (гвз)
- •Микробиологическое исследование крови
- •Этиологическая структура бактериемий
- •Микробиологическое исследование мочи
- •Полуколичественный метод определения степени бактериурии
- •Внутрибольничная пневмония
- •Послеоперационные инфекции
- •Раневые инфекции
1. Вирусологический (культуральный) метод
Культура клеток: культуры клеток почки африканской зеленой мартышки линии Vero и мышиных фибробластов (LLC-MK2).
Вирусы SARS-CoV и MERS-CoV обладают выраженным цитопатическим действием на клетки-мишени. Характерной чертой этого действия становится образование везикул, окруженных двойной мембраной. Такие везикулы являются аутофагосомами, которые не сливаются с лизосомами. Инфицирование многими коронавирусами может индуцировать образование синцития, обусловленного физиологической активностью вирусного шипикового белка при нейтральном рН.
SARS-CoV индуцирует некроптоз.
NB! Некроптоз - запрограммированная форма некроза, так как видны морфологические признаки, сходные с некрозом (набухание клеток с последующим разрывом плазматической мембраны), но при этом некроптоз имеет четкую систему регуляции.
Выраженным цитопатическим эффектом обладает белок Е вируса SARS-CoV, который формирует ионный канал в мембране комплекса Гольджи, что приводит к ионному дисбалансу в клетке и активации NLRP3-инфламмасомы.
2. Молекулярно-генетические методы
а) Полимеразная цепная реакция
б) Петлевая изотермическая амплификация РНК
В отличие от метода полиразмерной цепной реакции, амплификация РНК происходит при постоянной температуре реакционной смеси, а также с использованием более производительных ферментов. За счет этого время исследования сократилось с 90 минут при классической ПЦР-диагностике до 15-20 минут.
Метод основан на образовании шпилечных структур ДНК в ходе начала реакции, которые служат началом для последующих этапов амплификации. При этом происходит выпетливание определенных участков ДНК, к которым по правилу комплементарности подобраны олигонуклеотиды – две пары обязательных (F3 и B3, FIP и BIP) и пара дополнительных, увеличивающих скорость реакции («петлевые» олигонуклеотиды LF и LB). Реакцию можно разделить на три этапа: (i) начало амплификации, при котором происходит посадка олигонуклеотидов FIP и BIP и наработка гантелевидных ДНК-структур с двумя петлями; (ii) циклическая амплификация — наработка ДНК-продуктов с гантелевидной структурой; (iii) элонгация — наработка ДНК-продуктов различной длины и с множеством петель. За наработку ампликонов отвечает термостабильная Bst-полимераза, которая увеличивает количество участков ДНК до обнаруживаемого количества копий. Bst-полимераза обладает 5´ → 3´ полимеразной активностью, однако лишена 5´ → 3´ экзонуклеазной активностью. Кроме того, Bst-полимераза обладает способностью замещать ранее синтезированную нить ДНК, что позволяет использовать её в методе LAMP. Реакция проходит при температуре от 60 до 65 °C в течение 15–60 минут.
в) ПЦР «в реальном времени» («real-time PCR»)
При использовании такого метода можно прямо в ходе реакции наблюдать за накоплением продуктов ПЦР (по флуоресценции). Соответственно, для проведения ПЦР «в реальном времени» нужен специальный прибор, способный возбуждать и считывать флуоресценцию в каждой пробирке. Поскольку число копий в ходе ПЦР растет экспоненциально, так же растет и флуоресценция. Однако это продолжается недолго, поскольку в какой-то момент эффективность реакции начинает падать из-за постепенной инактивации полимеразы, нехватки каких-то компонентов и т.п.
В состав реакционной смеси, наряду с праймерами и другими компонентами реакции, добавлены специальные флуоресцентные метки (зонды). Флуоресцентный зонд выполнен по той же технологии, что и праймер и отличается от него тем, что на одном его конце прикреплена флуоресцентная молекула (флуорофор), а на другом конце расположена специальная молекула-гаситель флуоресценции. За счёт близости гасителя, энергия поглощаемая флуорофором не вызывает флуоресцентного свечения, а целиком передаётся гасителю. При этом, при облучении смеси ультрафиолетом, флуоресцентный отклик полностью отсутствует. В ходе ПЦР при повышении температуры происходит денатурация ДНК с распадом на две половинки. Зонд вместе с праймерами присоединяется к комплементарному участку ДНК. В процессе восстановления и синтеза новой цепи ДНК, фермент ДНК-полимеразы расщепляет этот зонд и разрушает его. При этом флуорофор и гаситель освобождаются, расстояние между ними увеличивается и эффект гашения перестаёт работать. Теперь при облучении смеси ультрафиолетом, мы получим устойчивый флуоресцентный сигнал-отклик от флуорофора.
3. Методы детекции антигена - иммунохроматографические тесты
Тест на антиген является быстрой альтернативой ПЦР, не требующий лабораторного оборудования и специальных условий проведения.
Тест-система создана на основе анализа отделяемого из носоглотки в иммунохроматографическом анализе.
После внесения образца на подушку антигены образца взаимодействуют с антителами, конъюгированными с коллоидным золотом, нанесенными на подушку конъюгата. В результате образуется окрашенный комплекс антиген-антитело. Образовавшийся окрашенный иммунный комплекс движется под действием капиллярных сил вдоль нитроцеллюлозной мембраны и взаимодействует с иммобилизованными на Тестовой линии антителами. В результате появляется одна окрашенная розово-красная полоска. Не связавшиеся на тестируемой полосе антитела мигрируют далее вдоль нитроцеллюлозной мембраны и неизбежно взаимодействуют с иммобилизованными на Контрольной линии антигенами. В результате появляется вторая окрашенная полоска. Если анализ проведен правильно, Контрольная линия должна проявляться всегда, независимо от присутствия исследуемого антигена в образце биологической жидкости.