
- •Общие вопросы
- •Цитофлавин при тотальной внутривенной анестезии
- •Ларингеальный масочный воздуховод является эффективным (и возможно безопасным) у отобранных здоровых беременных при плановом кесаревом сечении: проспективное исследование 1067 случаев
- •Результаты
- •Обсуждение
- •Влияние дроперидола на интервал qt
- •Предупреждение «в черной рамке»
- •Дроперидол
- •Удлиненный интервал qt, TdP и lqts
- •Влияние дроперидола на интервал qt
- •Практические рекомендации по использованию bis-монитора во время анестезии
- •Общий вид монитора.
- •Собственный опыт использования монитора глубины наркоза а – 2000x (Aspect Medical Systems, сша).
- •Причины, вызвавшие необходимость создания нового Организующего Приказа по анестезиолого-реанимационной службе рф.
- •Необходимые требования к новому Приказу.
- •2. Определение рамок компетенции (права и обязанности).
- •3. Организационно-штатная структура.
- •5. Желательные требования.
- •Материалы и методы Экспериментальная модель
- •Клинические исследования
- •Статистический анализ.
- •Результаты Жёсткая модель трахеи
- •Изучение трахеи свиньи
- •Исследование пациентов под наркозом
- •Критические пациенты с трахеостомическими трубками
- •Обсуждение
- •Приложение
- •Интубационная трубка lvlp
- •Материал и методы
- •Результаты
- •Обсуждение
- •Многокамерная фармакокинетическая модель как средство оптимизации режимов введения препаратов для внутривенной анестезии
- •Многокамерная фармакокинетическая модель как средство оптимизации режимов введения препаратов для внутривенной анестезии Введение
- •Объяснение контекстно-зависимого периода полувыведения
- •Анализ динамики концентрации фентанила при введении его согласно традиционным схемам
- •Цель проводимой работы
- •Разработка метода дозированного введения фентанила
- •Методика анестезии
- •Заключение
- •Профилактика гипотонии во время индукции анестезии диприваном у тяжелообожженных
- •Тотальная внутривенная анестезия на основе дипривана при многократных травматичных перевязках у больных с термическими поражениями
- •Терминология
- •Механизм интерплевральной аналгезии
- •Методика выполнения интерплевральной блокады
- •Клиническое применение интерплевральной аналгезии
- •Осложнения
- •Противопоказания
- •Заключение
- •Эффект обезболивания на выраженность операционного стресса
- •Психологическая подготовка
- •Фармакологическая подготовка
- •Седативные препараты, гипнотики и "большие" транквилизаторы
- •Опиоиды - наркотические аналгетики
- •Антихолинергические средства
- •Средства, влияющие на моторику желудка
- •Премедикация в амбулаторных условиях
- •Связывание с белками плазмы крови препаратов, наиболее часто применяемых в анестезиологии
- •Связывание с белками плазмы крови препаратов, наиболее часто применяемых в анестезиологии
- •Нормальная терморегуляция.
- •Влияние анестезии на нормальную терморегуляцию.
- •Тепловой балланс в операционной.
- •Физиологические и патофизиологические следствия гипотермии.
- •Больные повышенной группы риска по возникновению интраоперационной гипотермии.
- •Профилактика интраоперационной гипотермии.
- •Резюме.
- •Врожденные пороки сердца у взрослых: аспекты анестезии и интенсивной терапии послеоперационного периода
- •Альфа- 2 адреномиметики и анестезия
- •Факторы риска лёгочной аспирации, связанной с наркозом
- •Новые правила предоперационной подготовки натощак
- •Спорные вопросы темы будущих исследований
- •Введение
- •Гамк и глютамат как факторы раннего развития
- •Роль гамк и глютамата в нейронной дифференцировке и в формировании связей
- •Влияние анестетиков на развитие цнс
- •Кетамин
- •Пропофол
- •Мидазолам
- •Комбинированное использование анестетиков
- •Экстраполирование лабораторных результатов в клиническую практику
- •Самоконтроль
- •Ключевые моменты
- •Введение
- •Дыхательная система
- •Дыхательные пути
- •Вентиляция
- •Сердечно-сосудистая система
- •Жкт, эндокринная и другие системы
- •Лекарственные препараты и ожирение
- •Местное обезболивание
- •Хирургические и механические моменты
- •Ответы на вопросы самоконтроля
- •1. Введение
- •2. Материал и методы
- •2.1. Обследованные пациенты
- •2.2. Инструменты
- •2.2.1. Визуальная аналоговая шкала (ваш)
- •2.2.2. Шкала преодоления стресса Jalowiec (шпс)
- •2.3. Процедура
- •2.4. Анализ данных
- •3. Результаты
- •4. Обсуждение
- •История вопроса
- •Анализ опубликованных сообщений
- •Физиологический анализ
- •Клинические последствия и улучшение ведения больных
- •Информация в аннотации к препарату
- •Внутривенная анальгезия, контролируемая пациентом (вв акп)
- •Эпидуральная анальгезия, контролируемая пациентом (эакп)
- •Регионарная анестезия, контролируемая пациентом (ракп)
- •Интраназальная анальгезия, контролируемая пациентом (инакп)
- •Ионтофоретические трансдермальные системы для фентанила (итс)
- •Другие варианты акп
- •Заключение
- •Введение
- •Активность головного мозга во время анестезии, измеренная с помощью функционального нейроизображения
- •Изменения церебрального кровотока , церебрального метаболизма и оксигенации крови уровень-зависимым контрастом
- •Изменения функциональной комплексности во время анестезии
- •Активность мозга во время анестезии, оцененная электрофизиологическими методами
- •Активность мозга во время анестезии, оцененная по поведенческим тестам
- •Введение
- •Результаты
- •Заключение
- •Мониторинг температуры
- •Нормальная терморегуляция
- •Общепринятая модель терморегуляции
- •Номенклатура полиморфизмов
- •Фармакология и полиморфизм
- •Клинически значимые полиморфизмы
- •Заключение
- •Введение
- •Физиологические основы снабжения кислородом
- •Каковы способы оптимизации снабжения кислородом?
