Санитарно-экологические нормативы качества и исследования воды

централизованного водоснабжения (по СанПиН 2.1.4.1074–01)

В соответствии с санитарными правилами и нормативами «Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованной системы питьевого водоснабжения» питьевая вода должна быть безопасна в эпидемиологическом отношении, что определяется соответствующими нормативами (Приложение, табл. 1):

1) Общее число микроорганизмов (ОМЧ) (КОЕ/мл).

2. Общие колиформные бактерии (ОКБ) (КОЕ/100,0 мл).

3. Термотолерантные колиформные бактерии (ТКБ) (КОЕ/100,0 мл).

4. Споры сульфитредуцирующих клостридий (КОЕ/20,0 мл).

5. Колифаги (БОЕ/100,0 мл).

Мониторинг микробиологических показателей питьевой воды должен проводиться для поверхностных источников ежемесячно (12 раз в год), в то время как для подземных источников 4 раза в год по сезонам.

При обнаружении в пробе питьевой воды термотолерантных колиформных бактерий, общих клиформных бактерий или колифагов проводится их определение в повторно взятых пробах.

При обнаружении в повторно взятых пробах воды общих колиформных бактерий в количестве 2 в 100,0 мл и колифагов проводится исследование проб воды для определения патогенных бактерий кишечной группы и энтеровирусов.

4 МикробиологическИе исследованиЯ воздуха и объектов окружающей среды

Воздух является средой, в которой микроорганизмы не способны размножаться, что обусловлено отсутствием в воздухе питательных веществ, недостатком влаги, губительным действием солнечных лучей. Жизнеспособность микроорганизмов в воздухе обеспечивается нахождением их в частицах воды, слизи, пыли, кусочках почвы.

Микрофлору воздуха условно разделяют на постоянную, или резидентную (автохтонную), и транзиторную, или временную (аллохтонную).

К представителям резидентной (автохтонной) микрофлоры, которая в основном формируется за счет микроорганизмов почвы, относятся пигментообразующие кокки (М. roseus, М. flavus‚ S. flava, S. alba), спорообразующие бациллы (В. subtilis, В. micoides, B. mesentericus), актиномиценты (Actinomyces spp.), грибы (Penicillium spp., Aspergillus). дрожжеподобные грибы рода Candida.

Транзиторная (аллохтонная) микрофлора воздуха формируется преимущественно за счет микроорганизмов почвы, а также за счет видов, поступающих с поверхности водоемов и из организма людей и животных. При этом каждый человек или животное при обычном дыхании, разговоре, кашле, выделяют так называемый аэрозоль, который представляет собой коллоидную систему, состоящую из воздуха, капелек жидкости или частиц твердого вещества, включающих большое количество микроорганизмов.

Воздух не является благоприятной средой для развития аллохтонных микроорганизмов, они могут сохранять в воздухе жизнеспо­собность лишь временно (одни виды более, другие менее продолжительно). Многие виды отмирают сравнительно быстро под влиянием высушивания и солнечной радиации.

Возможно также попадание микробов в воздух со слущивающимся эпидермисом кожных покровов, с пылью загрязненного постельного белья и зараженной почвы.

Контаминация воздуха закрытых помещений патогенными микроорганизмами происходит в основном воздушно-капельным путем — при разговоре, кашле, чихании от больных людей или носителей возбудителей инфекционных болезней, поражающих верхние дыхательные пути.

Микрофлора воздуха меняется в зависимости от климата, времени года, экологического состояния местности (наличие промышленных предприятий, уровня развития промышленного и сельскохозяйственного производства, транспортной инфраструктуры и т.д.). Большое значение для очистки воздуха имеют зеленые насаждения.

В составе микрофло­ры воздуха преобладают различные виды кокков, споры бацилл, грибов, дрожжи. Могут встречаться патогенные и токсигенные микроорганизмы (стафилококки, стрептококки, туберкулезные палочки и т.д.).

Их количество в воз­духе рабочих и жилых помещений зависит от экологического состояния. Скопление людей, плохая вентиляция, недостаточная уборка способствуют увеличе­нию количества микроорганизмов в воздухе.

Экологическая оценка воздуха помещений осуществляется по двум показателям: общему количеству микроорганизмов и количеству санитарно-показательных микроорганизмов в 1 м³ воздуха.

Санитарно-показательными микроорганизма­ми служат гемолитические стрептококки и стафилококки. Они являются постоянны­ми обитателями верхних дыхательных путей, слизистой носа и ротовой полости че­ловека. Ориентировочно воздух производственных помещений должен содержать от 100 до 500 бактерий в 1 м³. В жилых помещениях — до 1500 шт., и гемолитических стрептококков — до 16 шт. в 1 м³. Загрязненным воздух жилых помещений считается при наличии (в 1 м³) 2500 всех бактерий и 38 стрептококков. Воздух холодиль­ных камер исследуется также на загрязненность плесенями.

При оценке экологического состояния воздуха закрытых помещений в зависимости от задач исследования определяется:

— общее микробное число (ОМЧ) (КОЕ/м³);

— количество золотистого стафилококка (Staphylococcus aureus) (КОЕ/м³);

— количество плесневых и дрожжевых грибов (КОЕ/дм³).

Бактериологический контроль комплекса санитарно-экологических мероприятий в ЛПУ (по СанПиН 2.1.3.1375–03)

Бактериологические лаборатории санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций проводят контроль не реже двух раз в год, бактериологические лаборатории лечебных учреждений контролируют санитарно-гигиенический режим (обсемененность различных объектов и воздуха) один раз в месяц, а контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, операционного белья, рук хирурга и кожи операционного поля — 1 раз в неделю.

