Методические указания к практической работе

Продолжительность занятия: 3 академических часа (135 минут)

Место проведения занятия: учебная аудитория

Материально-техническое оснащение – таблицы, стенды, микроскопы, микропрепараты

Хронометраж практического занятия:

1. Вводное слово преподавателя – 5 мин

2. Проверка исходного уровня знаний (тест-контроль) – 15 мин

3. Разбор теоретических вопросов по теме – 80 мин

1. Классификация актиномицетов

2. Классификация грибов

3. Морфология строение лучистых грибов

4. Морфология и строение нитчатых грибов

5. Морфология дрожжевых и дрожжеподобных грибов

6. Использование грибов в народном хозяйстве

7. Роль грибов в патологии человека

8. Химический состав бактерий

9. Типы питательных сред

10. Требования, предъявляемые к питательным средам, для выращивания микробов

11. Виды питательных сред применяемых в бактериологической практике

12. Агар и цель его применения

13. Универсальные питательные среды

14. Сложные среды

15. Назначение элективных питательных сред

16. Назначение дифференциально-диагностических сред

17. Принцип конструирования дифференциальных сред (Эндо, Левина, Плоскирева)

18. Оптимальная температура для выращивания патогенных микробов

4. Выполнение практической работы – 35 мин

Практическая работа

1. Изучить мазок Actinomyces, окраска по Граму (зарисовать)

2. Изучение фиксированных мазков чистой культуры Candida. Окраска по Граму (зарисовать)

3. Изучение и зарисовка демонстрационных препаратов грибов Mucor, Aspergillus, Penicillium

4. Знакомство с питательными средами (основных компонентов и полуфабрикатов)

5. Изучение роста микробов на элективных и дифференциально-диагностических средах

6. Изучение методики посева петлей и шпателем исследуемого материала на пластинчатый агар

7. Просмотр видеофильма: «Кокцидиоидоз». Оформление протокола согласно методическим указаниям к видеоматериалам

8. Рейтинговая контрольная работа по «Морфологии микроорганизмов»

5. Подведение итогов занятия – 5 минут

ЗАНЯТИЕ 7

ТЕМА. Методы выделения чистых культур аэробных бактерий. Этапы выделения чистой культуры методом механического разобщения. Исследование колоний

Цель занятия. Ознакомить студентов с различными методами выделения чистых культур, научить посевам петлей, штрихами, уколом

Методические указания к практической работе

Продолжительность занятия: 3 академических часа (135 минут)

Место проведения занятия: учебная аудитория

Материально-техническое оснащение – таблицы, стенды, микроскопы, микропрепараты

Хронометраж практического занятия:

1. Вводное слово преподавателя – 5 мин

2. Проверка исходного уровня знаний (тест-контроль) – 15 мин

3. Разбор теоретических вопросов по теме – 80 мин

1. Методы выделения чистых культур аэробных бактерий (Пастера, Коха, Дригальского, Щукевича)

2. Дифференциально-диагностические и элективные среды, для выделения споровых, кислотоустойчивых микробов

3. Цель получения чистых культуры

4. Биологический метод выделения чистой культуры

5. Этапы выделения чистой культуры аэробов

6. Изменения, происходящие в жидких питательных средах при росте бактерий

7. Признаки колоний

8. Формы колоний

9. Консистенция колоний у капсульных бактерий

10. Правила при пересеве культуры

11. Методы микробиологической диагностики инфекционных болезней

12. Рост изолированных колоний

13. Загрязнение питательных сред бактериями их воздуха

14. Края колоний бактерий

15. Прозрачность колонии

16. Рост и размножение микробных клеток на плотных и жидких питательных средах

17. Кривая роста культуры микроорганизмов в жидкой питательной среде

18. Поступление питательных веществ в бактериальную клетку

19. Классификация бактерии по источнику углерода

20. Классификация бактерии от источника получения энергии

21. Классификация бактерии по источникам азота

22. Классификация бактерии в зависимости от природы электронов

23. Катаболизм (понятие)

24. Анаболизм (понятие)

4. Выполнение практической работы – 35 мин

Практическая работа