- •Конфликт интересов
Влияние анестетиков на развитие цнс
На основе растущего понимания важной роли нейромедиаторных систем в развитии ЦНС, таким образом, не удивительно, что за последние несколько лет отмечен бурный рост публикаций о неблагоприятных эффектах анестетиков на незрелый головной мозг. В следующем разделе, мы проведем обзор существующих лабораторных данных, обращая внимание на препараты, которые, как было четко показано, влияют на некоторые стороны развития ЦНС in vitro или in vivo .
Кетамин
Кетамин - неконкурентный антагонист фенилциклидинового ( PCP ) рецептора NMDA рецепторного комплекса. Кетамин посредством предотвращения токсического действия эндогенных возбуждающих аминокислот, например, глютамата и аспартата, может оказывать нейропротективную роль при индуцированной ишемии и повреждении головного мозга с судорожным синдромом [50-52]. Первые указания на то, что помимо возможных положительных эффектов кетамин может вызывать патологические изменения в ЦНС, появились на основе наблюдений, когда подкожное введение PCP взрослым крысам вызывало цитопатологические изменения (вакуолизация цитоплазмы нейронов) в цереброкортикальных нейронах [53]. Эти эффекты определялись в течение 2 часов после применения препарата, а морфология нейронов восстанавливалась до нормального состояния, если применялась только однократная доза PCP . В этом же самом исследовании кетамин симулировал эффект PCP при подкожном назначении в дозе 40 мг/кг, хотя более низкие дозы не вызывали вакуолярной дегенерации нейронов [53]. Эти наблюдения в дальнейшем расширились до изучении развивающегося головного мозга в другом исследовании, в котором серии из семи подкожных инъекций кетамина (20 мг/кг в каждой дозе), введенные с равными интервалами времени в течение 9 часов, вызывали большую апоптическую нейродегенерацию у 7-дневных крысят [43].
Значимость этих данных у грызунов в настоящее время подтверждена у приматов: кетамин вызывал обширную гибель нейронов в коре головного мозга у плодов макак-резус, когда матерям в течение 24 часов назначался этот анестетик [54]. Множество этих экспериментов, таким образом, четко поддерживает спор, что длительное применение кетамина в анестетических концентрациях, на самом деле, может оказывать нейротоксические эффекты на развивающуюся ЦНС.
Вопрос - может ли кратковременное применение кетамина, что часто используется в современной анестезиологической практике у детей, вызывать гибель клеток в развивающемся головном мозге - является спорным. Несколько независимых исследований показывают, что в отличие от повторных инъекций кетамина с целью краткосрочной анестезии, однократная анестетическая доза этого препарата не вызывает апоптоза нейронов [53, 55, 56]. Однако, эти результаты ставились под сомнение новыми экспериментами показывающими, что даже относительно умеренное воздействие кетамином может запустить апоптоз в развивающемся головном мозге мыши [57]. В этом последнем исследовании с применением иммуноцитохимической маркировки специфическими антителами против раннего апоптического маркера каспазы 3 тела апоптических клеток были определены в нескольких областях головного мозга в течение 4 часов после однократных подкожных инъекций кетамина у 7-дневных мышей, с рассчитанной введенной анестетической или субанестетической концентрациями (40 и 10 мг/кг, соответственно). Хотя понятно, что необходимы дальнейшие эксперименты для объяснения влияния однократной дозы кетамина на нейронные реакции, эти результаты поднимают интригующий вопрос, что даже краткий апоптический стимул может изменять развитие нейронов в период пика синаптогенеза.