Объектами исследования при проведении бактериологического контроля являются:

— воздушная среда;

— различные объекты внешней среды;

— хирургический инструментарий, перевязочный материал, белье;

— шприцы, иглы;

— зонды, катетеры, бужи, резиновые перчатки и др. изделия из резины и пластикатов;

— хирургический шовный материал, подготовленный к использованию;

— руки хирургов и кожа операционного поля.

Бактериологическое исследование воздушной среды предусматривает:

— определение общего содержания микробов в 1,0 м³ воздуха;

— определение содержания золотистого стафилококка в 1,0 м³ воздуха;

— определение содержания плесневых и дрожжевых грибов в дм³ воздуха.

Отбор проб воздуха для бактериологического исследования проводят в следующих помещениях: операционных блоках, перевязочных, послеоперационных палатах, отделениях и палатах реанимации и интенсивной терапии и др. помещениях, требующих асептических условий.

Методы забора проб материала

Санитарно-микробиологическое исследование воздуха включает 4 этапа:

— отбор проб воздуха;

— обработку, транспортировку и хранение проб;

— выделение микроорганизмов из изучаемой пробы;

— идентификацию выделенных культур микроорганизмов;

— один из наиболее ответственных моментов, поскольку лежит в основе всего проводимого в дальнейшем исследовании.

Атмосферный воздух исследуют в жилой зоне на уровне 0,5–2,0 м от земли вблизи источников загрязнения, а также в зеленых зонах (парки, сады) — для оценки их влияния на микрофлору воздуха.

В закрытых помещениях отбор проб проводят в 5-ти различных местах обследуемого помещения (по типу «конверта»): 4 точки отбора по углам помещения (на расстоянии 0,5 м от стен), а 5-я точка отбора — в центре помещения. Пробы воздуха забирают на высоте 1,6–1,8 м от пола — на уровне дыхания в жилых помещениях и на уровне коек — в условиях больничных палат. Пробы воздуха необходимо отбирать днем в период активной деятельности человека, после влажной уборки и проветривания помещения.

При отборе проб воздуха для выделения микроорганизмов используются седиментационный и аспирационный методы.

Аспирационный метод связан с осаждением микробных частиц из воздуха на какую-либо поверхность.

Микробную обсемененность воздуха (ОМЧ) определяют по правилу (формуле)В. Л. Омелянского: на 100,0 см² поверхности питательной среды за 5 минут оседает столько микроорганизмов, сколько их содержится в 10,0 л воздуха (10,0 дм³).

После соответствующего пересчета ОМЧ выражают в КОЕ бактерий на определенный объем исследуемого воздуха, поскольку считают, что каждая колония — потомство жизнеспособного микроорганизма.

Седиментационный метод основан на происходящем под действием силы тяжести осаждении микроорганизмов на поверхность соответствующей плотной питательной среды.

Чашку с питательной средой (открытую) ставят на горизонтальную поверхность на высоте рабочего стола и оставляют на определенное время.

Затем чашку закрывают и инкубируют 18–24 часа, после чего подсчитывают количество выросших колоний.

Аспирационный метод основан на принудительном осаждении микроорганизмов на поверхность соответствующей плотной питательной среды.

При осуществлении этого метода возможно использование:

1. Пробоотборника бактериологического аэрозоля, принцип действия которого основан на электризации частиц исследуемого воздуха и последующем осаждении их на электроде противоположного знака.

2. Аппарата Кротова, принцип действия которого основан на чисто механической аспирации воздуха через щель в крышке прибора. расположенной над вращающейся поверхностью питательной среды в чашке Петри, вследствие чего происходит инерционное осаждение бактерий из воздуха на поверхность питательной среды.

Экологическое исследование микробной обсемененности объектов окружающей среды

Эколого-бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов внешней среды предусматривает выявление стафилококка, синегнойной палочки, бактерий группы кишечных палочек и аэромонад (строго по показаниям). Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов.

Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками, размером 5×5 см, простерилизованными в бумажных пакетах или в чашках Петри. Для увлажнения тампонов в пробирки с тампонами наливают по 2,0 мл стерильного физиологического раствора. Салфетку захватывают стерильным пинцетом, увлажняют физиологическим раствором из пробирки, после протирки исследуемый объект помещают в ту же пробирку.

При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят в нескольких местах исследуемого предмета площадью примерно в 100,0–200,0 см².

Наиболее пристальное внимание при контроле микробной обсемененности объектов окружающей среды необходимо обращать на места, труднодоступные для мытья и дезинфекции.

Контроль за стерильностью инструментов (шприцы, иглы, системы переливания крови многократного использования, зонды, бужи и другие изделия из резины), перевязочного материала, операционного белья, рук хирургов и кожи операционного поля проводят не реже 1 раза в неделю.

Для контроля стерильности используют следующие среды: сахарный бульон Хоттингера (0,5 %-ный и 1 %-ный растворы глюкозы), тиогликолевую среду, бульон Сабуро.

Одновременный посев изделий на 3 вышеуказанные среды обязателен. При посеве изделия или его части непосредственно в питательную среду количество среды в пробирке (колбе, флаконе) должно быть достаточным для полного погружения изделия или его части.

Посевы в бульон Хоттингера тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 37 °С, среду Сабуро при температуре 20–22 °С.

Посевы инкубируют в термостате в течение 14 суток.

При контроле микробной обсемененности объектов окружающей среды исследованию на стерильность подлежат:

— инъекционные лекарственные формы;

— лекарственные формы для обработки слизистых оболочек и кожи новорожденных;

— растворы для питья;

— шовный и перевязочный материал;

— хирургические перчатки;

— материи для первичной и повторной обработки новорожденных;

— материал для новорожденных в стерильных коробках (биксах);

— материал для операционной;

— индивидуальные комплекты для приема родов;

— зонды, катетеры и другие изделия медицинского назначения.