Важная проблема с точки зрения нейротоксичности заключаются в том, что апоптоз нейронов является не единственным параметром, который рассматривается при оценке возможных неблагоприятных эффектов кетамина или других анестетиков на развитие нейронов. Сейчас четко установлено, что вмешательства в тонко настроенные молекулярные механизмы, управляющие формированием дендритной структуры нейронов в развивающемся головном мозге, могут приводить к устойчивой дисфункции ЦНС [58]. Таким образом, понимание - изменяют ли анестетики развитие дендритной структуры в период развития ЦНС - является крайне интересным. Чтобы изучить этот вопрос, в настоящее время нами разработана система модели in vitro , в которой незрелые нейробласты изолируются из субвентрикулярной зоны новорожденных крыс [59]. Эта очищенная популяция клеток развивается в ГАМК-эргических промежуточных нейроны на культурах с низкой плотностью с выраженной дендритной структурой. Основываясь на предшествующих экспериментальных и клинических исследованиях, измеряющих концентрации кетамина в плазме после однократного введения или повторного назначения у грызунов и человека [56, 60, 61], мы в настоящее время исследовали доза-зависимые эффекты и эффекты, зависимые от времени воздействия кетамина, на дифференцировку и выживание ГАМК-эргических нейронов в этих культурах [62]. Мы нашли, что кетамин, а не неконкурентный антагонист рецептора NMDA MK 801, быстро вызывает апоптоз развивающихся нейронов, если назначается в ранее сообщенных концентрациях, вызывающих гибель клеток in vivo (? 10 мкг/мл ) [56]. Ни выживаемость, ни длительное развитие дендритов не изменялись, когда на дифференцирующиеся нейроны воздействовали более низкими, субанестетическими концентрациями ( ? 2 мкг/мл) этого анестетика в течение 8 часов. И наоборот, длительное воздействие (> 24 часов) на нейроны кетамином в концентрациях менее чем 0,01 мкг/мл сильно нарушало развитие структуры дендритов. Эти новые данные предполагают, что длительное применение даже низких концентраций кетамина, например, в качестве адъюванта для седации после операции и для купирования боли, могло потенциально влиять на развитие дендритов в незрелых нейронах.
Хотя кетамин первоначально рассматривался как блокатор NMDA рецепторов, мы нашли основные различия между этим анестетиком и другим неконкурентным антагонистом NMDA рецептора, MK 801, в эффекте на дифференцировку нейронов и их выживание [62]. Тот факт, что назначение кетамина (а не MK 801) в течение 1 часа было достаточно для запуска значимого апоптоза ГАМК-эргических нейронов, указывает на возможность что, в режимах высокой дозы кетамин-индуцированная нейротоксичность, по крайней мере, отчасти независима от блокады NMDA рецепторов. Эти данные в дальнейшем были подтверждены экспериментами, которые показали, что воздействие MK 801 на культуру в течение 4 часов не поражает ни выживание, ни дифференцировку развивающихся нейронов. Одно правдоподобное объяснение этих наблюдений будет заключаться в том, что помимо блокады NMDA рецептора, кетамин также взаимодействует с множеством путей передачи сигналов, вызывающих нейротрансмиссию в ЦНС [63]. На самом деле, кетамин индуцирует высвобождение допамина, серотонина и норадреналина в головном мозге [64, 65], и современные экспериментальные доказательства показывают, что этот анестетик также вмешивается в ре-поглощение этих аминов из внеклеточного пространства, подавляя моноамин-содержащие переносчики [65, 66].
Интересно , что накопление моноаминов, как уже сообщалось, запускает широкую нейродегенерацию у грызунов [67] и блокаду переносчика серотонина, которая в свою очередь снижает сложность структурной архитектуры дендритов пирамидных нейронов гиппокампа [68]. Кетамин индуцирует высвобождение аденозина из нервных окончаний [69], и есть современные доказательства, что аденозиновые A 2 A рецепторы играют решающую роль в метаботрофическом потенцировании NMDA передачи сигналов, вызванным через глютамат рецепторы [70]. Таким образом, возможно, что при наличии более высоких концентраций кетамина, дополняющие или синергичные эффекты между этими молекулярными механизмами и путями передачи сигналов могли быстро вызывать ре-моделирование дендритов и/или апоптоз. Альтернативно, большие дозы кетамина могли вызывать неспецифический нейротоксический эффект.
Немного известно относительно потенциально неблагоприятных эффектов кетамина на пролиферацию предшественников нейронов и миграцию клеток. Современные наблюдения показывают возможную роль кетамина в пролиферации предшественников в постнатальных нейрогенных зонах. У взрослых крыс после введения субанестетических концентраций кетамина в течение 5 последовательных дней, маркер пролиферации бромдезоксиуридин показал усиленный нейрогенез в субгранулярной зоне гиппокампа [71]. Как нам известно, нет других исследований о влиянии кетамина на незрелый головной мозг до периода синаптогенеза. Учитывая важную роль этих более ранних стадий развития в формировании собственно ЦНС, дальнейшие исследования необходимы для получения ответов на эти спорные вопросы.